Arnaldoa :revista del Herbario HAO.

A Revista del Museo de Historia Natural y Cultural A

ArnaldoA

UNIVERSIDAD PRIVADA ANTENOR ORREGO

ISSN: 1815-8242 (edición impresa)
ISSN: 2413-3299 (online edition)
TRUJILLO

REPÚBLICA DEL PERÚ ■

ARNALDOA es una publicación de la Universidad
Privada Antenor Orrego de Trujillo, Perú, editada se¬
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de la diversidad biológica y cultural de nuestro país,
en favor del desarrollo de la comunidad.

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TRUJILLO

REPÚBLICA DEL PERÚ

Enero - Junio
2017

24 ( 1 )

UNIVERSIDAD PRIVADA ANTENOR ORREGO

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a Revista del Museo de Historia Natural y Cultural a

ArnaldoA

UNIVERSIDAD PRIVADA ANTENOR ORREGO

Volumen 24 (1): Enero - Junio, 2017

CONTENIDO /CONTENTS

Pág. Artículos Originales

trisiisssis

teraceae Senecioneae) del Perú / A sinopsis of genus Wemería^ (Asteraceae:

Arncildoci 24 (1): 9 - 18, 2017

http:// doi.org/ 10.22497/arnaldoa.241 .24

ISSN: 1815-8242 (edición impresa)
ISSN: 2413-3299 (edición Online)

Especies ginodioicas de Gentianella
(Gentianaceae) en Colombia, Ecuador y Perú,
con la descripción de G. quipuscoana, nueva
especie del Perú

Gynodioecious species of Gentianella (Gentianaceae)
in Colombia, Ecuador and Perú, with the description
of G. quipuscoana , a new species from Perú

ARNALDOA 24(1): Ener

acia CC BY-NC <

: , Mjflífi Especies ginodioicas de Gentianella (Gentianaceae) en Colombia, Ecuador y Perú con G. quipuscoana, nueva especie.
Recibido: 05-1-2017; Aceptado: 25-111-2017; Publicado: VI-2017; Edición online: 26-V-2017

Resumen

Gentianella quipuscoana, una nueva especie del Perú, la cual se describe aquí, es aparentemente
ginodioica. De los especímenes vistos en este estudio, las flores de unos eran solamente pistiladas
y las de otros eran bisexuales. En G. dacrydioides, del sur de Ecuador, las flores de algunas plantas
son bisexuales, mientras que de otras son unisexualmente pistiladas, lo que indica que la especie
también es ginodioica.

Palabras clave: Colombia, Ecuador, Gentianaceae, Gentianella, ginodioecia, Perú.

Gentianella quipuscoana , a new species from Perú described here, appears to be ginodioecious. Of
the specimens seen in this study, some bore pistillate flowers only and others bore bisexual flowers.
In G. dacrydioides, of Southern Ecuador, the flowers of some plants are bisexual and those of other
plants are umsexually pistillate, indicating that this species likewise is gynodioecious.

Introducción

El género Gentianella Moench
(Gentianaceae, tribu Gentianeae, subtribu
Gentianinae según Struwe 2014) comprende
unas 250 especies, de las cuales más de 90
son nativas de los Andes del Perú. Con la
continua exploración en América del Sur, se
siguen descubriendo nuevas especies, sobre
todo en el norte del Perú.

Aunque en la mayoría de las especies de
Gentianella todas las flores son bisexuales,
se conocen por lo menos cuatro sistemas
reproductivos en el género. Hasta ahora, en
América del Sur las plantas con las flores
unisexuales se conocían solamente entre las
especies de Argentina y Bolivia (Gilg 1916;
Filippa & Barboza 2006; Pringle 2011). Este
sistema no se conocía entre las especies de
hojas angostas y densamente espaciadas,
las cuales constituyen el grupo Rotatae-
Fruticulosae de Gilg (1916). En el presente
estudio se da a conocer la presencia de
plantas unisexuales en una nueva especie
del Perú, la cual se describe aquí como G.
quipuscoana, así también en G. dacrydioides
(Gilg) Weaver & Rüdenberg de Ecuador.
Las dos especies se pueden relacionar con el
grupo Rotatae-Fruticulosae.

Materiales y métodos

Los especímenes descritos aquí, se
hallaron entre algunos ejemplares recibidos
para su identificación. Los acrónimos de los
herbarios son citados según Holmgren &
Holmgren (1998).

Resultados

Gentianella quipuscoana J. S. Pringle
sp. nov. (Figs. 1, 2, 3)

TIPO: PERÚ. Dpto. Amazonas.

Prov. Chachapoyas. Trail to Laguna de
Los Cóndores, surroundings of Laguna
Esperanza/Siete Lagunas, partly burnt
Neurolepis páramo with small forest
fragments on limestone, 06°48 , 44"S,
077°42'59"W, 3275-3500 m, 26-VI-2010, R.
IV. Biissmann, A. Glenn, C. Chait, & C. Vega
Ocaña 16510 (Holótipo: HAM [bisexual];
Isótipo: MO).

Diagnosis

Suffrutex verosimiliter gynodioecius
Gentianella eruotlianma (Gilg) Zarucchi, G.
fruticulosa (Dombey ex Weddell) Fabris ex J.
S. Pringle, et G. radicata (Griseb.) J. S. Pringle
simáis, a G. ericotliamna et G. fruticulosa
corollis profundius lobatis, a G. fruticulosa

1 o I ARNALDOA 2%fjbliero - Junio, \

ArnaldoA 24(i)|:

12 I ARNALDOA 2^ ; :

Especies ginodioicas de Gentianella (Gentia

anaceae) en Colombia, Ecuador y Perú con G. quipuscoana, nueva especie.

de G. quipuscoana por las ramitas muy
pequeñas en las axilas distales, y G. coccínea
y G. ericoides se distinguen de G. quipuscoana
por sus corolas rojas. En G. gramínea
(Kunth) Fabris, de los Dptos. Amazonas
y Cajamarca, y en G. oreosilene (Gilg) J. S.
Pringle (inclusive Gentiana paclnjstemon
Gilg), de los Dptos. Amazonas, Ancash, y
La Libertad, los tallos y los márgenes de las
hojas así como de los lóbulos calicinos son
glabros, y los entrenudos superiores son
mucho más largos que los inferiores. En G.
chlorantha J. S. Pringle, del Dpto. Amazonas,
los lóbulos calicinos son oblongos, la corola
es verdosa, de 14-18 mm, los pelos corolinos
son muy pocos o ausentes y el ovario es
estipitado.

También de hábito parecido es G.
dacnjdioides. Esta especie se describió
(como Gentiana dacnjdioides Gilg) de
Colombia (Gilg 1896), pero, aunque más
comparaciones sean convenientes, parece
que las plantas del sur de Ecuador no
se pueden distinguir taxonómicamente
(Pringle 1995; este estudio). A lo menos
en Ecuador, parece que esta especie es
ginodioica; unas plantas tienen las flores
pistiladas solamente (Fig. 4A-D) y otras
plantas tienen las flores bisexuales (Fig. 4
E-H). En las flores bisexuales los óvulos y el
polen son bien desarrollados, mientras que
en las flores unisexualmente pistiladas los
estaminodios son pequeños, con las anteras
encogidas y vacías.

Todos de los especímenes ecuatorianas
de G. dacnjdioides vistos en este estudio
provenían de la Provincia de Azuay o de la
frontera Azuay-Morona-Santiago. De estos,
Barclay y Juajibioy 8631 (MO) y Harling 25969
(GB, HAM, MO) constituyen solamente
las plantas unisexualmente pistiladas;
Jorgensen et al 1869 (MO) y Camp E-726 (NY)
constituyen solamente las plantas de flores
bisexuales; y Barclay y Juajibioy 8695 (MO) y

van der Werjfy Gudiñio 11445 (AAU, HAM,
MO) incluyen unas plantas unisexualmente
pistiladas y otras plantas de flores bisexuales.
De los especímenes de Colombia, de los
Departamentos Cauca, Nariño y Putumayo,
Barclay y Juajibioy 9473 (MO), Benanides y
Ramírez 4397 (MO), Cuatrecasas 11717 (F),
García Barriga et al. 18578 (MO), von Sneidern
1884 (GH), y Weaver 2655 (A, MO) tienen
las flores bisexuales. Cuatrecasas 19003 (F)
tienen las flores unisexualmente pistiladas,
y Foster y Foster 2047 (A) incluyen plantas
unisexualmente pistiladas y plantas de
flores bisexuales.

En Gentianella dacnjdioides, a diferencia
de G. quipuscoana, los tallos y los márgenes
de las hojas y de los lóbulos del cáliz son
glabros. Además, las hojas son ovadas a
elíptico-romboidales, no arqueadas, de 4-7,5-
2-4 mm, y son más crasas y más lustrosas
que las hojas de G. quipuscoana. Los lóbulos
del cáliz de G. dacnjdioides son oblongos con
las venas no sobresalientes, los lóbulos de la
corola son proporcionadamente más ancho,
el ovario es estipitado, y faltan los pelos
corolinos (Fig. 4).

Etimología

El epíteto específico honra el Blgo. Victor
Quipuscoa Silvestre, de la Universidad
Nacional de San Agustín de Arequipa, Perú,
el recolector principal de unos parátipos,
incluso el primero ejemplar de la especie
que vi, por sus estudios de la flora del Perú.

Agradecimientos

Agradezco mucho al Dr. Eric F.
Rodríguez R. por imágenes digitales de los
especimenes de Gentianella quipuscoana en
HAO y HUT. Agradezco a las autoridades
de las bibliotecas y los herbarios del
Missouri Botanical Garden, el Field Museum
of Natural History, y Harvard University

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017

tingle: Especies ginodioic

e) en Colombia, Ecu

uadory Perú con G. quipuscoana, nueva especie.

por acceso a publicaciones, especímenes
y fotografías de los especímenes típicos.
Agradezco mucho también a la Dra. Blanca
León por información sobre Gentinnelln
quipuscoana y por su ayuda en la redacción
del manuscrito y por la imagen de la especie
in si tu.

Filippa, E. M. & G. E. Barboza. 2006. Gentianaceae
Juss., fase. 102. En Flora fanerogámica argentina.
Programa Proflora-Conicet, Córdoba, Argentina.

Gilg, E. 1896. Beitrage zur Kenntnis der Gentianaceae.
Bot. Jahrb. Syst. 22: 301-347.

Gilg, E. 1916. Gentianaceae Andinae. Monographische
Zusammenstellung der Gentiana-kñen Süd-Ame-
rikas. Bot. Jahrb. Syst. 54(Beibl. 118): 4-89.

Holmgren, P. K. & N. H. Holmgren. 1998 [actualizado
continuamente], Index Herbariorum: A global direc-
tory of public herbaria and associated staff. New
York Botanical Garden’s Virtual Herbarium. http://
sweetgum.nybg.org/ih/

Pringle, J. S. 1995. Gentianaceae. Pp. 1-131 en G.
Harling & L. Andersson (editores), Flora of Ecua¬
dor, vol. 53. Botanical Institute, Goteborg University,
Suecia.

Pringle, J. S. 2011. Five new species of South Ameri¬
can Gentianella (Gentianaceae). Novon 21: 78-89.

Struwe, L. 2014. Classification and evolution of the fa-
mily Gentianaceae. En J. J. Rybczynski, M. R. Da-
vey, & A. Mikuta (redactores), The Gentianaceae,
volume 1: Characterization and ecology. Springer,
Heidelberg, Alemania, New York, EE. UU„ Dordre-
cht, Paísos Bajos, y Londres, Reino Unido.

14 I ARNALDOA 2%^/Íero - Junio, 2017

: ©Í^[Í: Especies ginodioicas de Gentianella (Gentia

anaceae) en Colombia, Ecuador y Perú con G. quipuscoana, nueva especie.

Fig. 1. Gentianella quipuscoana en Dpto. San Martín, Perú. Fotografiada por Blanca
León.

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017

tingle: Especies ginodioic

e) en Colombia, Ecu

uadory Perú con G. quipuscoana, nueva especie.

Fig. 2. Gentiamlla quipuscoana, ejemplares de herbario, ilustrando variabilidad en el
hábito.

16 I ARNALDOA 2%fjt ; liero - Junio, \

Fig. 3. Gentianella quipuscoana. A. Hoja mediocaulinare. B. Parte del cáliz. C. Parte de
la corola de una flor pistilada, con estaminodios del tamaño predominante. D. Pistilo
funcional, de la misma flor. E. Estaminodio más largo, con antera estéril. F. Parte de
la corola de una flor bisexual, con un estambre fértil. G. Pistilo funcional de una flor
bisexual. Todas vistas adaxiales. Dibujadas de Sagastegui A. et al. 16366, HAM (A-D),
Quipuscoa S. et al. 2600, HAM (E), y León & Young 5134, HAM (F-G).

ARNALDOA 24 (1): Enero - Junio, 201/1 17

tingle: Especies ginodioic

e) en Colombia, Ecu

uadory Perú con G. quipuscoana, nueva especie.

Fig. 4. Gentianella dacrydioides. A-D. De una planta de flores unisexualmente pistiladas.
A. Hoja mediocaulinare. B. Parte del cáliz. C. Parte de la corola con estaminodio estéril.
D. Pistilo receptivo. E-H. De una planta de flores bisexuales, en la fase estaminada. E.
Parte del cáliz. F. Parte de la corola con estambre fértil, con la antera deflexa. G. Estambre
fértil con la antera en la posición erguida. H. Pistilo. Dibujadas de van der Werff& Gudifío
11445. HAM.

18 I ARNALDOA 2%fjt ; liero - Junio, \

Arnaldoa 24 (1): 19 -34, 2017

http:// doi.org/ 10.22497/arnaldoa.241.24

ISSN: 1815-8242 (edición impresa)
ISSN: 2413-3299 (edición Online)

Merremia sagastegui-alvae (Convolvulaceae),
una especie nueva con raíces tuberosas del
Norte de Perú

Merremia sagastegui-alvae (Convolvulaceae), a new
species with tuberous roots from Northern Perú

Eric E Rodríguez Rodríguez
b'(HUT), Universidad Nacionarde Trujillo. Jr. San Martín
erodriguez@unitru.edu. pe
Jesús Briceño Rosario

L Ministerio de Cultura, Dirección Descon centrádaid eICultura;.La Libertad; ICPAC,
j b r i r@h otrfi aiLc om—-
Brian Billman
UNC-Chapel Hill yUioCHEJnc.
bbillman@email.unc.edu
Alicia Boswell

Universidad de San Diego, California, EE.uffi^^
aboswell@ucsd.edu

ARNALDOA 24(1): Enero-Junio, 2017 1
CC BY-NC 4.0: https://creativccomnions.org/liccnscs/by-i

Rodríguez etal:. Merremia sagastegui-alvae (Convolvulaceae) una especie nueva con raíces tuberosas del Norte de Perú
Recibido: 16-1-2017; Aceptado: 20-111-2017; Publicado: VI-2017; Edición online: 26-V-2017

Resumen

Se describe e ilustra una especie nueva de Merremia Dennst. ex Endl. (Convolvulaceae) con
raíces tuberosas procedente del norte del Perú, denominada Merremia sagastegui-alvae E. Rodr., J.
Briceño, B. Billman & A. Boswell. La especie nueva habita en la localidad de Collambay (distrito
Simbal, provincia Trujillo, región La Libertad, Perú), entre 950 y 1830 m de altitud, y aparentemente
es endémica de esta parte del país. Se discute con su relacionada Merremia grandiflora Ooststr. y
adicionalmente se presentan datos sobre su distribución geográfica y ecológica, fenología, usos,
nombres vulgares y estado actual de conservación.

Palabras clave: Merremia, Streptandra, Convolvulaceae, endemismo, especie nueva, norte del Perú.

Perú named Mern
illustrated. The ne
Province, La Líber
to this part of the

Merremia Dennst. ex Endl. (Convolvulaceae) with tuberous roots from northern
ni a sagastegui-alvae E. Rodr., J. Briceño, B. Billman, A. Boswell is described and
' species was identified cióse to the town of Collambay (Simbal District, Trujillo
id Región, Perú) between 950 and 1830 m a.s.l. The species is apparently endemic
ountry. We discuss the new species in relation to Merremia grandiflora Ooststr.
nal data on its geographic location, ecological zone it inhabits, phenology, uses.

Keywords: Merremia, Streptandra, Convolvulaceae, endemism, new species, northern Perú.

El género Merremia fue propuesto
inicialmente por August Wilhelm
Dennstedt tras la revisión de los nombres
existentes en la obra Hortus Indicus
Malabaricus de Hendrik van Rheede
designando por primera vez la especie
Merremia convolvulácea Dennst., pero, sin
una publicación oficial (Dennstedt, 1818).
Su validación fue efectuada por Endlicher
(1841) como Merremia Dennst. ex Endl. y por
Hallier (1893) para Merremia convolvulácea
Dennst. ex Hallier f.= M. hederacea (Burm.
f.) Hallier f. De esta forma, se enmendó la
omisión de la descripción y se sustentó la
diferenciación correcta entre Ipomoea L. y
Merremia.

Merremia Dennst. ex Endl. se puede
reconocer por una serie de caracteres,
tales como las anteras espiraladas después
de la antesis, morfología del polen (e.g.:
los granos de polen colpados con exina

y textura del cáliz, dominancia de los
colores blanco y amarillo en las flores de
las especies, fruto tipo cápsula 4-valvar,
entre otras (Ooststroom & van Hoogland,
1953; Ferguson et al, 1977; Austin, 1998;
Demissew, S. 2001).

Merremia es pantropical y comprende
entre 60 y 80 especies, mayormente
representadas en Asia y África, y con
alrededor de 30 especies en el Nuevo
Mundo (Austin, 1982; Austin & Staples,
1983; Mabberly, 2008; Ferrer et al, 2010;
Ferreira & Miotto, 2013; Petrongari &
Simao. 2016; The Plant List, 2016). Para
la flora del Perú se han registrado ocho
especies: M. aegyptia (L.) Urb., M. cissoides
(Lam.) Hallier f., M. grandiflora Ooststr.,
M. macrocahjx (Ruiz & Pav.) O'DoneII, M.
quinquefolio (L.) Hallier f., M. tuberosa (L.)
Rendle, M. nmbellata (L.) Hallier f. y M.
weberbaueri Ooststr. (MacPherson, 1993),
de estas, dos son endémicas: M. grandiflora

20 I ARNALDOA 2%fjbliero - Junio, 2017

ArnaldoA 24(i)|:

22 I ARNALDOA 24¡t^ ; :

ArnaldoA 24(i)|:

24 I ARNALDOA 2

Rodríguez etal.\ Merremia sagastegui-alvae (Convolvulac

ampliándose gradualmente hacia la base
y su inserción basal adnata en la corola,
ovario con disco anular, forma del estilo y
estigma. Sin embargo, M. sagastegui-alvae
difiere de M. grandiflora por que la corola es
más corta, ampliamente infundibuliforme,
el largo es menor al ancho, < 60 mm de largo
(vs. campanuliforme, el largo es casi igual al
ancho, > de 70 mm de largo), el largo de la
corola es dos veces el largo del cáliz (vs. 3
veces), el cáliz siempre cubre 1/2 del tubo
corolino (vs. 1/3 de la corola), estambres
son más largos, hasta los 2/3 del largo de la
corola, filamentos 12-15 mm, en la porción
adnata en la base pilosos, anteras 15-17
mm (vs. hasta 1/3 del largo de la corola,
filamentos 9-11 mm, en la porción adnata
en la base puberulentos, anteras 10-15 mm);
ovario subesférico, 4-carpelar, 4-locular,

1- ovular (vs. ovario cónico, 2-carpelar,

2- locular, 2-ovular); estilo 25 mm largo
(vs. 16 mm largo). Peciolo 50-90 mm largo
(vs. 10-42 mm largo), pedicelos florales
más cortos, < de 10 mm de largo (vs. > de
10 mm). Además, la nueva entidad es un
subarbusto con raíces tuberosas que crece
a altitudes más bajas (rango 950-1830 m),
mientras que M. grandiflora es más andina y
crece generalmente entre 1500 y 2200 m de
altitud.

Material Examinado de Merremia
grandiflora Ooststr., Recueil Trav. Bot.
Néerl. 30: 203-204. f. 2.1933.

Tipo. Perú. Dpto. Lima: Between San
Bartolomé and the Puente de Verrugas,
bridge, 1500-1800 m, ll-IV-1909 (1909-14),
A. Weberbauer 5218 (Isótipos: F-629286!,
GH-0054648!, US-1473555!). Provincia

Canta, abajo de la Florida, ladera con piso
de cactáceas, 2100-2200 m, 31-V-1974, R.
Ferreyra 1842 7 (USM-78340!). Det.: E. Cerrate,
1982. Provincia Huarochiri: 65 km along

highway between Chosica and Matucana,
on fíats and grassy banks, full exposure,
rocky soil. Apparently confined in Valley
of Rio Rimac to a narrow altitudinal zone,
1650 - 2000 m, 9-IV-1939, T. H. Goodspeed
11315 (F-1491951!, MO-1242417!). Det: G.
Staples III, 8-IV-1980. Valley of Rio Rimac,
near Lima-Oroya highway at km 60 east of
Lima. Exposed rock slide, shallow soil., 1500
m, 15-III-1942 - 22-III-1942, T. H. Goodspeed
& R. D. Metcalf 30224 (MO-1289218). Det.:
G. Staples III, 8-IV-1980. Carretera Central,
km 56, piso xerofítico, 1300 m, 24-V-1952, R.
Ferreyra 8224 (USM-78338!). Determinación:
C. O'Donell. Km. 61-62, entre Oacolla y
Surco, Carretera Central, falda pedregosa,
1700-1800 m, 10-V-1953, R. Ferreyra
9155(USM-78339!).

Distribución Geográfica y Ecología: M.

sagastegui-alvae es aparentemente endémica
a la localidad de la colección tipo en la
región La Libertad, provincia de Trujillo
(Collambay) a altitudes menores de 1850
m. La especie nueva está restringida a la
parte occidental de la cadena occidental
de los andes en el norte de Perú, que
incluye a la denominada zona de Amotape-
Huancabamba de elevada riqueza endémica
en su límite sureño (Weigend 2002, 2004)
(Fig.7). Sin embargo, no se descarta su
presencia en zonas adyacentes como los
valles de las partes bajas del río Chicama
y Virú (e.g.: Frontera entre las provincia
de Virú y Santiago de Chuco), cuyas
localidades presentan similares condiciones
ecológicas. Es probable que las barreras
geográficas naturales como el rio Santa,
así como la cordillera Negra en Ancash
impidan su distribución hacia el sur, en
donde es reemplazada por la especie afín
M. grandiflora (e.g.: Cuenca del rio Rimac,
Lima). Es un taxón que por la forma y
margen de sus hojas en su hábitat natural
recuerda a Vitis vinifera L. (Vitaceae) "uva".

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017

R. et ni. 3218, HUT).

26 I ARNALDOA 2

Rodríguez etal.\ Merremia sagastegui-alvae (Convolvulac

Fig. 4. Merremia sagastegui-alvae E. Rodr., J. Briceño, B. Billman & A. Boswell. A.
Hábitat natural (cerro Huancha, Collambay); B. Hábito; C. Hoja; D. Flor en antesis; E.
Flor solitaria en antesis, vista lateral; F. Nótese las brácteas caducas (flechas) entre el
pedúnculo y pedicelo floral. (Fotografías: A y B: Jesús Briceño R.; C-F: Eric Rodríguez R.
de la colección tipo: E. Rodríguez R. et ni 3218, HUT).

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017

28 I ARNALDOA 2

Rodríguez etal.\ Merremia sagastegui-alvae (Convolvulac

Fig. 6. Merremia sagastegui-alvae E. Rodr., J. Briceño, B. Billman & A. Boswell. A y
B. Raíces tuberosas encontradas durante las excavaciones arqueológicas cerca al cerro
Ramón, Collambay. (Fotografías: Alicia Boswell).

el mismo que requiere abundante luz del sol
(heliófila), puede crecer y habitar en suelos

expuestas (psamófila) y prospera en suelos
arcillosos (argilícola), en donde sus raíces
tuberosas se profundizan y sobreviven
a la sequía. Se encuentra asociada con:
Cactáceas columnares: Espostoa melnnostele
(Vaupel) Borg "shongo", Neoraimondia
arequipensis (Meyen) Backeb. "gigantón",
holán thocereus trujilloeiisis F. Ritter y
Haageocereus paailneiisis Backeb. "rabos
de zorro", Annntocereus oligogonus Rauh
& Backeb. "pitajaya"; y la cactácea
globular Melocactus peruvianas Vaupel
"shimbil". Flora leñosa perenne como
Beautempsia avicenniifolia (Kunth) Gaudich.,
Capparicordis crotonoides (Kunth) litis &
Cornejo, Colicodendron scabridum (Kunth)
Seem. (Capparaceae), Sentid spicata (Humb.
& Bonpl. ex Willd.) Weberb. (Rhamnaceae);
Acacia wacracantlia Humb. & Bonpl. ex
Willd., Acacia huarango Ruiz ex J. F. Macbr.,
Indigofera sujfruticosa Mili. (Fabaceae);
Lyciuin bocrhaviifolium L. f. (Solanaceae),
Ruellia floribunda Hook. (Acanthaceae);
Cordia lútea Lam., Cordia macrocephala

(Desv.) Kunth, Heliotropium arborescens
L., Heliotropium ferreyrae I. M. Johnst.,
(Heliotropiaceae) Tournefortia niicrocalyx
(Ruiz & Pav.) I. M. Johnst. (Boraginaceae);
Bursera graveolens (Kunth) Triana & Planch.
(Burseraceae); Trixis cacalioides (Kunth)
D. Don, Ophryosporus galioides (DC.) R. M.
King & H. Rob., Ophryosporus peruvianas (J.
F. Gmel.) R. M. King & H. Rob., Baccharis
arenaria Baker y Baccharis eggersii Hieron.
(Asteraceae); Cnidoscolns basiacanthus (Pax
& K. Hoffm.) J. F. Macbr. ""huanarpo",
"huanarpo hembra", Croton alnifolius
Lam. (Euphorbiaceae); Abutilón reflexión
(Lam.) Sweet, Bastardía bivalvis (Cav.)
Kunth ex Griseb., Malvastruni A. Gray (M.
coromandelianum (L.)Garckey M. tomentosum
subsp. tomentosum), Waltheria ovala Cav.
(Malvaceae); Lantana scabiosiflora Kunth
(Verbenaceae); Jacquemontia prominens
Helwig, y la dominancia de Ipomoea
mi a mata (Vahl) Choisy (Convolvulaceae),
entre otras. Flora herbácea efímera:
Didiptera falciflora Lindau, Tetramerium
sagasteguianum T. F. Daniel (Acanthaceae);
Acmella alba (L'Hér.) R. K. Jansen, Onoseris
odorata (D. Don) Hook. & Arn., Porophylluni

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017

30 i ArnaldoA 2

Rodríguez etal.\ Merremia sagastegui-alvae (Convolvulac

incrementando la leche en el ganado; las
raíces tuberosas sirven como fuente de agua
para los humanos (Fuente: Sr. Darío Vilca,
Collambay), las mismas que muy bien
podrían ser utilizadas en la alimentación
al igual que Ipomoen batatas (L.) Lam.
"camote".

Agradecimientos

A los directores, curadores y autoridades
de los herbarios F, GH, HAO, HUT, MO,
US, USM por hacer posible la revisión de
sus colecciones y bases de datos botánicos.
Agradecemos a nuestros maestros: Dr.
Arnaldo López Miranda (f) (HUT), Dr.
Abundio Sagástegui Alva (f) (HAO, HUT)
y Dr. Isidoro Sánchez Vega (f) (CPUN)
por sus enseñanzas y dirigir los trabajos de
campo en el Norte del Perú. Al Dr. Michael
O. Dilion (F) e Ing. Rodolfo Vázquez
Martínez por el apoyo constante a los
estudios de Flora del Perú. A Segundo Leiva
González (HAO) por la revisión acuciosa
de la diagnosis, a Luis Pollack Velásquez
(UNT) por la elaboración del mapa de
distribución geográfica de la especie nueva,
a José Campos de la Cruz (USM) por el
apoyo logístico, de material bibliográfico
y fotográfico, al grupo integrado por
Margarita Mora Costilla, María Morillo
Horna, Katia Monzón Licera, Kandy Burgos
Inca, Jessica Lujan Rojas, Verónica Liza
Trujillo, Brenda Martínez Torres, Luis Alaya
Bernabé y Cinthya Ramírez Obeso por la
valiosa ayuda científica y logística en el
campo, y a la Bióloga Roxana Aguirre Tocas
por la preparación de la excelente ilustración
que forma parte de esta investigación.

Literatura citada

Austin, D. F. 1982. Convolvulaceae. Merremia Denn-
stedt. In: Flora of Ecuador. Edit. By G. Harling, B.
Sparre & L. Andersson. Department of Systematic
Botany, University of Góteborg, and the Section for
Botany, Riksmuseum, Stockholm. 15: 83-88.

Austin, D. F. & G. W. Staples. 1983. Additions and
changes in the neotropical Convolvulaceae: notes
on Merremia, Operculina, and Turbina. Journal of
the Arnold Arboretum 64 (3): 483M89.

Austin, D. F. 1998. Parallel and convergent evolution in
the Convolvulaceae. In: Mathews, R & Sivadasan,
M. (eds.). Diversity and taxonomy of tropical flow-
ering plants. Mentor Books, Calicut. Pp. 201-234.

Bricefto, J. 2011. Últimos descubrimientos del Pai-
janense en la parte alta de los valles de Chicama,
Moche y Virú, norte del Perú: Nuevas perspectiv¬
as sobre los primeros cazadores-recolectores en
los Andes de Sudamérica. Boletín de Arqueología.
Pontificia Universidad Católica del Perú, Lima. 15:
165-203.

Bricefto, J. & B. Billman. 2009. Proyecto Arqueológi¬
co Cerro Oreja, valle de Moche.Temporada 2007-
2008. Informe Final. Informe presentado al Instituto
Nacional de Cultura.

Bricefto, J. & B. Billman. 2012. La Ocupación Salinar
en la Subcuenca del rio Sinsicap, arte alta del valle
de Moche. Investigaciones Sociales, Universidad
Nacional Mayor de San Marcos-IIHS, Lima. 16
(28): 197-222.

Demissew, S. 2001. A synopsis of the genus Merremia
(Convolvulaceae) in the flora of Ethiopia and Eritrea.
Kew Bulletin 56: 931-943.

Dennstedt, A. W. 1818. Schlüssel zum Hortus Indicus
Malabaricus, Oder dreifaches Register zu diesem
Werke. Verlag des Landes-Industrie-Comptoirs,

Endlicher, S. 1841. Genera plantarum secundum ordi-
nes naturales disposita. Vol. 1. F. Beck, Vindobo-

Ferguson, I. K.; B. Verdcourt. & M. M. Poole. 1977.
Pollen morphology in the genera Merremia and
Operculina (Convolvulaceae) and its taxonomic
significance. Kew Bulletin 31: 763-773.

Ferreira, R P. A. & S. T. S Miotto. 2013. 0 género Me¬
rremia (Convolvulaceae) na Regiáo Sul do Brasil.
Rodriguésia 64 (3): 635-646.

Ferrer, H.; Y. Vivas; 0. Hokche; S. Nozawal; S. Pérez;
L. Rodríguez; J. Mostacero & J. Estrada. 2010. El
género Merremia (Convolvulaceae) en Venezuela.
Rodriguésia 61 (4): 639-660.

Hallier, H. J. G. 1893. Versuch einer natürlichen Gliede-
rung der Convolvulaceen auf morphologischer und
anatomischer Grundlage. Botanische Jahrbücher
für Systematik, Pflanzengeschichte und Pflanzen-

ARNALDOA 24 (1): Enero - Junio, 2017 I 31

Rodríguez etalMerremia sagastegui-alvae (Con

> tuberosas <

geographie 16:453-591.

Instituto Geográfico Militar. 1969. Atlas Histórico Geo¬
gráfico y de Paisajes Peruanos. Ed.: Instituto Na¬
cional de Planificación. Asesoría Geográfica. Lima,
Perú.

León, B. 2006. Convolvulaceae endémicas del Perú.
In: El libro rojo de las plantas endémicas del Perú.
Ed.: B. León et al. Rev. perú. biol. Número especial
13(2): 266-267.

Mabberley, D. J. 2008. The Plant-Book. Third edition.
Cambridge University Press, UK.

Macbride, F. 1959. Convolvulaceae. Merremia grandi¬
flora Ooststr. Field Mus. Nat. Hist., Bot. ser. 13(5/1):
492-493.

MacPherson, G. 1993. Convolvulaceae. In: Brako, L. &
Zarucchi, J.L. (eds.). Catálogo de las Angiosper-
mas y Gimnospermas del Perú. Monogr. Syst. Bot.
Missouri Bot. Gard. 45: 365-374.

ONERN. 1976. Mapa Ecológico del Perú. Guía Explica-
República del Perú. Oficina Nacional de Evalu¬
ación de Recursos Naturales.

Ooststroom, S. J. van. 1933. Merremia grandiflora
Ooststr. In Recueil Trav. Bot. Néerl. 30: 203-204.

Ooststroom, S. J. van & R. D. van Hoogland. 1953.
Convolvulaceae. In: van Steenis, C.G.G.J. (ed.).
Flora Malesiana 1:388-512.

Petrongari, F. S. & R. Si+máo-BianchinL 2016. A new
species of Merremia (Convolvulaceae) from Sáo
Paulo State, Brazil. Phytotaxa 268(4): 244-250.
DOI: http://dx.doi.Org/1 0.11646/phytotaxa.268.4.2

Pulgar Vidal, J. 1946. Las Ocho Regiones Naturales del
Perú. Historia y Geografía del Perú. Tomo I. Univer¬
sidad Nacional Mayor de San Marcos, Lima, Perú.

Rodríguez, E. & R. Rojas. 2006. El Herbario, Adminis¬
tración y Manejo de Colecciones Botánicas. 2da.
Edición. Ed.: R. Vásquez, Missouri Botanical Gar-
den (MO), Perú.

Rodríguez, E. & B. León. 2012. A la memoria del doctor
Abundio Sagástegui Alva (1932 - 2012). Rev. perú,
biol. 19(2): 127-134.

Rodríguez, E.; J. Briceño; B. Billman, A. Boswell; M.
Morillo; K. Monzón; B. Martínez; J. Lujan; K. Bur¬
gos; V. Liza; L. Bernabé & C. Ramírez. 2016. Flora
Vascular de Collambay (Simbal, Trujillo, La Liber¬
tad, Perú). In: Libro de Resúmenes del XV Congre¬
so Nacional de Botánica, 10-13 de mayo del 2016,
Cusco, Perú. Pp. 154.

Rojas, R. 2010. Convolvulaceae. In: Flora del Rio Cene-
pa, Amazonas, Perú. Vol. 1. Edit. by. R. Vásquez,
R. Rojas & H. Van der Werff. Monograps in Syste-
matic Botany from Missouri Botanical Garden. 114:
549-556.

Rostworowski, M. 1979. La costa peruana prehispáni¬
ca. In: Economía y sociedad en los Andes y Me-
soamérica, Revista de la Universidad Complutense,
Edit. de la Universidad Complutense de Madrid. 28
(117):461 -473.

Sagástegui, A. & S. Leiva. 1993. Flora invasora de los
cultivos del Perú. Edit. Libertad. Trujillo, Perú.

Staples, G. W. & D. F. Austin. 2016. Merremia grandi¬
flora. In: The Convolvulaceae - the morning glories
and bindweeds. Convolvulaceae Unlimited Disponi¬
ble en: http://convolvulaceae.myspecies.info/con-
tent/merremia-grandiflora-O. Acceso: 18 de junio
del 2016.

The Plant List. 2016. The Plant List. A working list of
all plant species. Versión 1.1. Disponible en: http://
www.theplantlist.org. Acceso: 23 de julio del 2016.

Thiers, B. 2016. Index Herbariorum: A global directory
of public herbaria and associated staff. New York
Botanical Garden’s Virtual Herbarium. Disponible
en: http://sweetgum.nybg.org/science/ih/. Acceso:
3 de agosto del 2016.

Tosí, J. 1960. Zonas de Vida Natural en el Perú. Memo¬
ria Explicativa sobre el mapa Ecológico del Perú.
Instituto Interamericano de Ciencias Agrícolas de la
OEA, IICA-OEA.

UICN. 2001. Categorías y Criterios de la Lista Roja de
la UICN. Versión 3.1. Comisión de Supervivencia
de Especies de la UICN. UICN, Gland, Suiza y Cam¬
bridge, Reino Unido, ii + 33 pp.

UICN. 2012. Categorías y Criterios de la Lista Roja de la
UICN: Versión 3.1. Segunda edición. Gland, Suiza y
Cambridge, Reino Unido: UICN. vi + 34 pp.

Weigend, M. 2002. Observations on the Biogeography
of the Amotape-Huancabamba Zone in Northern
Perú. In: K. Young etal., Plant Evolution and Ende-
mism in Andean South America. Bot. Review 68(1):
38-54.

Weigend, M. 2004. Additional observations on the bio¬
geography of the Amotape-Huancabamba zone in
Northern Perú: Defining the South-Eastern limits.
Rev. perú. biol. 11(2): 127-134.

32 I ARNALDOA 2%^/Íero - Junio, 2017

Rodríguez etal.\ Merremia sagastegui-alvae (Convolvulac

ANEXO

Fig. 7. Ubicación geográfica de la localidad tipo de Merremia sagastegui-alvae en
zona fitogeográfica Amotape-Huancabamba.

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017

Rodríguez etalMerremia sagastegui-alvae (Convolvulaceae) una especie nueva con raíces tuberosas del Norte de Perú

34 I ARNALDOA

Arnaldoa 24 (1): 35 -44,2017
http:// doi.org/ 10.22497/arnaldoa.241 .24

ISSN: 1815-8242 (edición impresa)
ISSN: 2413-3299 (edición Online)

Salpichroa weigendii (Solanaceae), una nueva
especie de la región Huánuco, Perú

Salpichroa weigendii (Solanaceae), a new species from
Huanuco Región, Perú

36 I ARNALDOA 2

ArnaldoA 24(i)|:

38 I ARNALDOA 24^:

ArnaldoA 24(i)|:

40 i ArnaldoA 2

Leiva et ai: Salpichroa weingenan (Solanaceae) i

Fig. 2. Salpichroa weigendii S. Leiva, Jara & Barboza. A. Rama florífera; B.-C. Hojas;
D.-E. Flores en antésis; F Frutas. (Fotografías: S. Leiva, T. Mione & L. Yacher 6064, HAO).

ARNALDOA 24(1): Ene

o, 2017

42 I ARNALDOA 2

g* ET

Leiva et ai: Salpichroa wemgendii (Solanaceae) u

Literatura citada

Monographs in Sistematic Botany. Missouri
Botanical Garden. Vol. 45. pp. 1286.

Desfontaines, R. 1829. Catalogus Plantarum Horti
Regii Parisiensis. Apul Editorem J. S. Chaude,
París, pp. 396.

Dunal, J. F. 1856. Solanaceae. In: de Candolle, A. P
Prodromus Systematis Naturalis Regni Vegetabilis.
Hunziker, A. T. 2001. Genera Solanacearum. A. R. G.

Gantner Verlag K. G. Alemania, pp. 500.

Keel, S. H. 1984. A revisión of Genus Salpichroa
(Solanaceae). Dissertation Doctor of Philosophy.
University of New York, U. S. A.

Keel, S. H. 1993. A New Species and a New Combination
in Salpichroa (Solanaceae). Novon 3:1:46-48.
Lamarck, C. 1793. Tableau Encyclepedique et
Methodique des Trois Reqnes de la Nature,
Botanique 2: 28, Paris.

Leiva, S; R Gonzáles; G. E. Barboza & J. Jara Gavilán.

2016. Salpichroa salpoensis (Solanaceae): una
nueva especie del norte de Perú. Arnaldoa 23(2):
433-442.

Macbride, J. F. 1962. Solanaceae. Irr. Flora of Perú.
Field Mus. Nat. Hist. Bot. ser. 13 (5B) (1): 59-66,
83-86.

Pereyra, E.; K. Lezama; S. Limo; V. Quipuscoa & S.
Leiva. 2007. Salpichroa leucantha (Solanaceae)
una nueva especie del Departamento La Libertad,
Perú. Arnaldoa 14 (1): 53-59.

Thiers, B. 2016 [continuamente actualizada], Index
Herbariorum: A global directory of public herbaria
and associated staff. New York Botanical Garden’s
Virtual Herbarium. Disponible en: http://sweetgum.
nybg.org/ih/

ArnaldoA ^ En

o, 2017

1 Salpichroa weingendii (Solanace

i ArnaldoA

Arnaldoa 24 (1): 45 - 62, 2017

http:// doi.org/ 10.22497/arnaldoa.241 .24

ISSN: 1815-8242 (edición impresa)
ISSN: 2413-3299 (edición Online)

Sinopsis del género Werneria
(Asteraceae:Senecioneae) del Perú

A sinopsis of genus Werneria
(Asteraceae:Senecioneae) from Perú

Beltrán: Sinopsis del género Wernería (Asteraceae:Senec¡oneae) del Perú.

Recibido: 15-1-2017; Aceptado: 10-111-2017; Publicado: VI-2017; Edición online: 26-V-2017

Resumen

Se presenta una sinopsis del género Werneria para el Perú. Con una clave para las veintidós
especies, además la distribución actualizada a nivel departamental y altitudinal, y un breve
comentario para cada una de las especies.

Palabras clave: taxonomía, endémicos, puna.

A synopsis of genus Werneria for Perú is presented. With a key to the 22 species, also updated
distribution at departmental and altitudinal level and a short comment for each species.

Introducción

El género Werneria fue establecido
por Cari Sigismund Kunth dedicado a
Abraham Gottlob Werner reformador de
la mineralogía, con seis especies W. rígida ,
W. hunde,, W. panilla W. graniinifoUa, W.
nubigena y W. disticlia (Bonpland & Kunth,
1820); posteriormente fueron descubiertas
y descritas entre 40 a 50 especies (Weddell,
1855; Schultz-Bipontinus, 1856; Philiphi,
1891; Rockhausen, 1939; Blake, 1928;
Cuatrecasas, 1970).

Investigaciones relacionadas al género,
sustentados con caracteres morfológicos,
advierten la variabilidad de las especies
y muestran que no es monofilético (Funk,
1997c), razón por la cual casi la mitad
de las especies fueron transferidas a
nuevos géneros; Misbrookea (Funk, 1997),
Xenophijllnm (Funk, 1997b) y recientemente,
Anticona (Finares, 2014); las restantes
aún permanecen en Werneria y están
caracterizadas por, formar pequeños grupos
en rosetas o raramente solitarios, calículos
ausentes o muy pequeños, involucro
integrado por filarías soldadas hasta un
tercio de su longitud, flores del margen
blancas, poco frecuente amarillas.

Actualmente, Werneria podría estar
integrado por 25-27 especies, distribuidas
en los Andes sudamericanos sobre los

2800 metros de altitud desde Venezuela,
Colombia, Ecuador, Perú, Bolivia hasta
el norte de Argentina y Chile, con una
población aislada de IV. nubigena en México
y norte de Guatemala.

Estudios relacionados a la composición
química (Bohlman, 1984; Fock, 2006), uso
popular (Soukup, 1987; Brack, 1999) de
algunas especies han sido realizados.

Para el Perú han sido citadas 27 especies
(Brako, 1993); luego de las transferencias
realizadas a los nuevos géneros establecidos,
quedaron solo 22, distribuidas en todos
los departamentos andinos, desde Piura,
Amazonas hasta Puno y Tacna; es decir a
lo largo de los Andes sobre, los 2800 metros
hasta el límite de la vegetación, en pajonales,
roquedales, césped de puna y raramente, en
bofedales.

Fa presente sinopsis presenta el estado
actual de 22 especies de Werneria que ocurren
en el Perú con una clave dicotómica para la
determinación de las especies, sinónimos
(son mencionados solo nombres citados
para el Perú), distribución altitudinal,
departamental, referencias bibliográficas y
breve comentario sobre su morfología. No
es un trabajo monográfico del género, pero
es un progreso con observaciones de campo,
mucho trabajo en herbarios peruanos
rectificando y actualizando nombres.

46 I ARNALDOA 2%^Íero-Junio,;

Beltrán: Sinopsis del género Werneria (Asteraceae:Senec¡oneae) del Perú.

Este estudio puede servir de punto de
discusión y base para futuras investigaciones
a otros niveles, como el molecular y
establecer la filogenia del género, la cual
podría "clarificar" y poner límites más
concretos en algunas especies, como el
complejo de W. nubigena, W. pygmnen,
W. puniiln e incluso con sus géneros más
emparentados, donde existe la posibilidad
que algunas entidades más deban ser
transferidas de Werneria a XenopJnylluni.

Materiales y métodos

Los pliegos examinados procedieron
de los siguientes herbarios: CPUN, HUSA,
HAO, HUT, MOL, TAKANA y
USM (Holmgren et al., 1990), además
de ejemplares recolectados por el autor
en numerosas expediciones empleando
metodología tradicional (Cerrate, 1969; Lot
& Chiang, 1986). La investigación se realizó
en el Herbario San Marcos (USM) donde
se encuentra conservada toda la colección
del autor y además se examinó 615 pliegos
a fin de georeferenciar las localidades
de ocurrencia y mediante el empleo del
programa Diva Gis para obtener el mapa
de riqueza. Adicionalmente se consultó
literatura especializada. Los nombres
validos están escritos en itálica y resaltada

Para cada especie y por departamento
se señaló arbitrariamente una muestra de
herbario como material de referencia, solo
tres especies no fueron examinadas por no
encontrarse en ninguno de los herbarios
mencionados arriba. Adicionalmente se
proporciona las especies de Werneria que
han sido transferidas a Xenophyllum.

Resultados y Discusión

El territorio peruano, y en particular
los departamentos andinos, con áreas
sobre los 2800 metros de altitud, alberga la

mayor riqueza de Werneria con 22 especies,
seguido de Bolivia con 15 (Jorgensen,
2014), Argentina 9 (Katinas, 2007), Chile 6
(Marticorena, 1990), Ecuador 4 (Jorgensen,
1999) y Colombia 2 (Avila, 2015). Del
mismo modo Perú registra cinco especies
endémicas, mientras Ecuador, Chile y
Argentina solo una (Tabla 1).

En relación a la altitud, las especies se
encuentran desde los 2800 hasta los 5900
metros, pero la mayor concentración de
especies se circunscribe en el rango de 4000
a 5000 metros. Werneria weberbnaeriana es
la especie registrada a mayor altitud. Por
otro lado, hay pocas especies en latitudes
bajas como en Piura y Amazonas, con 2
y 3 especies respectivamente y estas se
incrementan en latitudes altas, por ejemplo
en Puno y Cusco, con 15 y 14 especies
respectivamente.

Al realizar comparación de riqueza
de especies por departamentos, aquellas
localizadas hacia el norte están poco
representadas con 3 a 6 especies, mientras que
las del centro (Ancash hasta Huancavelica)
con 6 a 13 especies y hacia el sur, la riqueza
se incrementa (Ayacucho hasta Puno y
Tacna), siendo Cusco y Puno con registro de
14 y 15 especies respectivamente (Fig. 1 y 2).

La densidad de colecciones por
departamentos indican que; Ancash;
Cusco, Junín y Lima son los departamentos
con más ejemplares conservados en
los herbarios (entre 164 a 51), siendo
Amazonas, Ayacucho, San Martin,
Lambayeque, Apurímac y Piura (Figs. 1 y 2)
los departamentos con menos registros de
colectas (entre 9 a 2).

Probablemente la relación directa entre el
número de colecciones y riqueza de especies
encontradas por departamento refleje lo que
ocurre en la naturaleza y no se deba a algún
sesgo en las colecciones. El departamento de

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017

Beltrán: Sin

•\ género Wernería (Asteraceae:Senecioneae) del | É | k‘

Ancash tiene el mayor número de colectas
(164) y 11 especies; Puno posee 29 colectas y
15 especies, mientras que Piura y Apurimac
presentan dos colectas y dos especies cada
una; sin embargo es necesario realizar mas
esfuerzos de colectas y lugares puntuales,
como en Arequipa, Tacna y Apurimac, en
donde deben haber más especies que lo
documentado hasta ahora y representados
en los mapas, tomando en consideración la
tendencia del incremento de riquezas hacia
el sur.

Desde el punto de vista fitogeográfico.

las especies de Wernerin están distribuidas
en la región andina conocida como puna en
el Perú caracterizadas por presentar lluvias
exclusivamente estivales que disminuyen de
norte a sur y de oeste a este, pero a una escala
regional y en concordancia con (Cabrera,
1972) dentro de la provincias altoandina
y puneña y es la que más se acomoda en
relación a otros autores (Morrone, 2001;
Rivas-Martinez & Tovar. 1983; Olson et ni,
2001). Del mismo modo, la mayor riqueza
de especies se encuentra al sur del Perú
en la provincia puneña (Cabrera, op cit.)
conocida también como puna seca.

48 I ARNALDOA

Beltrán: Sinopsis del género Werneria (Asteraceae:Senec¡oneae) del Perú.

Fig. 1: Riqueza de especies de Wemeria en los departamentos del Perú.

Líneas negras representa las cordilleras principales. Tamaño de celda 0,5°= 55 km 2

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017

50 i ArnaldoA 2

ArnaldoA 24(i)|:

s. W:

52 I ARNALDOA Hip

II! *1

Beltrán: Sinopsis del género Werneria (Asteraceae:Senec¡oneae) del Perú.

FunK,V.A. 13164 (USM).

4. Werneria camulosa A. Gray, Proc.
Amer. Acad. Arts 5: 140. 1862. Tipo: Perú.
Junín. Casa Cancha. Wilkes expedition sn
(US: 42759).

Observación: Endémico del Perú y
conocida solo de dos localidades en Junín
y Lima sobre los 4600 m. Pequeña hierba
con hoja lineal a espabilado de hasta 12 mm
longitud, con márgenes cubiertos de cilios
multicelulares y capítulos discoideos.

Material representativo: Lima:

Huarochirí. Casapalca. V-1922. 4700 m,
Macbride & Featherstone 855 (L).

Werneria ciliata Wedd. ex Sch.Bip. =
Werneria pectinata Lingelsh.

Werneria ciliolata A. Gray= Xenophyllum
ciliolatum (A. Gray) V. A. Lunk, Novon
7(3): 239.1997.

5. Werneria cornea S. P. Blake, J. Wash.
Acad. Sci. 18: 497. 1928. Tipo: Huánuco.
Punco, Huallanca. X-1922. Macbride &
Featherstone 2477 (P, US).

Observación: Endémico del centro del
Perú entre los 4100 a 4800 m, registrada
desde La Libertad, Ancash, Huancavelica,
Junín y Pasco. La hoja ligeramente falcada,
margenes y vena central engrosada y el
ápice obtuso son inconfundibles en esta

Material Representativo: Ancash:
Carhuaz, Quebrada Honda. X-1985,4040 m,
Sniith, D. N. 11648 (USM).- Huancavelica:
Huaytara, Pillpichaca, VI-2010, 4800 m.
Cano, A. 19859 (USM).- Junín: Huancayo,
Huaytapallana, VI-1977, 4500 m, Pérez, O.
(USM).- La Libertad: Santiago de Chuco,
Shoreyo, VIII-1982,4100 m. Sniith, D.N. 2336
(USM).- Pasco: Pasco. Huayllay. XI-2015.
4700 m. Castillo, S. 1528 (USM).

Werneria dactijloplnjlla Sch.Bip.

Xenophyllum dactyophyllum (Sch. Bip.) V.
A. Lunk, Novon 7 (3): 239.1997.

Werneria decora S. P. Blake= Xenophyllum
decorum (S. P. Blake) V. A. Lunk, Novon
7(3): 239.1997.

Werneria decumbens Hieron =
Xenophyllum weddellii (Phil.) V. A. Lunk,
Novon 7(3): 240.1997.

Werneria digitata Wedd.= Xenophyllum
digitatum (Wedd.) V. A. Lunk, Novon 7(3):
239.1997.

Werneria esquilachensis Cuatrec.

Xenophyllum esquilachense (Cuatrec.) V. A.
Lunk, Novon 7(3): 239.1997.

6. Werneria glaberrima Philippi. Anales
Mus. Nac. Santiago de Chile: 40.1891. Tipo.
Chile. Tarapacá. Philippi s.n. (US:1403740).

Observación: Registrada para Bolivia,
Chile y Perú desde Ayacucho hasta Puno.
Con hojas lineales y margen denticulado,
capítulos radiados con flores marginales con
superficie dorsal violáceo y ventral blanco.

Material Representativo: Ayacucho:
Vilcashuamán, IX-2004, 4200 m. Bal deán,
S. 6178 (USM).- Arequipa: Ramón Castilla,
Orcopampa, IV-2000 m, 4900 m. Cano, A.
10099 (USM).- Moquegua: Mariscal Nieto,
Carumas, VI-2013, 4427 m, Beltrán, H. 7733
(USM).- Puno: Melgar, Antauta, IX-2011.
4700 m, Gonzáles, P. 1609 (USM).- Tacna:
Tarata, Casire, IV-1998. 4800 m. La Torre, M.
i 2435 (USM).

Werneria glandulosa Wedd. = Hypochaeris
sessiliflora Kunth

Werneria glareophila Cuatrec.= Anticotm
glareophila (Cuatrec.) E. Linares Perea, J.
Campos & A. Galán. Perspectiva 15 (17):
100. 2014.

7. Werneria heteroloba Wedd., Chlor.
Andina 1:88 (1856). Tipo: Bolivia: montagnes

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017

Beltrán: Sin

•\ género Wernería (Asteraceae:Senecioneae) del

des lagunas de Potosi. D'Orbigny 1415.
(Lectotipo P: PO2088558).

Observación: Conocida en Argentina,
Bolivia, Chile y Perú desde Ancash hasta
Puno. Hierba escaza solo en bofedales con
hojas pinnadas y capítulos discoideos.

Material Representativo: Ancash:
Collado sobre el rio Pumapampa, III-1983.
4500 m. Tonar, O. 9634 (USM).- Arequipa:
Castilla, Orcopampa, IV-2011, 4300 m,
Beltrán, H. 7109 (USM).- Huancavelica:
Huancavelica, Huachocolpa, VI-2007, 4621
m, Beltrán, H. 6397 (USM).- Moquegua:
Sánchez Cerro, Ubinas, IV-2011, 4400 m.
Montesinos, D. 3109 (USM).- Puno: Carabaya,
Quelcaya, 11-2009, 4800 m, Mondragón, A.
(USM).

Werneria Innnilis Kunth = Xenophyllum
hnmile (Kunth) V. A. Funk, Novon 7(3): 239.
1997.

Werneria incisa Phil. =Xenophyllum
incisum (Phil.) V. A. Funk, Novon 7(3): 239.
1997.

Werneria juniperina Hieron
Xenophyllum ciliolatum (A. Gray) V. A.
Funk, Novon 7(3): 238.1997.

Werneria lycopodioides S. F. Blake
=Xenophyllum lycopodioides (S. F. Blake)
V. A. Funk, Novon 7(3): 240.1997.

Werneria macbridei Cuatrec. = Senecio
repens DC. var. macbridei (Cuatrec.)
Cabrera.

Werneria muir ida Blake=

Xenophyllum marcidum (S. F. Blake) V. A.
Funk, Novon 7(3): 240.1997.

8. Werneria melanandra Wedd., Chlor.
Andina 1: 88. 1856. TIPO: Bolivia. La Paz.
Weddell sn. (P.)

Observación: Conocida solo de Bolivia
y Perú entre los 4300 a 4800 m. Para Perú

conocida de una sola colección en Puno;

lanceolada, de vez en cuando serrado de
7-10 mm long., y anteras violáceas.

Material representativo: Puno: Sandia,
V-1902, 4600 m, A. Weberbauer 1004 (B
probablemente destruido).

9. Werneria nubigetm Kunth in Humb.,
Bonpl. & Kunth, Nov. Gen. Sp. Pl. 4 (ed.
folio): 193. 1820. TIPO: Ecuador: Crescit in
frigidis montis Chimborazo, alt. 1700 hex.
(Regno Quitensi.) K. Floret Junio. Humboldt
& Bonpland 3191, (Holotioe: P-Bonpl;
isotype: B-W). Werneria dombeyana (Wedd)
Hieron, Jahrb. Syst. 21(3): 363.1895.

Observación: Es la especie del
género con amplia distribución desde
Centroamérica hasta Bolivia presenta gran
variabilidad morfológica, y considerado
quizás un complejo de especies a juzgar
por los sinónimos y es necesario un estudio
filogenético. En el Perú los individuos
encontrado desde Ancash hasta Amazonas
las hojas y capítulo son más grandes con
el pedúnculo elongado y las encontradas
desde Lima hasta Puno son pequeños con
el capítulo sésil a levemente elongado,
investigaciones más detalladas en este
complejo es probable que algunos nombres
considerados como sinónimos podrían ser
restituidas a nivel de especie.

Material representativo: Amazonas:
Chachapoyas, Molinopampa. VIII-1962,
3300 m, Wurdack, J. 1551 (USM).- Ancash:
Carhuaz, III-1964, 3400 m, Hutchinson, P.
4402 (USM).- Ayacucho: Lucanas, Putajasa,
11-2002, 3900 m. Cano, A. 11942 (USM).-
Cajamarca: Hualgayoc, Coymolache. VIII-
1952, 3400 m, Ferreyra, R. 8575 (USM).-
Cusco: Paucartambo, Tres cruces, III-1991.
3750 m. Cano, A. 4572 (USM).- Huánuco:
Sariapampa, Sariapampa. V-1946. 3600 m,
Woytkowski, F. sn (USM).- Huancavelica:

54 I ARNALDOA 2%^Íero-Junio,;

ArnaldoA 24(i)|:

lf ü

56 I ARNALDOA 2

Beltrán: Sinopsis del género Werneria (Asteraceae:Senec¡oneae) del Perú.

Orco pampa, IV-2011, 4800 m, Beltrán, H.
7113 (USM).- Cusco: Espinar, Condoroma,
IX-2009, 4100 m, Ramírez, IV. 620 (USM).-
Huánuco: Lauricocha, San Miguel de
Cauri. XII-2003. Salvador, F. 922 (USM).-
Huancavelica: Choclococha, Castrovirreina.
V-1958. Tovar, 0.2919 (USM).- Junín: Tarma,
Lago Junín, VII-1964, 4100 m, Hutchinson,
P. 5888 (USM).- Lima: Yauyos, Laraos, IV-
2011, 4500 m, Beltrán, H. 1717 (USM).- La
Libertad: Bolívar, III-2011, 3500 m. Silva,

I. 18 (USM).- Moquegua: Moquegua, IV-
2005, 4500 m, Aedo, C. 11286 (USM).- Pasco:
Racrcancha, VIII-1950, 4200 m. Infantes, J.
2426 (USM).- Puno: Quebrada Chuiquisani,
laguna Estancococha, 11-2006, 4200 m,
Roque, J. 4897 (USM).- Tacna: Tarata, Poma.
III-1998,4450 m. Cano, A. 8152 (USM).

16. Werneria pygmophyUa S. P. Blake,

J. Wash. Acad. Sci. 18: 491.1928. TIPO:
Perú; Moquegua; Cordillera E of Carumas.
Weberbauer, A. 7358 (Isotipo G: G00356025).

Observación: Endémica del Perú
conocida de dos colectas. Única por la
combinación de hojas suborbiculares con
márgenes crenados y capítulos discoideos.
El material examinado de Perú corresponde
a Werneria porque las filarías están soldadas,
aunque (Cabrera, 1949) lo sinonimiza con
Senecio digitatus Philp., especie descrita de
Chile, por lo que es recomendable comparar
materiales de ambos países y despejar la

Material representativo: Moquegua:
Mariscal Nieto. Carretera Binacional. III-
2014. 4446 m. FunK,V. A., 13153 (US).

Werneria sedoides S. ' r ■ 'jú-Blake =
Xenoplíijlluni marciñum (S. F. Blake) V. A.
Funk, Novon 7 (3): 240.1997.

Werneria setosa Wedd. ex Sch.Bip. =
Misbrookea strigosissima (A. Gray) V. A.
Funk, Brittonia 49(1): 111.1997.

17. Werneria solivifolia Sch.Bip.,
Bonplandia 4(4): 53 1856. TIPO: Perú.
Puno: Cordillera Puno. Leclüer, 1710b (K:
K00527612).

Observación: Colectada en Bolivia,
Chile y Perú desde Lima hasta Tacna y
Puno. Una hierba que crece en los bofedales,
con hojas pequeñas pinnadas, capítulos
discoideos, ápice del involucro y flores de
color púrpura.

Material representativo: Cusco:
Canchis, Marangani. La Raya, IV-1925,4500
m, Pennell, F. 13497 (USM).- Lima: Yauyos,
Laraos, III-1998, 4100 m, Beltrán, H. 433
(USM).- Moquegua: Sánchez Cerro, Yunga,
III-2011,4400 m. Montesinos, D. 3033 (USM).
- Tacna: Tarata, Barroso Chico, III-1998,4100
m. La Torre, M. 2224 (USM).

18. Werneria spathulata Wedd., Chlor.
Andina 1(3): 85, t. 17a. 1855. TIPO: Bolivia:
La Paz. Chuquiaguillo, Lancha 1851. Weddell

Observación: Conocida desde Perú,
Bolivia y Chile. En Perú colectada desde
Huancavelica hasta Puno entre los 4000 a
5000 m; recientemente mencionan como
nuevo registro para la flora Peruana
(Gonzáles, 2016) pero una colección de
Weberbabuer 986a fue realizada en 1902 y
dado a conocer por (Rockausen, 1939). Es
una especie diminuta por tal razón difícil
de observar está asociada a bofedales,
presenta hojas espatuladas completamente
glabras con capítulo radiado de 7-10 flores
marginales blancas y flores del disco
blanquecinas a violáceas.

Material representativo: Huancavelica:
Huachocolpa, III-2015, 4440 m, Gonzáles, P.
3514 (USM).- Moquegua: Mariscal Nieto,
Pampa Lepiche. V-2013. Ramírez, IV. 1028
(USM).- Puno: Sandia, Poto: V-1902, 4500
m, Weberbauer, A. 986a (B probablemente

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017

Beltrán: Sin

•\ género Wernería (Asteraceae:Senecioneae) del PÉtCÍ'

destruido).- Lima: Yauyos. La rao s, VII-
1997,4100 m, Beltrán, H. 2899 (USM).

Werneria staffordiae Sandwith =
Xenophylluni staffordiae (Sandwith) V. A.
Funk, Novon 7 (3): 240.1997.

19. Werneria staticifolia Sch.Bip„
Bonplandia 4(4): 53.1856. TIPO: Perú: Puno.
Cordillera San Gabán. VII-1854. Lechler
2212. (Lectótipo: P. P0208854).

Observación: Reportada solo para
Bolivia y en Perú solamente en Puno y
Cusco entre los 3500 a 5000 m. Dentro del
género pertenece al grupo de hojas grandes
hasta 35 cm longitud y de esta especies es
bastante angosta, pedúnculos elongados
con bractéolas filiformes.

Material representativo: Cusco:

Paucartambo. Kosñipata. Acjanaco.
VII-1991, 3500 m. Cano, A. 4908 (USM):
Paucartambo, Llutoyo, Chincheros, III-
1953, 3500 m, Woytkowski, F. 612 (USM).

Werneria strigosissinia A. Gray =
Misbrookea strigosissima (A. Gray) V. A.
Funk, Brittonia 49(1): 111.1997.

20. Werneria stuebetíi Hieron., Jahrb.
Syst. 21(3): 362-363. 1895. TIPO: Perú:
crescit prope Challuayacu Ínter Pacasmayo
et Moyobamba, alt. 3400 m., ubi floret mense
IV-VI, Stuebel 55c (lectótipo P: P02088547).

Observación: Considerado por algunos
autores sinónimo de IV. nubigena. Los
individuos de W. stuebelii presentan hojas
y pedúnculos bastante desarrollados y
en relación a su distribución están más
restringidos a las vertientes orientales
donde las condiciones de humedad son más
favorables. Ambas especies IV. nubigena
y IV. stuebelii necesitan de estudios más
detallados a nivel de poblaciones para
poder precisar sus límites.

Material representativo: Amazonas:

Chachapoyas, Molinopampa, VIII-1962,
3300 m, Wurdack, J. 1551 (USM).- Ancash:
Recuay, Recuay y Chavín, V-1962, 4300
m, Ferreyra, R. 14528 (USM).- Cajamarca:
Cajamarca, San Pedro de Lipiac, IX-2010,
3700 m, Beltrán, H. 6908 (USM).- Cusco:
Canchis, Marangani La Raya, IV-1925,
4350 m, Pennell, F. 13523 (USM).- Huánuco:
Pachitea, San Marcos, III-2010, 3400 m,
Beltrán, H. 6699 (USM).- La Libertad:
Sánchez Carrión, Sausacocha, 1-1983, 3100
m, Dillon, M. 2838 (USM).

21. Wertieria villosa A.Gray, Proc.
Amer. Acad. Arts. 5:139.1862.

TIPO: Junin. Yauli. Alpamarca.

Expedition under Captain Wilkes 1838-1842.
(Isótipo US: 42760)

Observación: Conocida de Bolivia,
Argentina y en Perú desde Cajamarca hasta
Puno entre los 3300-4900 m. Crece formando
agregados no compactos casi solitarios;
característico por tener hojas herbáceas
lineal-lanceoladas con abundante pilosidad
en la base; pedúnculos desarrollados
sobrepasando a las hojas; capítulos radiados
las flores marginales con la cara ventral
amarillo y el dorso rojizo. Considerado por
algunos autores como IV. pumila.

Material representativo: Ancash:

Bolognesi, Chiquián, IV-1949, Cerrate, E.
214 (USM).- Apurímac: Andahuaylas,

Pampachiri, III-2004, 4000 m. Vargas, L. 264
(USM).- Ayacucho: Huamanga, Acocro,
VI-2001, 4000 m, Roque, J. 3209 (USM). -
Cajamarca: Cajamarca, Bambamarca. VI-
1984. 3700 m. Smith, D. N. 7405 (USM).-
Cusco: Paucartambo, Teleban, VII-1990,
3700 m. Cano, A. 3825 (USM).- Huánuco:
Huánuco, Gayco, VI-1956, Cardicli, A. sn
(USM).- Huancavelica: Castrovirreyna,
Choclococha, V-1958, Tovar, O. 2937 (USM).-
Junín: Junin, Ondores, IX-1976, 4100 m,
Petterson, U. 102 (USM).- Lambayeque:

58 I ARNALDOA 2%^Íero-Junio,;

Beltrán: Sinopsis del género Werneria (Asteraceae:Senec¡oneae) del Perú.

Fe rre ñafe, Incahuasi, VII-1987, 3900 m,
Ferreym, R. 20914 (USM).- Lima: Yauyos,
Laraos, 111-1991, 4200 m, Beltrán, H. 1781
(USM).- La Libertad: Santiago de Chuco.
X-2002, 4200 m. Cano, A. 12725 (USM).-
Pasco: Bosque Piedra de Huayllay, VI-
1976. 4300 m, Urquizo, N. 39 (USM).- Puno:
Laguna Estancococha, 11-2006, 4300 m,
Roque , J. 4890 (USM).

22. Werneria weberbaueriana Rockh.,
Bot. Jahrb. Syst. 70: 323. 1939. TIPO: Perú.
Ancash: Cordillera Blanca bei Huaraz auf
dürftig bewaschesenem Steinschutt, V-
1903, 4300 - 4500 m, Weberbauer, A. 2984 (B
probablemente destruido).

Observación: Endémica del Perú Central
conocida solo para Ancash y Lima entre los
4300-5800 m., nombrada erróneamente en
los herbarios como IV. aretioides conocida
y colectada solo al sur de Perú y Bolivia.
Hierba compacta al parecer abundante

los roquedales, inconfundible por tener
la superficie dorsal de las hojas papiloso-
verrucoso, además capítulos radiados con
ambas flores amarillas.

Material representativo: Ancash:

Huaylas, V-2000, 4600 m. Cano, A. 10475
(USM).- Lima: Cajatambo, Raura. IV-1988.
5800 m. Rims, M. sn (USM).

Werneria weddellii Phil. = Xenophylltim
weddellii (Phil.) V. A. Funk, Novon 7 (3):
240.1997.

Werneria wernerioides (Wedd.) Kuntze
= Senecio breviscapus DC. Prodr. 6: 418.
1837[1838],

Agradecimientos

A los jefes de los Herbarios mencionados
por permitir el acceso para examinar las
colecciones y gestionar los préstamos. A
César Cáceres, Susy Castillo, Marijn van

den Brink, por compartir sus fotografías y a

José Roque por la revisión.

Literatura citada

Avila, F.; V. A. Funk; M. Diazgranados;S. Díaz-Piedra-
híta & 0. Vargas. 2015. Asteraceae. En Bernal, R.,
S.R. Gradstein & M. Celis (eds.). Catálogo de plan¬
tas y liqúenes de Colombia. Instituto de Ciencias
Naturales, Universidad Nacional de Colombia, Bo¬
gotá. http://catalogoplantascolombia.unal.edu.co

Brack, A. 1999. Diccionario Enciclopédico de Plantas
Útiles del Perú. Centro de Estudio Bartolomé de las
Casas. PNUD.

Brako, L. & J. Zarucchi. 1993. Catálogo de las angios-
permas y gimnospermas del Perú. Monographs in
systematic botany from Missouri Botanical Garden,
vol. 45. Missouri.

Blake, S. F. 1928. New South American species of Wer¬
neria. J. Wash. Acad. Sci. 18(18): 485-498.

Bohlmann, F; C. Zdero; R. M. King & H. Robinson.
1984. Prenylated p-coumarates from Werneria
stuebelii. Phytochemistry 23 5 1135 - 1137.

Cabrera, A. L. 1949. El género Senecio en Chile. Lilloa
15: 27-501.

Cabrera, A. L. & A. Willink. 1973. Biogeografía de
América Latina. Serie de biología, monografía n°
13. Washington D. C.: Secretaria General de la Or¬
ganización de los Estados Americanos.

Cerrate, E. 1969. Manera de preparar plantas para Her¬
bario. Mus. His. Nat. Serie de divulgaciones N.1.

Cuatrecasas, J. 1970. Observaciones sobre Composi-
tae. Anales Esc. Nac. C¡. Biol. (México) 18:9-15.

Funk, V. A. 1997a. Misbrookea, a new monotypic genus
removed from Werneria s.l. (Compositae: Senecio-
neae). Brittonia 49(1): 110-117.

Funk, V. A. 1997b. Xenophyllum , a New Andean Genus
Extracted from Werneria s.l. (Compositae; Senecio-
neae). Novon 7: 235-241.

Funk, V. A. 1997c. Werneria s.l. (Compositae: Sene-
cioneae) in Ecuador. In: Valencia, R. & H. Balslev
(eds), Estudios sobre diversidad y ecología de
plantas. Memorias del II Congreso Ecuatoriano de
Botánica. Univ. Catól. Quito: 25-35.

Gonzáles, P; E. Navarro; H. Trinidad; M. Cueva; I.
Al-Shehbaz & W. Ramírez. 2016. Doce nuevos
registros de plantas vasculares para los andes del
Perú. Arnaldoa 23 (1): 159-170.

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017

Beltrán: Sin

\ género Wernería (Asteraceae:Senecioneae) del fjffi'

Holmgren, P. K; N. H. Holmgren & L. C. Barnett. 1990.
Index Herbarorium, 8 ed. Regnum Vegetabilum
120:1-629.

Jorgensen, P. M.; M. H. Nee & S. G. Beck. (eds.) 2014.
Cat. Pl. Vasc. Bolivia, Monogr. Syst. Bot. Missouri
Bot. Gard.127(1-2): i-viii, 1-1744. Missouri Bota-
nical Garden Press, St. L0É& v ’' '

Jorgensen, RM.&S. León-Yánez. (eds.) 1999. Cat.
Vasc. Pl. Ecuador. Monogr. Syst. Bot. Missouri Bot.
Gard. 75: i-viii, 1-1181.

Katinas, L; D.Gutiérrez; G. Mariana &, J. Crisci. 2007.
Panorama de la Familia Asteraceae (= Composi-
tae) en la República Argentina. Bol. Soc. Argent.
Bot. 42 (1-2): 113 - 129.

Lock, O. 2006. Diversidad Química del Género teme¬
ría. Rev. Soc. Perú. Quím. v.72 n.1 Lima.

Schultz-Bipontinus, C. 1856. Lechler’s neueste
sammlungen aus Perú und Chile. Bonplandia (Han-
nover) 4: 52. Voyage de Humboldt et Bonpland.
Sixieme partie. Botanique. Nova Genera et species
Plantarum Tome Quatrieme.1820.

Soukup, J. 1987. Vocabulario de los Nombres Vulgares
de la Flora Peruana, Editorial Salesianos. Lima-Perú
p. 426.

Humboldt, A.; A. Von, Bonpland & C. S. Kunth. 1820.
Nova Genera et Species Plantarun. Wernería. 4:
148-151 plates.

Weddell, H. A. 1855. Chloris Andina I, XXXIV. Wernería.
6 Plates 16-17. 34.

Linares-Perea, E. 2Q J \¿\.Ant¡cona, un nuevo género an¬
dino relacionado con Wernería (Compositae). Rev.
Perspectiva 15(17): 99-102.

Lot, E. & F. Chiang (Compiladores). 1986. Manual de
Herbario. Consejo Nacional.

Marticorena, C. 1990. Contribución a la estadística de
la flora vascular de Chile. Gayana Botánica 47(3-4):
85-113.

Morrone, J. J. 2001. Biogeografía de América Latina y
el Caribe. Zaragoza: Manuales & Tesis SEA.

Olson, D. M; E. Dinerstein; E. D. Wikramanayake; N.
D. Burgess; G. V. N. Powell; E. C. Underwood;J.
A. D’Amico; H. E. Strand;J. C. Morrison;C. J.
Loucks;! F. Allnutt;J. F. Lamoreux;! H. Ricketts;
I. ltoua;W. W. WettengeLY. Kura, P. Hedao & K.
Kassem. 2001. Terrestrial eco-regions of the world:
A new map of lite on Earth. BioScience 51(11):
933-938. DOI: http://dx.doi.org/10.1641/0006-
3568(2001)051 [0933:TEOTWA]2.0.CO;2.

Philiphi, R. A. 1891. Catalogus Praevius Plantarum in
¡tiñere ad tarapaca a Friderico Philippi Lectarum.
Anales Mus. Nac. Santiago de Chile: 40.
Rivas-Martinez, S. & 0. Tovar. 1983. Síntesis biogeo-
gráfica de los Andes. Collectana Botánica 15: 515-
521.

Rockhausen, M. 1940. Vervandtschaft und Gliederung
der Compositen-Gattung Werneria. Bot. Jahrb.
Syst. 70(3): 273-342.

Rockhausen, M. 1939. Verwandtschaft und Gliederung
der Compositen-Gatcung Werneria. Botanische
JJahrb 70:273-339.

60 I ARNALDOA 2%^/Íero - Junio, 2017

Beltrán: Sinopsis del género Werneria (Asteraceae:Senec¡oneae) del Perú.

Fig. 3. A. Werneria apiculata; B. W caespitosa ; C. W. cornea ; D. W. glaberrima ; E. W. heteroloba ;
F. W. nubigena.

ARNALDOA 24 (1): Enero - Junio, 2017 I

Beltrán: Sin

•\ género Wernería (Asteraceae:Senecioneae) del

Fig. 4. A. Wernerin orbigmjnnn; B. Wpectinntn ; C. W. spnthulntn ; D. IV. solivifolin ; E. IV. villosn ;
F. W. weberbnuerinnn.

62 I ARNALDOA 2%^Íero-Junio,;

Arnaldoa 24 (1): 63 - 118,2017
http://doi.org/10.22497/arnaldoa.241.24105

ISSN: 1815-8242 (edición impresa)
ISSN: 2413-3299 (edición Online)

Las especies del género Iochroma Benth.
(Solanaceae) que habitan en la región La
Libertad, y un nuevo taxón del Norte del Perú

The species of genus Iochroma Benth. (Solanaceae)
inhabiting La Libertad Región, and a new taxon from
Northern Perú

64 I ARNALDOA 2

ArnaldoA 24(i)|:

i Libertad, \

Leiva: Las especies del género lochroma (Solanaceae) en la reglón La

objetivo principal de este trabajo.

Material y métodos

El material estudiado corresponde a las
recolecciones efectuadas principalmente
en la segunda mitad del siglo pasado por
M. Weigend (B), T. Mione & L. Yacher
(CCSU), M. Dilion (F), S. D. Smith (). H.
Beltrán (USM), V. Quipuzcoa (HSP), A.
López M. (HUT), A. Sagástegui A. (HAO,
HUT), E. Rodríguez R. et ni. (HUT), S. Leiva
G. (HAO), entre otros, en las diferentes
expediciones realizadas a la región La
Libertad (=departamento La Libertad),
Perú, entre los 1700 m hasta los 3450 m
de elevación a fin de obtener colecciones
botánicas intensivas para la realización de
la monografía ilustrada del género. Las
recolecciones se encuentran depositadas
principalmente en los Herbarios: CCSU, F.
HAO, HSP, HUT, MO, USM, entre otros.
Además, el estudio está basado en la revisión
de material de estas instituciones botánicas,
cuyas determinaciones registradas en
las etiquetas han sido efectuadas por
especialistas a través del tiempo, como: S. D.
Smith, M. Nee, W. D'Arcy, A. T. Hunziker.
Adicionalmente, se revisó los portales
de instituciones extranjeras que alojan
colecciones botánicas para las especies
peruanas, tales como: TROPICOS-Base
de Datos del Missouri Botanical Garden
Herbarium (MO) (Trópicos, 2016) y The
Field Museum (F) (The Field Museum,
2016). También, se efectuó la revisión crítica
de la bibliografía especializada disponible.

La contrastación específica se efectuó
con el "Catálogo de las Angiospermas y
Gimnospermas del Perú" en el capítulo de
Solanaceae (Brako & Zarucchi, 1993) y sus
adiciones (Ulloa Ulloa, 2004). Asimismo,
con el apoyo del "Catálogo de las Plantas
Vasculares del Ecuador" (Jorgensen & León-
Yánez, 1999). Para el caso de endemismos

se consultó el "Libro rojo de las plantas
endémicas del Perú" (León et ni, 2006) y el
"Libro Rojo de las Plantas Endémicas del
Ecuador" (Valencia et al, 2000).

Para cada especie se presentan dibujos
y fotografías, cuyos créditos pertenece
al autor de este trabajo; asimismo, datos
de su distribución geográfica y ecología,
fenología, estado actual de conservación y
usos. La distribución de las especies en el
Perú se abrevia por región (=departamento)
de acuerdo a los topónimos utilizados en
Brako & Zarucchi (1993): AN= Ancash,
CA=Cajamarca, LI= Lima, LL=La Libertad,
PI=Piura.

La lista completa de sinónimos para
las especies si las tuvieran, así como la
confirmación de los nombres científicos y
nombres de los autores, pueden consultarse
en el "Catálogo de las Angiospermas y
Gimnospermas del Perú" y en los portales
de internet: The Plant List (The Plant List,
2016) y TROPICOS-Base de Datos del
Missouri Botanical Garden Herbarium (MO)
(Trópicos, 2016). Los detalles completos
de las publicaciones de las especies se
encuentran en este último portal y en The
International Plant Ñames Index (IPNI)
(IPNI, 2016).

Los acrónimos de los herbarios son
citados según Thiers (2016).

Las especies se encuentran distribuidas
en la zona fitogeografica Amotape-
Huancabamba en su parte sureña (Weigend,
2002,2004).

66 I ARNALDOA 2%^Íero-Junio,;

>s que ocupan el basal (6-6,2 m d

5 29,8-36 cm de largo por 11,7-12,3 c

? las hojas 12,8-13,5 cm de largo por 6,5-8 cm de a

ArnaldoA 24(i)|:

) y 2 cortos (15,7-16,5 mm c

ij. Bot. 7: 347,1
o 3-3,5 m de <

10-13 (-20) mm de diámetro en la

68 I ARNALDOA 24¡tí)v :

ArnaldoA 24(i)|:

70 I ARNALDOA 2%fji ; liero - Junio, 2017

Leiva: Las especies del género lochroma (Solanaceae) en la región La Libertad, y un nuevo taxón del Norte del FfÉf|>

Fig. 2. lochroma comifolium (Kunth) Miers. A. Planta; B. Ápice de rama; C. Flores en antésis; D.
Frutos. (Fotografías: S. Leiva 2702, HAO).

ARNALDOA 24 (1): Enero - Junio, 2017 I 71

5 (-6) mm de largo por (1,8-) 2-2,1 mm

)mm de largo por 3-3,1 mm de c

i S. Leiva & Quip. (ver S. Leiva

72 I ARNALDOA 2

ArnaldoA 24(i)|:

ArnaldoA 24(i)|:

Leiva: Las especies del género lochroma (Solanaceae) en la región La Libertad, y un nuevo taxón del Norte del Perú

Fig. 3. lochroma viridescens S. Leiva. A. Gineceo; B. Rama florífera; C. Cáliz; D. Flor en antésis; E.
Corola desplegada; F. Antera en vista ventral; G. Antera en vista lateral. (Dibujado S. Leiva & P.
Leiva 534, HAO).

76 I ARNALDOA 2%fjt ; ,Íiero - Junio, 2017

i región La Libertad, 5

Fig. 4. lochroma viridescens S. Leiva. A.-B. -C. Ramas floríferas; D. Flor en antésis en vista ventral;
E. Flor en antésis en vista lateral; F. Frutos inmaduros. (Fotografías S. Leiva 2701 , HAO).

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017

78 I ARNALDOA 2

ArnaldoA 24(i)|:

Leiva: Las especies del género lochroma (Solanaceae) en la región La Libertad, y un nuevo taxón del Norte del ftift >

ARNALDOA 24 (1): Enero - Junio, 2017 I 81

82 I ARNALDOA 2

ArnaldoA 24 (1)¿

ArnaldoA 24(i)|:

Leiva: Las especies del género lochroma (Solanaceae) en la región La Libertad, y un nuevo taxón del Norte del Perú

Fig. 7. lochroma cachicadanum S. Leiva. A. Sección transversal del ovario; B. Fruto; C. Flor en
antésis; D. Rama florífera; E. Antera en vista dorsal; F. Antera en vista lateral; G. Semilla; H. Antera
en vista ventral; I. Embrión; J. Corola desplegada; K. Gineceo. (Dibujado S. Leiva, T. Mione & L.
Yacher 5414, HAO).

86 I ARNALDOA 2 %fjt\Éiero - Junio, 2017

Leiva: Las especies del género lochroma (Solanaceae) en la región La Libertad, y un nuevo taxón del Norte del FtjÍ>

ARNALDOA 24 (1): Enero - Junio, 2017 I 87

88 I ARNALDOA 24¡t^ ; :

ArnaldoA 24(i)|:

Leiva: Las especies del género lochroma (Solanaceae) en la región La Libertad, y un nuevo taxón del Norte del Perú

Fig. 9. lochroma tupayachanum S. Leiva. A. Fruto; B. Flor en antésis; C. Rama florífera; D. Antera
en vista ventral; E. Gineceo; F. Antera en vista lateral; G. Corola desplegada; H. Semilla; 1. Cáliz; J.
Antera en vista dorsal. (Dibujado S. Leiva 3149, HAO).

90 I ARNALDOA 2 %fjt ; ,Íiero - Junio, 2017

Leiva: Las especies del género lochroma (Solanaceae) en la región La Libertad, y un nuevo taxón del Norte del Ftɧ|>

ARNALDOA 24 (1): Enero - Junio, 2017 I 91

92 I ARNALDOA 24$t { ;

ArnaldoA 24 (1)¿

94 I ARNALDOA 2

ArnaldoA 24 (1)¿

Leiva: Las especies del género lochroma (Solanaceae) en la región La Libertad, y un nuevo taxón del Norte del Perú

Leiva. A. Fruto; B. Semilla; C. Flor en antésis;
D. Rama florífera; E. Embrión; F. Gineceo; G. Sección transversal del ovario; H. Antera en vista
ventral; I. Cáliz; J. Antera en vista lateral; K. Antera en vista dorsal; L. Corola desplegada. (Dibujado

S. Leiva, E. Pereyra, K. Lezama&M. Leiva 3625, HAO).

96 I ARNALDOA 24'#t É|$a - Junio, 2017

i región La Libertad, 5

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017

98 I ARNALDOA 24p ; :

ArnaldoA 24(i)|:

Leiva: Las especies del género lochroma (Solanaceae) en la región La Libertad, y un nuevo taxón del Norte del Perú

F. Antera en vista lateral; G. Antera en vista ventral; H. Antera en vista dorsal; 1. Corola desplegada.
(Dibujado S. Leiva 943, HAO).

100 I ARNALDOA 2%fjt ; ,Íiero - Junio, 2017

Leiva: Las especies del género lochroma (Solanaceae) en la región La Libertad, y un nuevo taxón del Norte del Ftɧ.>

Fig. 14. lochroma edule S. Leiva,. A. Planta; B.-C.-D.-E. Flores en antésis; F. Frutas maduras.
(Fotografías S. Leiva 943, HAO).

ARNALDOA 24 (1): Enero - Junio, 2017 I 101

ArnaldoA 24(1 i;

ArnaldoA 24(i)|:

104 i ArnaldoA 2

ArnaldoA 24(i)|:

Leiva: Las especies del género lochroma (Solanaceae) en la región La Libertad, y un nuevo taxón del Norte del Perú

Fig. 15. lochroma mbicalyx S. Leiva & Jara,. A. Fruto; B. Antera en vista ventral; C. Flor en antésis;
D. Rama florífera; E. Antera en vista lateral; F. Gineceo; G. Semilla; H. Antera en vista dorsal.
(Dibujado S. Leiva & J. Jara 5436 , HAO).

106 I ARNALDOA 2%fjt ; ,Íiero - Junio, 2017

i región La Libertad, 5

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 107

ArnaldoA 24(1 i;

ArnaldoA 24(i)|:

. (Dibujado S. Leiva, P. Leiva & N. Leiva 542 , HAO).

lio I ArnaldoA 2 Mp,

Leiva: Las especies del género lochroma (Solanaceae) en la región La Libertad, y un nuevo taxón del Norte del FtjÍ>

ARNALDOA 24 (1): Enero - Junio, 2017 I 111

mi

112 i ArnaldoA 2

ArnaldoA 24(i)|:

Museo Botánico, de la Universidad Nacional
de Córdoba, Argentina, por haberme
apoyado en la redacción concerniente a la
historia del género Iochroma. A Luis Chang
Chávez, del Museo de Historia Natural y
Cultural de la Universidad Privada Antenor
Orrego de Trujillo, Perú, por la traducción
del abstract y la diagnosis.

Literatura citada

Baehni, C. 1960. La Reunión des collections De Can-
dolle, delessert et Boissier au conservatoire botani-
que de Genéve. Taxon 9(3): 86.

Bentham, G. 1845. Edwards’s Botanical Register or,
ornamental flower-garden an shrubbery 31: 20-21.
Brako, L. & J. L. Zarucchi. (eds.) 1993. Catalogue of
"" MHÍ Flowering Plants and Gymnosperms of Perú.
Monographs in Systematic Botany from the Mis¬
souri Botanical Garden 45:1106-1107.

Brummitt, R. K. 1993. Report of the Committee for
Spermatophyta: 38. Taxon 42:692-693.

Cueva, M. A.; S. D. Smith & S. Leiva. 2015. A new
and endangered species oí Iochroma (Solanaceae)
from the cloud forests of central Perú and its Phylo-
genetic position in lochrominae. Phytotaxa 227 (2):
147-157.

D’Arcy, W. G. 1989. (950) Proposal to add Trozelia as
a rejected ñame under 7382 Iochroma, nom. cons.
(Solanaceae). Taxon 38: 509-510.

Hunziker, A. T. 1977. Estudios sobre Solanaceae VIII.
Novedades varias sobre Tribus, secciones y espe¬
cies de Sud América. Kurtziana 10:7-50.

Hunziker, A. T. 1979 South American Solanaceae: A
Synopthic Survey. In J. G. Hawkes, R. N. Lester
and A. D. Skelding (eds.). The Biology and Taxon-
omy of the Solanaceae, pp 49-85. Linnean Society
Symposium Series N° 7 Academic Press. London
and New York.

Hunziker, A. T. 2001. Genera Solanacearum. A.R.G.

Ganther Verlag K.G. Alemania: 500 pp.

IUCN. 2012. IUCN Red List Categories and Criteria :
Versión 3.1. IUCN Species Survival Commission.
IUCN, Gland, Switzerland and Cambridge, UK, 70

pp.

Jorgensen, R M. & S. León-Yánez. 1999. Catalogue of
the Vascular Plants of Ecuador. Monographs in Sys¬
tematic Botany from the Missouri Botanical Garden

75: 904.

irrence, G. H. M. & J. M. Tucker. 1955. Baileya 3
( 2 ): 66 .

Leiva, S. 1995. Una nueva especie de Iochroma (So¬
lanaceae: Solaneae) del Norte del Perú. Arnaldoa
3(1): 41-44.

Leiva, S. & P. Lezama. 2005. Iochroma albianthum e
Iochroma ayabacense (Solanaceae: Solaneae) dos
nuevas especies del Departamento de Piura, Perú.
Arnaldoa 12 (1-2): 72-80.

Leiva, S. 2006. Iochroma tupayachianum (Solanaceae:
Solaneae) una nueva especie del Departamento La
Libertad, Perú. Arnaldoa 13 (2): 276-281.

Leiva, S. 2007. Iochroma pluranum (Solanaceae) una
nueva especie del Departamento de Piura, Perú.
Arnaldoa 14 (2):213-218

Leiva, S. 2009. Iochroma lilacinum e Iochroma tingoa-
num (Solanaceae) dos nuevas especies del Norte
del Perú. Arnaldoa 16 (1J.^3

Leiva, S. 2013. Iochroma richrardianthum (Solana¬
ceae) una nueva especie del Norte del Perú. Arnal¬
doa 20 (2): 281-290.

Leiva, S.; V. Quipuscoa & N. W. Sawyer. 1998. lochro-
ma stenanthum (Solanaceae: Solaneae) una nueva
especie del Norte del Perú. Arnaldoa 5 (1): 77-82.

Leiva, S. & V. Quipuscoa. 1998. Iochroma nitidum e
I. schlellerupii (Solanaceae: Solaneae) dos nuevas
especies andinas del Norte del Perú. Arnaldoa 5
(2): 171-178.

Leiva, S.; P. Lezama & V. Quipuscoa. 2003. Iochroma
salpoanum y Iochroma squamosum (Solanaceae:
Solaneae) dos nuevas especies andinas del Norte
del Perú. Arnaldoa 10 (1): 95-104.

Leiva, S.; R. Deanna & J. Jara. 2013. Tres nuevas
especies de Iochroma Bentham (Solanaceae) del
Norte del Perú. Arnaldoa 20 (1|^4.

Leiva, S.; G. Gayoso; L. Chang & M. Leiva. 2016. Las
frutas de los Dioses. Universidad Privada Antenor
Orrego, Perú. pp. 108.

Leiva, S. 2014. Iochroma cachicadanum (Solanaceae)
una nueva especie del Norte del Perú. Arnaldoa 21
(2): 279-294.

Leiva, S. & S. Smith. 2016. Iochroma mioneii (Solana¬
ceae) una nueva especie del Norte del Perú. Arnal¬
doa 23 (1): 9-20.

León, B.; K. Young; J. Roque & A. Cano. 2010. Nue¬
vos registros de plantas de la zona alta del Parque

114 I ARNALDOA 2 %fjt ; liero - Junio, 2017

i región La Libertad, 5

Nacional Rio Abiseo, Perú. Arnaldoa 17 (1): 51-83.

López, A. 1993. Catálogo de la Flora del Departamento
de La Libertad (Primera Parte). Orchidaceae. Arnal¬
doa 1(3): 35-37.

Lezama, K.; E. Pereyra; S. Limo & S. Leiva. 2007. lo-
chroma smithianum (Solanaceae) una nueva espe¬
cie del Departamento La Libertad, Perú. Arnaldoa
14 (1): 23-28.

Miers, J. 1848. Contribution to the Botany of South
America. Hooker's London Journal of Botany 7:
342-347.

Olmstead, R.: L. Bohs; H. A. Migid; E. Santiago-Valen-
tín; V. F. García & S. M. Collier. 2008. A molecular
phylogeny of the Solanaceae. Taxon 57 (4): 1159-
1181.

Ulloa Ulloa, C.; J. L. Zarucchi & B. León. 2004. Diez
años de adiciones a la Flora del Perú: 1993-2003.
Arnaldoa (Edic. Espec., Nov. 2004): 1-242.

UICN. 2012. Categorías y Criterios de la Lista Roja de la
UICN: Versión 3.1. Segunda edición. Gland, Suiza y
Cambridge, Reino Unido: UICN. vi + 34pp.

Weigend, M. 2002. Observations on the Biogeography
of the Amotape-Huancabamba Zone in Northern
Perú. In: K. Young et al., Plant Evolution and Ende-
misminAndean South America. Bot. Review68(1):
38-54.

íigend, M. 2004. Add
geography of the Amotape-Huancabamba zone ii
Northern Perú: Defining t' ‘

Rev. per. biol. 11(2): 127-134.

Sárkinen, I; L. Bohs; R. G. Olmstead & S. Knapp.

2013. A phylogenetic framework study of the
nightshades (Solanaceae): a dated 1000-tip tree.
BMC Evolutionary Biology 13: 214. http://dx.doi.
org/10.1186/1471-2148-13-214.

Smith, S. D. & D. A. Baum. 2006. Phylogenetics of the
, ífpjtlly diverse andean ciado lochrominae (Solana¬
ceae). American Journal of Botany 93(8): 1140 -
1153

Smith, S. & S. Leiva. 2011. A New Species of lochroma
(Solanaceae) from Ecuador. Novon 21:491-494.

Solanaceae Source, lochroma. http://solanaceae.
myspecies.info/solanaceae/iochroma [accedido
11.06.2013],

Stevens, P. F. (2001 onwards). 2016. Angiosperm Phy¬
logeny Website. Versión 13. Disponible en: http://
www.mobot.org/MOBOT/research/APweb. Acce¬
so: 17 de octubre del 2016.

The Field Museum. 2016. The Field Museum. Dispo¬
nible en: http://emuweb.fieldmuseum.org/botany/
detailed.php. Acceso: 12 de setiembre del 2016.

The Plant List. 2016. The Plant List. A working list of
all plant species. Versión 1.1.2016. Disponible en:
http://www.theplantlist.org. Acceso: 22 de agosto
del 2016.

Thiers, B. 2016. Index Herbariorum: A global directory
of public herbaria and associated staff. New York
Botanical Garden’s Virtual Herbarium. Disponible
en: http://sweetgum.nybg.org/ih/. Acceso: 1 de
agosto del 2016.

Trópicos. 2016. Tropicos.org. Missouri Botanical Gar-
den. Disponible en: http://www.tropicos.org. Acce¬
so: 18 de agosto del 2016.

ArnaldoA ^ En

o, 2017 1 115

116 I ARNALDOA 2 %fji ; liero - Junio, 2017

i región La Libertad, 5

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 117

118 I ARNALDOA 24 fí): Efi

Arnaldoa 24 (1): 119 - 206, 2017
http://doi.org/10.22497/arnaldoa.241.24

ISSN: 1815-8242 (edición impresa)
ISSN: 2413-3299 (edición Online)

El género Jaltomata Schltdl. (Solanaceae) en la
región La Libertad y un nuevo taxón del Norte
de Perú

The genus Jaltomata Schltdl. (Solanaceae) from La
Libertad Región and a new taxon from Northern Perú

l,( 20-) 71-90 seeds perberry,s

s 0.70-1.2 m tall. i

120 I ARNALDOA 2%^ ; ,Íiero - Junio, 2017

ArnaldoA 24(i)|:

ARNALDOA 24 (i|:

L. Gentry y, J. edulis es un s

■ S. Leiva & Mione en el

:ta en el V 4

ArnaldoA 24(i)|:

124 I ARNALDOA 2

8. Corola con el

? las hojas (1,2-) 2,5-2,7 cm de largo por (-0,7) 1,2-14 c

ina de las hojas (3,7-) 5-8 cm de largo por 2-4 c
5 6-8,5 mm de largo por 8-11 mm de diámetro.

o el V 4 distal, arbustos 70-90 c

ARNALDOA 24 (1): Enero - Junio, 2017 I 125

a el 60-70% de su

3 que ocupa el 50-60% de su

(Fig. 1-2)

itUa S. Leiva &

Perú. Arnaldoa 17 (2): 163-

ARNALDOA 24 (i|:

ArnaldoA 24(i)|:

t región La Libertad 5

I Norte é féS:

128 I ARNALDOA 2%^ ; ,Íiero - Junio, 2017

eiva et al: Jaltomata Schltdl. (Solanaceae) en la reglón L

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 129

ArnaldoA 24(1 i;

ArnaldoA 24 (1)¿

ArnaldoA 24(1 i;

ArnaldoA 24(i)|:

eiva et al: Jaltomata Schltdl. (Solanaceae) en la reglón L

Fig. 4. Jaltomata sanchez-vegae Mione & S. Leiva,. A. Rama florífera; B. Flores en antésis en
vista lateral; C. Corola desplegada mostrando base de los estambres y ovario; D. Anteras en vista
dorsal y vista ventral; E. Bayas maduras dehiscente. (Fotografías T. Mione, S. Leiva & L. Yacher 832,
CCSU-HAO).

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 135

ArnaldoA 24(1 i;

ArnaldoA 24(i)|:

ArnaldoA 24(1 i;

ifliílt

ArnaldoA 24(i)|:

Leiva et al: Jaltomata Schltdl. (Solanaceae) en la reglón La Libertad y un nuevo taxón del Nortejjlf

Fig. 5. Jaltomata ventricosa (Baker) Mione & M. Nee,. A. Corola; B. Antera en vista lateral; C%‘
Corola desplegada; D. Antera en vista dorsal; E. Antera en vista ventral; F. Gineceo; G. Rama
florífera; H. Fruto; I. Flor en antésis. (Dibujado: S. Leiva 733, HAO).

140 I ARNALDOA 2%fjt ; ,Íiero - Junio, 2017

eiva et al: Jaltomata Schltdl. (Solanaceae) en la reglón L

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 141

142 I ARNALDOA 2

ArnaldoA 24(i)|:

; J. Estambre en vista ventral. (Dibujado: S. Leiva, T. Mione & L. Yacher 2337, HAO).

ARNALDOA 24(1 i;

eiva et al: Jaltomata Schltdl. (Solanaceae) en la reglón L

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 145

146 I ARNALDOA 2

ArnaldoA 24(i)|:

147

148 I ARNALDOA 2^;

ArnaldoA 24(i)|:

eiva et al: Jaltomata Schltdl. (Solanaceae) en la reglón l4j¿Íf

ARNALDOA 24(1): Ene

o, 2017 1 151

ArnaldoA 24(1 i;

ArnaldoA 24(i)|:

154 I ARNALDOA 24'#t 3$n - Junio, 201 7

eiva et al: Jaltomata Schltdl. (Solanaceae) en la región L|J¿|f

ARNALDOA 24(1): Ene

o, 2017 1 155

ArnaldoA 24(1 i;

ArnaldoA 24(i)|:

1 , 5 - 2 , 5 .

ArnaldoA 24(1 i;

ArnaldoA 24(i)|:

Leiva et al: Jaltomata Schltdl. (Solanaceae) en la reglón La Libertad y un nuevo taxón del Nortejjlf

Fig. 13. Jaltomata salpoensis S. Leiva & Mione,. A. Fruto; B. Flor en antésis; C. Antera en vista
lateral; D. Antera en vista dorsal; E. Gineceo; F. Rama florífera; G. Corola desplegada; H. Estambre
en vista ventral. (Dibujado: S. Leiva 1724, HAO).

160 I ARNALDOA 2%fjt\Éiero - Junio, 2017

Leiva et al: Jaltomata Schltdl. (Solanaceae) en la reglón La Libertad y un nuevo taxón del Norte de Perú

ARNALDOA 24 (1): Enero - Junio, 2017 I 161

HAO)

ArnaldoA 24(1 i;

ArnaldoA 24(i)|:

HAO) 8 ' J ' J

164 I ARNALDOA 2%^\Íero - Junio, 2017

eiva et al: Jaltomata Schltdl. (Solanaceae) en la reglón L

Fig. 16. Jaltomata nigricolorS. Leiva&Mione,. A. Floren antésis . (Fotografías: T. Mione 718, CCSU).

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 165

ArnaldoA 24(1 i;

ArnaldoA 24(i)|:

eiva et al: Jaltomata Schltdl. (Solanaceae) en la reglón L

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 169

170 i ArnaldoA 2

ArnaldoA 24(i)|:

171

172 I ARNALDOA 2

ArnaldoA 24 (1)¿

173

& L Yacher 5418, HAO).

174 I ARNALDOA 2

eiva et al: Jaltomata Schltdl. (Solanaceae) en la reglón L

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 175

176 I ARNALDOA 2

ArnaldoA 24(i)|:

177

178 I ARNALDOA 2

eiva et al: Jaltomata Schltdl. (Solanaceae) en la reglón ijíifji

ARNALDOA 24(1): Ene

o, 2017 1 179

ArnaldoA 24(1 i;

ArnaldoA 24(i)|:

ArnaldoA 24(1 i;

ArnaldoA 24(i)|:

eiva et al: Jaltomata Schltdl. (Solanaceae) en la reglón L

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 185

ArnaldoA 24(1 i;

ArnaldoA 24(i)|:

umbellnhmi (Ruiz & Pav.) Hunz. ex D'Arcy

(L. f.)

en) en el borc
) por (3-) 4-6 c

i 3-5 (-8) por nudo; no s

ArnaldoA 24(1 i;

ArnaldoA 24(i)|:

eiva et al: Jaltomata Schltdl. (Solanaceae) en la reglón L

Fig.26. Jaltomata tmxillana S. Leiva & Mione,. A. Rama; B-C. Flores en antésis. (Fotografías: T.

Mione, 652, CCSU).

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 191

ArnaldoA 24(1 i;

ArnaldoA 24(i)|:

Fig. 27. Jaltomata angasmarcae S. Leiva & Mione, A. Flor en antésis; B. Fruto; C. Semilla; D. Antera
en vista dorsal; E. Rama florífera; F. Antera en vista lateral; G. Estambre en vista ventral; H. Gineceo;

HAO).

194 I ARNALDOA 2

eiva et al: Jaltomata Schltdl. (Solanaceae) en la reglón L

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 195

de 2-2,4

mm de largo porl,6-l,8 mm c

ArnaldoA 24(1 i;

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 197

m

eiva et al: Jaltomata Schltdl. (Solanaceae) en la reglón L

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 199

ArnaldoA 24(1 i;

ArnaldoA 24(i)|:

ArnaldoA 24(1 i;

eiva et al: Jaltomata Schltdl. (Solanaceae) en la reglón L

y cultural que necesita de más estudios.

Usos: Frutas silvestres, las bayas
rojo anaranjadas son cosechadas por los
pobladores en las regiones de recolección,
para ser consumidas como frutas frescas
por su agradable sabor y exquisitez.

Nuestra gratitud a las autoridades de
la Universidad Privada Antenor Orrego
de Trujillo, por su constante apoyo y
facilidades para la realización de las
expediciones botánicas.

Literatura citada

D’Arcy, W.G. 1986. The Genera of Solanaceae and their
types. Solanaceae Newsletter 2(4); 10-33.

D’Arcy, W.G. 1991. The Solanaceae since 1976, with a
Review ot its Biogeography. In J.G. Hawkes, R.N.
Lester, M. Nee and N. Estrada (eds.). Solanaceae
III. Taxonomy, Chemistry, Evolution, pp. 75-137.
The Royal Botanic Gardens Kew, Richmond. Surrey,
UK for The Linnean Society of London.

Davis, T. 1980. The generic relationship of Saracha and
Jaltomata (Solanaceae: Solaneae). Rhodora 82:
345-352.

Hunziker, A. 1979. South American Solanaceae: a
Synoptic Survey. In J. G. Hawkes, R. N. Lester and
A. D. Shelding (eds.). The Biology and Taxonomy
of the Solanaceae. pp. 49-85. Linnean Society
Symposium Series NE 7 Academic Press, London
and New York.

Hunziker, A. T. 2001. Genera Solanacearum. A. R. G.

Ganther Verlag. K. G. Alemania. 500 pp.

IPNI. 2016. The International Plant Ñames Index.
Disponible en: http://www.ipni.org/. Acceso: 30 de
julio del 2016.

Jorgensen, P. M. & S. León-Yanez. 1999. Catalogue of
the Vascular Plants of Ecuador. Monogr. Syst. Bot.
Missouri Bot. Garden. Vol. 75:1-1181.

Leiva, S.; T. Mione & V. Quipuscoa. 1998. Cuatro
nuevas especies de Jaltomata Schlechtendal
(Solanaceae: Solaneae) del Norte de Perú. Arnaldoa
5 (2): 179-192.

Leiva, S. & T. Mione. 1999. Dos nuevas especies de
Jaltomata Schlechtendal (Solanaceae-Solaneae)

del Norte de Perú. Arnaldoa 6 (1): 65-74.

Leiva, S. 2006. Jaltomata alviteziana y Jaltomata
dilloniana (Solanaceae) dos nuevas especies de los
Andes del Perú. Arnaldoa 13 (2): 282-189.

Leiva, S.; T. Mione & L. Yacher. 2007. Tres nuevas
especies de Jaltomata Schlechtendal (Solanaceae)
del Norte del Perú. Arnaldoa 14 (1): 29-44.

Leiva, S.; T. Mione & L. Yacher. 2007. Cuatro nuevas
especies de Jaltomata Schlechtendal (Solanaceae)
del Norte del Perú. Arnaldoa 14 (2): 219-238.

Leiva, S.; T. Mione & L. Yacher. 2008. Dos nuevas
especies de Jaltomata Schlechtendal (Solanaceae)
del Norte del Perú Arnaldoa 15 (2): 185-196.

Leiva, S.; T. Mione & L. Yacher. 2010. Jaltomata
parviflora (Solanaceae) una nueva especie del
Norte del Perú, Arnaldoa 17 (1): 33-39.

Leiva, S.; T. Mione & L. Yacher. 2010. Modillonia
una nueva sección de Jaltomata Schlechtendal
(Solanaceae) con una nueva especie del Norte del
Perú, Arnaldoa 17 (2): 163-171.

Leiva, S.; T. Mione & L. Yacher. 2013. Jaltomata
huancabambae y Jaltomata incahuasina
(Solanaceae) dos nuevas especies del Norte del
Perú, Arnaldoa 20 (2): 265-280.

Leiva, S.; T. Mione & L. Yacher. 2014a. Jaltomata
angasmarcae y Jaltomata pauciseminata
(Solanaceae) dos nuevas especies del Norte del
Perú, Arnaldoa 21 (1): 25-40.

Leiva, S.; T. Mione & L. Yacher. 2014b. Jaltomata
athahuallpae (Solanaceae) una nueva especie del
Norte del Perú, Arnaldoa 21 (2): 295-304.

Leiva, S.; T. Mione & L. Yacher. 2015. Jaltomata
glomeruliflora (Solanaceae) una nueva especie del
Norte del Perú, Arnaldoa 22 (1): 25-34.

Leiva, S.; T. Mione & L. Yacher. 2015. Jaltomata
anteropilosa (Solanaceae) una nueva especie del
Norte del Perú, Arnaldoa 22 (2): 57-366.

Leiva, S. 2006. Jaltomata alviteziana y Jaltomata
dilloniana (Solanaceae) dos nuevas especies de los
Andes del Perú. Arnaldoa 13(2): 282-289.

León, B.; K. Young; J. Roque & A. Cano. 2010. Nuevos
registros de plantas de la zona alta del Parque
Nacional Rio Abiseo, Perú. Arnaldoa 17 (1): 51-83.

Knapp, S.; T. Mione & A. Sagástegui. 1991. A
new species of Jaltomata (Solanaceae) from
northwestern Perú. Brittonia 43 (3): 181-184.

Mione, T. 1992. Systematics and evolution oí Jaltomata

ArnaldoA En

o, 2017

t región La Libertad 5

I Norte efe

(Solanaceae) Ph. D. dissertation, University of
Connecticut Storrs, CT.

Mione, T. & F. Coe. 1992. Two new combinations in
Peruvian Jaltomata (Solanaceae) Novon 2: 383-
384.

Mione, I; G. Anderson & M. Nee. 1993. Jaltomata I:
circumscription, description and new combinations
for five South American species (Solaneae,
Solanaceae). Brittonia, 45(2): 138-145.

Mione, I; R. Olmstead; R. Jansen & G. Anderson.
1994. Systematic implications of chloroplast DNA
variation in Jaltomata and selected physaloid
genera (Solanaceae), American Journal of Botany
81 (7): 912-918.

Mione, T. & L. A. Coe. 1996. Jaltomata sagastegui
and Jaltomata cajamarca (Solanaceae), two new
shrubs from Northern Perú. Novon 6: 280-284.

Mione, T. & S. Leiva. 1997. A new Peruvian species
of Jaltomata (Solanaceae) with Blood-Red Floral
Néctar. Rhodora 99 (900): 283-286.

Mione, I; S. Leiva & L. Yacher. 2000. Three new
species of Jaltomata (Solanaceae) from Ancash,
Perú. Novon 10 (1): 53-59.

Mione, I; S. Leiva & L. Yacher. 2004. Jaltomata
andersonii (Solanaceae): a new species of Perú.
Rhodora 106 (926): 118-123.

Mione, I; S. Leiva & L. Yacher. 2007. Five new species
of Jaltomata (Solanaceae) from Cajamarca, Perú.
Novon 17: 49-58.

Mione, I; S. Leiva; L. Yacher & A. Cameron. 2011.

Jaltomata atiquipa (Solanaceae): a new species of
Sourthern Perú. Phytologia 93(2):203-207.

Mione, I; S. Leiva & L. Yacher. 2013. Jaltomata
spooneri (Solanaceae): a new species of Southern
Perú. Phytologia 95(2):167-171.

Mione, I; S. Leiva & L. Yacher. 2014. Two new Peruvian
species of Jaltomata (Solanaceae, Solaneae) with
red floral néctar. Brittonia 67 (2): 105-112 (2015).

Mione, I; S. Leiva & L. Yacher. 2015. Jaltomata
sanmiguelina (Solanaceae) a new species fron
northern Perú. Natural Sciencies. Biology 3(11):
3-13.

Nee, M. 1986. Solanaceae I. Flora de Veracruz,
fascículo 49. Instituto de Investigaciones sobre
Recursos Bióticos, Xalapa, Veracruz, México.

Olmstead, R.; L. Bohs; H. Abdel; E. Santiago-Valentin;
V. García & S. Collier. 2008. A molecular phylogeny

of the Solanaceae. Taxon 57 (4): 1159-1181.

Sarkinen, I, L. Bohs; R. G. Olmstead & S. Knapp.

2013. A phylogenetic framework study of the
nightshades (Solanaceae): a dated 1000-tip tree.
BMC Evolutionary Biology 13: 2-15. http://dx.doi.
org/10.1186/1471-2148-13-214.

The Plant List. 2016. The Plant List. A working list of
all plant species. Versión 1.1. 2016. Disponible en:
http://www.theplantlist.org. Acceso: 22 de agosto
del 2016.

Thiers, B. 2016. Index Herbariorum: A global directory
of public herbaria and associated staff. New York
Botanical Garden’s Virtual Herbarium. Disponible
en: http://sweetgum.nybg.org/ih/. Acceso: 1 de
agosto del 2016.

Trópicos. 2016. Tropicos.org. Missouri Botanical
Garden. Disponible en: http://www.tropicos.org.
Acceso: 18 de agosto del 2016.

UICN. 2012. Categorías y Criterios de la Lista Roja de la
UICN: Versión 3.1. Segunda edición. Gland, Suiza y
Cambridge, Reino Unido: UICN. vi + 34pp.

Ulloa Ulloa, C.: J. L. Zarucchi & B. León. 2004. Diez
años de adiciones a la Flora del Perú: 1993-2003.
Arnaldoa (Edic. Espec., Nov. 2004): 1-242.

Valencia, R.; N. Pitman; S. León-Yanez & P M. Jer-
gensen (editores). 2000. Libro Rojo de las Plantas
Endémicas del Ecuador. Herbario QCA, Pontificia
Universidad Católica del Ecuador, Quito. 1^189 pp.

Weigend, M. 2002. Observations on the Biogeography
of the Amotape-Huancabamba Zone in Northern
Perú. In: K. Young et al., Plant Evolution and
Endemism in Andean South America. Bot. Review
68 (1): 38-54.

Weigend, M. 2004. Additional observations on the
biogeography of the Amotape-Huancabamba zone
in Northern Perú: Defining the South-Eastern limits.
Rev. per. biol. 11(2): 127-134.

204 I ARNALDOA 2 %^/Íero - Junio, 2017

eiva et al: Jaltomata Schltdl. (Solanaceae) en la reglón L

Lista de especies de Jaltomata (Solanaceae) en la región La Libertad, Perú

2. Jaltoma sanchez-vegae S. Leiva & Mione

Jaltomata grandlbaccata S. Leiva & Mione
Jaltomata dendroidea S. Leiva & Mione
Jaltomata bernardelloana S. Leiva & Mione
Jaltomata salpoensis S. Leiva & Mione
Jaltomata nigricolor S. Leiva & Mione
Jaltomata lezamae S. Leiva & Mione

10 . Jaltomata pauciseminata S. Leiva & Mione

11 . Jaltomata yungayensis Mione & S. Leiva

12. Jaltomata minoei S. Leiva & Quip. “sogorome”

13. Jaltomata truxillana S. Leiva & Mione

14. Jaltomata angasmarcae S. Leiva & Mione

15. Jaltomata aricapampae S. Leiva & Mione

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 205

206 I ARNALDOA

Arnaldoa 24 (1): 207 - 228, 2017
http://doi.org/10.22497/arnaldoa.241.24107

ISSN: 1815-8242 (edición impresa)
ISSN: 2413-3299 (edición Online)

Estado de conservación de los bosques secos de
la provincia de Loja, Ecuador

Conservation status of the dry forests of the province
of Loja, Ecuador

Zhofre Aguirre Mendoza
Profesor de la Universidad Nacional de Loja.

Autor para correspondencia: zhofre.aguirre@unl.edu.ee
Gretel Geada-Lopez
Profesor de la Universidad de Pinar del Río, Cuba.
gabriel@af.upr.edu. cu

ARNALDOA 24 (1): Enero - Junio, 2017 I 207
i licencia CC BY-NC 4.0: https://crcati%ccommons.Org/liccnscs/b> -nc/4.0/

Aguirre & Geada: Estado c

Resumen

de conservación de los bosques secos de la provincia de Loja, Ecuador
Recibido: 23-XII-2016; Aceptado: 22-111-2017; Publicado: VI-2017; Edición online: 29-V-2017

Se muestrearon 100 parcelas de 20 x 20 m en el bosque seco de la provincia de Loja, Ecuador,
para determinar los tipos de bosque en función de la composición florística y abundancia de las
especies. Se realizó el análisis de conglomerados jerárquico mediante la medida de distancia
de Sorensen para tipificar cada tipo de bosque; se calculó el índice de Sorensen cualitativo y
cuantitativo. El estado de conservación se determinó utilizando matrices de calificación que
consideran seis variables: estructura del bosque, manejo y aprovechamiento, población asociada,
matriz del entorno, presencia de fuentes de agua y problemática socioambiental, que son calificadas
con base a 26 indicadores, cuyos resultados se expresan en cuatro rangos: 0-25 % (malo), 25,1 a 50 %
(regular), 50,1 a 75 % (bueno) y 75,1 a 100 % (muy bueno). Se diferencian tres tipos de bosque seco,
indicados por la presencia de Terminalia valverdeae, Simira ecuador ensis, Cordia macrantha (bosque
tipo I); Handroanthus chrysanthus, Citharexylnm gentryi, Calliandra taxifolia (bosque tipo II), y Eriotheca
rnizii, Ipomoea pauciflora, Leucoma trichodes y Erythrina velutina (bosque tipo III), los mismos que
presentan diferencias notables en el campo, dadas por las especies y características estructurales.
El bosque, en general, se encuentra en buen estado de conservación (57,6 %). El bosque I esta en
buen estado (67,5 %) con tendencia a muy bueno, el bosque II esta en buen estado de conservación
(57,1%) y el bosque III en buen estado (55,2 %) con tendencia hacia regular.

Palabras clave: estado de conservación, especie indicadora, tipos de bosque, bosque seco.

The hierarchical cluster analysis was carried out using the Sorensen distance measure to typify
each type of forest; Sorensen quantitative and qualitative índex was calculated. The conservation

management and use, associated population, environment matrix, presence of water sources and
social and environmental problems, which are rated based on 26 indicators, whose results are
expressed in four ranges: 0-25 % (bad), 25.1 to 50 % (regular), 50.1 to 75 % (good) and 75.1 to 100 %
(very good). There are three types of dry forest, determined by the presence of Terminalia valverdeae,
Simira ecuadorensis, Cordia macrantha (forest type I); Handroanthus chrysanthus, Citharexylum gentryi,
Calliandra taxifolia (type II forest), and Eriotheca ruizii, Ipomoea pauciflora, Leucaena trichodes and
Erythrina velutina (type III forest), which present remarkable differences in the field because of the
species and structural characteristics. The forest, in general, is in good conservation status (57.6 %).

status (57.1 %) and forest III in good condition (55.2 %) with a tendency towards regular.
Keywords: conservation status, indicator species, types of forest, dry forest.

Introducción

Los bosques secos de Ecuador se
encuentran ubicados en dos áreas: a) sobre
la costa pacífica centro: Esmeraldas, Manabí,
Santa Elena y Guayas, y b) en la costa sur y
estribaciones occidentales de los Andes: El
Oro y Loja, pertenecientes mal bosque seco
ecuatorial, ecosistema único en el mundo
(Linares-Palomino et ni., 2010).

Originalmente, el 35% del Ecuador
occidental estaba cubierto por bosque
seco. Se estima que entre el 60 v 75%
del mismo ha desaparecido (Sierra et al,
1999; Aguirre-Mendoza & Kvist, 2005;
Espinosa et ni, 2012, Grijalva et ni, 2012).
Son formaciones vegetales caducifolias,
donde aproximadamente el 75% de sus
especies pierden estacionalmente sus hojas
(Espinosa et al, 2012; Aguirre-Mendoza

208 I ARNALDOA 2 %fjbliero - Junio, 2017

& Geada: Estado de conservación de los bosques secos de la provincia de Loja, Ecuador

& Kvist, 2005; Linares-Palomino & Ponce,
2005; Aguirre-Mendoza et al, 2006a). Estos
bosques están compuestos por vegetación
frágil que se desarrolla en condiciones
climáticas extremas, con precipitación anual
de 400-600 mm (febrero a abril); temperatura
media anual de 24,9°C (Klitgaard et al, 1999;
Proyecto Bosque Seco, 1998; Webber, 2009).

Los bosques en la provincia de Loja se
encuentran entre 190 a 1 000 msnm, abarcan
tierras bajas y estribaciones occidentales de
la cordillera de los Andes, ocupando el 31
% de la provincia (Herbario Loja et al, 2001;
Aguirre-Mendoza et al., 2006a; Aguirre-
Mendoza & Kvist, 2009). Están ubicados
en el corazón de la Zona de Endemismo
Tumbesino, restringida a un área geográfica
de 50 000 km 2 , entre Ecuador y Perú, lo
cual le confiere gran importancia debido a
su diversidad florística y faunística (Best &
Kresler, 1995).

Por otro lado, estos han soportado
durante los últimos 70 años grandes
presiones antrópicas, producto de la
extracción maderera, conversión de
uso de la tierra, incendios forestales y
sobrepastoreo caprino (Aguirre-Mendoza
et al., 2001; Aguirre-Mendoza & Delgado-
Cueva, 2005; Chiriboga & Andrade, 2005;
Espinosa et al, 2012).

Los bosques secos sureños del Ecuador
han sido estudiados, pero estos se han
centrado en inventarios florísticos y
aproximaciones al estado de conservación
(Herbario Loja et al, 2001, 2003; Neill, 2000;
Aguirre-Mendoza et al, 2001; Aguirre-
Mendoza & Delgado-Cueva, 2005), mas no
en la caracterización de su estructura.

La población local tiene una percepción
productivista del bosque, explotando
las especies maderables: Handroanthus
chrysanthus "guayacán", Tenninalia
valverdeae "guarapo", Prosopis juliflora
"algarrobo" y Loxopterigyimi liuasango

"gualtaco", provocando la disminución de
individuos de clases diamétricas superiores
(Herbario Loja et al, 2001; Aguirre-Mendoza
et al., 2001; Aguirre-Mendoza & Delgado-
Cueva, 2005; Aguirre-Mendoza & Kvist,
2005), además, ocasionalmente extraen miel
de insectos, plantas medicinales: Myroxylon
peruiferum "chaquino", plaguicidas: Piscidia
carthagenensis "barbasco", frutos: Opuntia
frais-indica "tuna" e Hylocereus polyrrliizus
"pitahaya", "algodón" de Ceiba trichistandra.

En las últimas dos décadas el Ecuador ha
hecho esfuerzos para valorar y caracterizar
sus recursos, no obstante el conocimiento
generado todavía no se ha instrumentado
para la generación de políticas y toma de
decisiones sobre el manejo (Grijalva et al,
2012). Al respecto, la conservación será
eficiente si se logra un balance entre los
objetivos de conservar y los intereses de los
actores, especialmente de los que dependen
de los bosques (Sheil et al., 2004), y para esto
es necesario disponer de información sobre
la salud de los ecosistemas. Este artículo
presenta la diferenciación y descripción de
tres tipos de bosque seco de la provincia de
Loja y su estado de conservación.

Materiales y métodos

Características del área de estudio

El estudio se llevó a cabo en el bosque
seco de la provincia de Loja, ubicado en

el extremo sur del Ecuador, en el límite
con el Perú (Fig. 1). El área de estudio
tiene una precipitación anual de 500 mm
y temperatura anual de 24°C (Espinoza et
al, 2012; Webber, 2009). La población rural
que vive dentro y alrededor del bosque
está dedicada a actividades de agricultura
de subsistencia, crianza de ganado caprino,
aprovechamiento de especies forestales
comerciales y uso de productos forestales
no maderables.

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 209

se realizaron con el programa PC-ORD
versión 4,17 (McCune y Mefford, 1999).

ARNALDOA 24(1$

Tipo I

Tipo II

Tipo III

Tipo I

0,65 (25)

0,60 (23)

Tipo II

0,55

0,56(17)

Tipo III

0,16

0,14

212 I ARNALDOA 2 %fjt ; liero - Junio, 2017

"£. _._ 2 _,_ 2 _,_ 2 _*_ 2

ArnaldoA 24(1)|

Aguirre & Geada: Estado c

de conservación de los bosques secos de la provincia de Loja, Ecuador

Descripción de los tipos de bosque
seco obtenidos

La descripción sobre la formación del
bosque seco ecuatoriano-peruano ha sido
somera en el lado de Ecuador (Cerón et
¿ 1999; Josse, 1997; Aguirre et al. , 2001),
reconociéndose que es una formación
dominada por elementos de la familia
Bombacaceae. En este estudio se concluye
que la formación es diversa y la conforman
tres tipos de bosque diferenciables por
su fisonomía y estructura, los cuales son:
tipo I, bosque seco de Cordia macmntha,
Tenninalia vnlverdene , Siniim ecnadorensis;
tipo II, bosque seco de Handroanthus
chrysanthns, Citharexylum gentnji, Calliandra
taxifolia, y tipo III, bosque seco de Eriotheca
ruitíi, Ipomoea pauciflora, Eeucaena trichodes y
Enjthrinn velutina.

Tipo I: bosque seco de Cordia
macmntha, Tenninalia valverdeae y Simira
ecnadorensis

Este tipo está caracterizado por la
presencia de: Cordia macmntha, Tenninalia
valverdeae y Simira ecnadorensis. Además de
la existencia de Handroanthus chrysanthns,
Piscidia carthagenensis y Ceiba trichistandra,
el dosel alcanza los 18 m y se diferencian
tres estratos. Se desarrollan entre 200 a 600
msnm, en las zonas de La Ceiba, Cazaderos,
Mangahurco, Cochas, Romeros, Paletillas,
en terrenos con pendientes de 25°.

En el área se registra una precipitación
anual de 510,8 mm (febrero a abril) y una
temperatura media anual de 24,9°C. La
vegetación es densa, no está fragmentada,
el pastoreo caprino es escaso, el suelo
es arcilloso, medianamente pedregoso,
con abundante hojarasca en el suelo.
La vegetación arbustiva es semidensa,
sobresalen Croton sp., Ranvolfia tetra pliylla,
Cerens diffnsns, Lycianthes sp., y Phyllantlms
sp., mientras la vegetación herbácea es

estacional con dominancia de Rnellia
geminiflora, Gaya sp. Panicnm trichoides,
Galactia sp. y Adiantum raddianum.

A este tipo pertenecen 47 parcelas del
muestreo, con 47 especies. Los elementos
florísticos son muy similares a los que Cerón
et al. (1999) reconocen como bosque deciduo
de tierras bajas, distribuido principalmente
en la costa centro y sur del Ecuador, y
similar al peruano descrito por La Torre-
Cuadros y Linares-Palomino (2008) como
grupo E, pero con la diferencia que en
Ecuador predoniman Cordia macmntha y
Simira ecnadorensis.

Tipo II: bosque seco de Handroanthus
chrysanthns, Calliandra taxifolia y
Citharexylum gentnji

Está caracterizado por la presencia de
Handroanthus chrysanthns, Cytharexylum
gentryi, Calliandra taxifolia, Simira
ecnadorensis, Prockia crncis, Piscidia
carthagenensis y Cochlospermum vitifolinm.

La vegetación es semidensa (500-700
individuos/ha) a rala (300-499 individuos/
ha). Se desarrolla entre 300 a 700 msnm,
que abarca las zonas de Vicín, Algodonal,
Machanguilla, El Vergel, Laguar, en
terrenos con pendientes de 30 a 35°;
precipitación anual de 600 mm (enero a
abril) y temperatura media anual de 24°C
(Webber, 2009).

El bosque está ligeramente fragmentado,
se evidencia pastoreo caprino, existen
claros de bosque, el suelo es arcilloso,
medianamente pedregoso, con presencia de
hojarasca en el suelo. La altura del dosel es
de 16 m con tres estratos. El sotobosque es
semidenso con abundancia de Opuntia ficus-
indica, O. qnitensis, Cerens diffnsns, Ipomoea
carnea, Capparicordis croton oides y juveniles
de las especies arbóreas típicas de bosque
seco. La vegetación herbácea es estacional

214 I ARNALDOA 2 %fjt ; liero - Junio, j

/Jt§!lÍ|8i & Geada: Estado de conservación de los bosques secos de la provlncla^lljjl, Ecuador

con abundancia de gramíneas.

A éste tipo pertenecen 28 parcelas de
muestreo y se registraron 31 especies. Este
bosque es similar en composición florística
a lo que Cerón et til. (1999) clasifican como
bosque semideciduo piemontano de las
vertiente occidentales bajas del sur del
Ecuador.

Tipo III: bosque seco de Eriotheca
mizii, Ipomoea pauciflora, Leucaena
trichodes y Erythrina velutina

Determinado por la dominancia de
Eriotheca ruizii, Enjthrina velutina, Ipomoea
pauciflora y Leucaena trichodes y, la presencia
de Pisonia aculeata, Ceiba trichistandra ijBursera
graveolens. Registra una precipitación anual
de 600 mm (enero a abril) y temperatura
media anual de 24 / 5°C / desarrollándose
entre 400 a 1 000 msnm, en las zonas de
Laipuna, El Empalme y Lucarqui. Se
encuentran sobre terrenos con pendientes
de hasta 60° y la altura del dosel es de 13
m con dos estratos bien diferenciados, lo
que corrobora la estructura de bosques que
han sufrido procesos degradativos fuertes
(García-Villacorta, 2009; Leal-Pinedo y
Linares-Palomino, 2005).

El bosque está fragmentado, se
observa pastoreo caprino y bovino, el
suelo es arcilloso, superficial, amarillo-
café, pedregoso, con escasa hojarasca. La
vegetación arbustiva es exigua, sobresalen
Cercidium praecox, Baccharis trinewis,
Opuntia quitensis, O. pubescens, Croton sp..
Abutilón sp., que en temporada lluviosa se
tornan exuberantes. El estrato herbáceo es
estacional, con abundancia de gramíneas.

A este tipo pertenecen 25 parcelas de
muestreo, donde se registraron 30 especies.
Ocurre en espacios geográficos donde
Cerón et al. (1999) ubican la formación
de bosque semideciduo piemontano, al

cual corresponde el tipo II, pero en este
estudio se determina que los elementos
florísticos indicadores son diferentes a ese
tipo, especialmente por la dominancia de
Eriotheca ruizii, Ipomoea pauciflora y Leucaena
trichodes, a la densidad de la vegetación
que es rala (300-499 individuos/ha), a la
altura del dosel (13 m) y a la fisiografía
irregular del terreno donde se desarrollan.
Linares-Palomino & Ponce-Álvarez (2009)
se refieren a este tipo de vegetación como
una versión empobrecida de los bosques
secos de la región Tumbesina en el contexto
peruano.

Calificación del estado de conservación
del bosque seco de la provincia de Loja

El estado de conservación se define
considerando los cuatro rangos de valores
que se obtienen de la aplicación de la matriz
de evaluación, considerando seis variables
y 26 indicadores. Por esta razón, al ser
rangos, debe cuidarse de la subjetividad
en la interpretación, ya que un bosque está
en buen estado de conservación cuando
califica dentro del rango de 51% hasta
75%, entonces la diferencia puede ser
cuantitativa. El investigador tendrá que
considerar que, necesariamente, será mejor
conservado cuando este valor se acerca a
75%, porque los indicadores que se analizan
están indicando la buena salud del bosque,
y lo contrario si el valor se acerca a 51%.

Producto de la aplicación de la matriz
de evaluación, el bosque seco de la
provincia de Loja, califica en buen estado de
conservación con una puntuación de 57,6%
(Fig. 3). Aguirre-Mendoza et al. (2006a),
Neill (2000), Aguirre-Mendoza et al. (2001),
Aguirre-Mendoza & Delgado-Cueva (2005),
Aguirre-Mendoza et al. (2006b) refieren que
los bosques secos de Loja se aprecian mejor
conservados que los del norte peruano
y que sus homólogos de Manabí, Santa

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 215

216 I ARNALDOA 24ffg

La Ceiba, Las Cochas,

IIJ

) se debe a que de la

el exterior del

ARNALDOA 24 (1): Enero - Junio, 2017 I 217

218 I ARNALDOA 24$£

•^Ufríí & Geada: Estado c

Conclusiones

Se diferencian tres tipos de bosque
seco en la provincia de Loja, indicados
por la presencia de Tcriniiiiilin valverdeae,
Siiiiim ecuadoivnsis, Confuí nmawitlm (tipo
I), Handroanthus chnjsnnthus, Citharexxjliuu
gentryi, Cnlliiindrii taxifolia (tipo II) y
Eriotheca ruizii, Ipomoea pauciflom, Eeucaena
trichodes y Enjthrina velutina (tipo III), que se
encuentran en buen estado de conservación
en comparación con sus similares del norte
y centro de la costa del Ecuador y los del
norte peruano.

Literatura citada

Aguirre-Mendoza, Z. & N. Aguirre-Mendoza. 1999.
Guía práctica para realizar estudios de comunida¬
des vegetales. Herbario Loja No. 5. Departamento
de Botánica y Ecología de la Universidad Nacional
de Loja. Loja, Ecuador, 30 p.

Aguirre-Mendoza, Z.; E. Cueva; B. Merino; W. Quizhpe
& A. Valverde. 2001. Evaluación ecológica rápida
de la vegetación en los bosques secos de La Ceiba
y Cordillera Arañitas, provincia de Loja, Ecuador.
Pp. 15-35. En M. A. Vásquez, M. Larrea, L. Suá-
rez & P Ojeda (Eds.). Biodiversidad en los Bosques
Secos del Sur-Occidente de la Provincia de Loja.
EcoCiencia, Ministerio del Ambiente, Herbario LOJA
y Proyecto Bosque Seco, Quito. Ecuador.
Aguirre-Mendoza, Z. & P. Kvist. 2005. Composición
floristica y estado de conservación de los bosques
secos del sur-occidente del Ecuador. Lyonia. Volu¬
men 8 (2): 41-67.

Aguirre-Mendoza, Z. & T. Delgado-Cueva. 2005. Ve¬
getación de los bosques secos de Cerro Negro-
Cazaderos, Occidente de la Provincia de Loja. En:
Vásquez, M. A., Freile, J. F. y Suárez, L. (Eds.).
Biodiversidad en los bosques secos de la zona de
Cerro Negro-Cazaderos, occidente de la provincia
de Loja: un reporte de las evaluaciones ecológicas
y socioeconómicas rápidas. Pp. 9-24. EcoCiencia,
MAE y Proyecto Bosque Seco. Quito, Ecuador.
Aguirre-Mendoza, Z.; L. Kvist & R. Linares. 2006a.
Especies leñosas y formaciones vegetales en los
bosques estacionalmente secos de Ecuador y Perú.
Arnaldoa. 13(2): 324-350. ISSN: 1815-8242.
Aguirre-Mendoza, Z.; L. Kvist & 0. Sánchez. 2006b.
Bosques secos en Ecuador y su diversidad. P 162-

167. En Moraes, M. Ollgard, B. Kvist, L. Borchse-
niu, F, y Baslev, H. Botánica Económica de los An¬
des Centrales. Universidad Mayor San Andrés, La
Paz Bolivia. ISBN: 978-999-54-0-121-4.

Aguirre-Mendoza, Z. & L. Kvist. 2009. Composición
floristica y estructura de bosques estacionalmente
secos en el sur-occidental de Ecuador, provincia de
Loja, municipios de Macara y Zapotillo. Arnaldoa
16(2): 87-99. ISSN: 1815-8242.

Aguirre-Mendoza, Z. 2010. Guía para estudios de com¬
posición florística, estructura y diversidad de la ve¬
getación natural. Universidad San Francisco Xavier
de Chuquisaca, Sucre, Bolivia. 57 p.

Aronson, J.; M. Suzanne & J. Blignaut. 2007. Restor-
ing Natural Capital: Sciencie, Bussiness and Prac-
tice. Society for Ecological Restoration Internation¬
al. Washington DC, USA. 383 p.

Beals, E. W. 1984. Bray-Curtis ordination: an effective
strategy for analysis of multivariate ecological data.
Advances in Ecological Research 14:1-55.

Berry, K. J.; K. L. Kvamme & R W. Mielke, Jr. 1983.
Improvements in the permutation test for the spatial
analysis of the distribution of artifacts into class-
es. American Antiquity 48: 547-553. En: PCORD
versión 4.17.

Best, B. & M. Kessler. 1995. Biodiversity and Conserva-
tion in Tumbesian Ecuador and Perú. Birdlife Inter¬
nacional. Cambridge. UK. 218 p.

Centro Informático de Geomática Ambiental, Herba¬
rio LOJA, Carrera de Ingeniería Forestal. 2006.
Informe de evaluación del estado de conservación
de los bosques y áreas de vegetación protectora de
Loja y Zamora Chinchipe. Fondo Ambiental Nacio¬
nal. Loja, Ecuador. 350 p.

Cerón, C. E. 1993. Manual de botánica ecuatoriana,
sistemática y métodos de estudio en el Ecuador.
Ediciones Abya-Ayala. Quito, Ecuador, p. 315.

Cerón, C. E.: W. Palacios; R. Valencia & R. Sierra.

Ecuador. Pp. 55-78 En: R. Sierra (Ed.), Propuesta
Preliminar de un Sistema de Clasificación de Ve¬
getación para el Ecuador Continental. Proyecto IN-
EFAN/GEF-BIRF y EcoCiencia, Quito.

Chiriboga, C. & K. Andrade. 2005. Diagnóstico so¬
cioeconómico de las poblaciones usuarias de los
remanentes de bosque seco de los cantones Ala¬
mor y Zapotillo en la provincia de Loja, Ecuador.
En: Vásquez, M. A., Freile, J. F. y Suárez, L. (Eds.).
Biodiversidad en los bosques secos de la zona de
Cerro Negro- Cazaderos, occidente de la provincia

ArnaldoA ^rfS En

o, 2017 1 219

Aguirre & Geada: Estado c

de conservación de los bosques secos de la provincia de Loja, Ecuador

de Loja: un reporte de las evaluaciones ecológicas
y socioeconómicas rápidas. Pp. 91-116. EcoCien-
cia, MAE y Proyecto Bosque Seco, Quito. Ecuador.

Contento, R. 2000. Estudio de la composición florística
y regeneración natural del bosque seco en la Ceiba
Grande, Zapotillo. Tesis Ing. For. Loja, Ecuador. Uni¬
versidad Nacional de Loja Área Agropecuaria y de
Recursos Naturales Renovables. P 72.

Dufrene, M. & R Legendre. 1997. Species assemblag-
es and indicator species: the need for a flexible
asymmetrical approach. Ecological Monographs
67:345-366. En: PC-ORD, Versión 4.17.

Dumortier, M.; J. Butaye; H. Jacquemyn; N. Van
Camp; N. Lust & M. Hermy. 2002. Predicting vas¬
cular plant species richness of fragmented forests
in agricultural landscapes in central Belgium. For-
est Ecology and Management 158:85-102. En:
Schmidt, I., Zerbe S., Betzin, J. y Weckesser, M.
2006. An Approach to the Identification of Indica-
tors for Forest Biodiversity—The Solling Mountains
(NW Germany) as an Example. Restoration Ecolo¬
gy, march 2006.

Espinosa, C. I.; M. De la Cruz; A. L. Luzuriaga & A.
Escudero. 2012. Bosques tropicales secos de la
región Pacífico Ecuatorial: diversidad, estructura,
funcionamiento e implicaciones para la conserva¬
ción. Ecosistemas 21 (1-2): 167-179.

García-Villacorta, R. 2009. Diversidad, composición y
estructura de un hábitat altamente amenazado: los
bosques estacionalmente secos de Tarapoto, Perú.
Revista Peruana de Biología 16(1): 81-92. Versión
Online ISSN 1727-9933.

Grijalva, J.; X. Checa; R. Ramos; P. Barrera & R. Li-
mongi. 2012. Situación de los Recursos Genéticos
Forestales - Informe País Ecuador. Preparado por el
Programa Nacional de Forestería del INIAP con aval
del INIAP/FAO/MAE/MAGAP/MMRREE. Documento
sometido a la Comisión Forestal de la FAO-Roma,
para preparación del Primer Informe sobre el Es¬
tado de los Recursos Genéticos Forestales en el
Mundo. 95 p.

Herbario Loja, UNISIG, CINFA. 2001. Zonificación y
determinación de los tipos de Bosque seco en el
suroccidente de la provincia de Loja. Informe Final.
Herbario Loja — Proyecto Bosque Seco, Universi¬
dad Nacional de Loja, Ecuador. 144 pp.

Herbario Loja, CINFA, SNV. 2003. Zonificación ecoló¬
gica de los seis cantones de influencia del Proyecto
Bosque Seco. Fase II. Informe Final. Herbario Loja
— Proyecto Bosque Seco, Universidad Nacional de
Loja, Ecuador. 144 pp.

Josse, C. 1997. Dinámica de un bosque seco semide-
ciduo y secundario en el oeste del Ecuador. P 241 -
253. En Valencia R., y H. Balslev (Eds.). Estudios
sobre diversidad y ecología de plantas. Universidad
Católica del Ecuador. Quito, Ecuador.

Klitgaard, B.; P. Lozano; A. Aguirre; B. Merino; N.
Aguirre; T. Delgado & F. Elizalde. 1999. Compo¬
sición florística y estructural del Bosque Petrificado
de Puyango, Loja Ecuador. En: Estudios Botánicos
en el Sur del Ecuador N° 3. Universidad Nacional de
Loja, Departamento de Botánica y Ecología, Ecua¬
dor. p. 25-49.

La Torre-Cuadros, M. & R. Linares-Palomino. 2008.
Mapas y clasificación de vegetación en ecosiste¬
mas estacionales: un análisis cuantitativo de los
bosques secos de Piura. Revista Peruana de Bio¬
logía 15(1): 31-42.

Leal-Pinedo, J. & R. Linares-Palomino. 2005. Los
bosques secos de la reserva de biosfera del no¬
roeste (Perú): diversidad arbórea y estado de con¬
servación. Revista Caldasia 27(2):195-211.

Linares-Palomino, R. & S. Ponce. 2005. Tree commu-
nity patterns in seasonally dry tropical forests in the
Cerros de Amotape Cordillera. Tumbes, Perú. For¬
est Ecology and Management. 209: 261-272.

Linares-Palomino, R. & S. Ponce-Alvarez. 2009.
Structural patterns and floristics of a seasonally dry
forest in Reserva Ecológica Chaparri, Lambayeque,
Perú. Tropical Ecology 50(2): 305-314.

Linares-Palomino, R.; L. Kvist; Z. Aguirre-Mendoza
& C. Gonzales. 2010. Diversity and endemism of
woody plant species in the Equatorial Pacific sea¬
sonally dry forests. Biodiversity and Conservaron
19 (1):165-185.

McCune, B. & E. W. Beals. 1993. History of the devel-
opment of Bray-Curtis ordination. Pages 67-79. In
J. S. Fralish et al., editors, Fifty Years of Wisconsin
Plant Ecology. Wisconsin Academy of Sciences,
Arts and Letters, Madison.

McCune, B. & M. J. Mefford. 1999. Multivariate anal-
ysis of ecological data. PcOrd-Versión 4.17 MjM
Sofware. Glennneden Beach, Oregon, USA.

Mielke, P. W. Jr. 1984. Meteorological applications of
permutation techniques based on distance func-
tions. Pages 813-830. In P R. Krishnaiah and P K.
Sen (Eds.), Handbook of Statistics, Vol. 4. Elsevier
Science Publishers. En: PCORD ersion 4.17.

Naturaleza y Cultura Internacional (NCI). 2003. Ma¬
nejo comunitario de los bosques secos y micro-
cuencas del suroccidente de Loja...diagnósticos

220 I ARNALDOA 2 %fjt ; liero - Junio, 2017

Aguirre & Geada: Estado c

rurales participativos en 10 comunidades vecinas
a las reservas naturales Tumbesinas: La Ceiba y
Laipuna. Loja, Ecuador. 80 p.

Neill, D. 2000. Observation on the conservation status
of tropical dry forest in the Zapotillo Area, Loja,
Ecuador. Disponible en httD// www.mobot .ora/MO-
BOT/research/Ecuador /Zapotillo.

Paladines, R. 2003. Propuesta de conservación del
Bosque seco en el Sur de Ecuador. Lyonia 4 (2):
183-186.

Proyecto Bosque Seco. 1998. Diagnóstico socio am¬
biental e institucional de los cinco cantones sur-
occidentales de Loja. INEFAN/SNV, Loja, Ecuador.
159 p.

Schmidt, I.; S. Zerbe; J. Betzin & M. Weckesser. 2006.
An Approach to the Identification of Indicators for
Forest Biodiversity-The Solling Mountains (NW Ger-
many) as an Example. Restoration Ecology, march
2006.

Sheil, D.; R Puri; I. Basuki; M. Van Heist; M. Wan; N.
Liswanti; R. Sadjono; I. Samsoedin; K. Sidiyasa;
C. Edi; E. Mangopo; F. Gatzweiler; B. Johnson &
A. Wijaya. 2004. Explorando la biodiversidad, el
medio ambiente y las perspectivas de los poblado¬
res en áreas boscosas. Centro para la Investigación
Forestal Internacional. Indonesia. 92 p.

Sierra, R.; C. Cerón; W. Palacios & R. Valencia (Eds).
1999. Propuesta preliminar de un sistema de clasi¬
ficación de vegetación para el Ecuador Continental.
Proyecto INEFAN/GEF-BIRF Y EcoCiencia. Quito,
Ec. 194 pp.

Society for Ecological Restoration (SER). 2004. The

SER primer on ecological restoration. Society for
Ecological Restoration, Science & Policy Working
Group. Disponible en: http://www.ser.org /.

Webber, L. 2009. Diagnóstico y plan de monitoreo de
la calidad del agua en las Áreas de interés hídrico
de los cantones Célica, Pindal, Puyango y Macará.
Naturaleza y Cultura Internacional. Loja, Ecuador.
35 p.

Zimmerman, G. M.; H. Goetz & P. W. Mielke. 1985. Use
of an improved statistical method for group com-
parisons to study effects of prairie tire. Ecology 66:
606-611. En: PC-ORD versión 4.17.

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 221

Aguirre & Geada: Estado c

ANEXO % Matrú
de la provincia de Loja, Ecuadoi

para evaluar el estado de c

ESTRUCTURA DEL BOSQUE

:ura vegetal con relación a la superficie total d

MANEJO Y APROVECHAMIENTO

Estética alrededor del bosque (preservac

POBLACIÓN ASOCIADA
Densidad de población dentro

Densidad de poblaciór

MATRIZ DEL ENTORNO DEL BOSQUE

I. PRESENCIA DE FUENTES DE AGUA EN EL BOSQUE

i. PROBLEMATICA SOCIO-AMBIENTAL

ESTADO DE CONSERVACION IDEAL

ESTADO DE CONSERVACION REAL

222 I ARNALDOA #

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 223

224 I ARNALDOA

ArnaldoA 24(i)|:

226 I ARNALDOA

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017

227

228 I ARNALDOA

Arnaldoa 24 (1): 229 - 238, 2017
http:// doi.org/ 10.22497/arnaldoa.241 .24

ISSN: 1815-8242 (edición impresa)
ISSN: 2413-3299 (edición Online)

Four new and five overlooked records of
vascular plants from high elevation puna
grasslands of the Southern Peruvian Andes

Cuatro nuevos registros y cinco revisiones de plantas
vasculares de pastizales de puna de gran altitud en los
Andes del sur peruano

We present 4 new and 5 overlooked records of vascular plant species for Perú from high
elevation puna grasslands in the Urubamba and Vilcabamba Cordilleras, Southern Perú. The new
species records are: Lasiocephalus lingulatus (Asteraceae); Cardamine zndgaris (Brassicaceae); Lupimis
herzogii, Lupinus soratensis (Fabaceae). Other species records, i.e., Calamagrostis sclerantha. Festuca
soukupii (Poaceae); Aphanes párvula, Lachemilla tanacetifolia (Rosaceae), and Valeriana mandonii
(Valerianaceae), that are mentioned in literature for Perú but have not been acknowledged by the
Perú Checklist or the Catalogue of the Flowering Plants and Gymnosperms ofPeru are also included.
Previous knowledge on the distribution of these species is discussed.

Keywords: records, vascular plants, puna, Southern Peruvian Andes.

High Andean puna grasslands,
found above the upper forest-line (ca.
> 3800 m.a.s.l.) from northern Perú to
Chile (Wilcox et ni, 1986; Garcia & Beck,
2006; Montesinos-Tubée et ni, 2015 and
references therein), have received relatively
little floristic attention compared with the
paramo grasslands of north-western South
America (e.g. Luteyn, 1999; Madriñán et
al, 2013; W 3 TROPICOS-Paramo Flora,
2017). Nevertheless, our recent research
over a relatively small area in the Southern
Peruvian Andes highlights that the high
elevation puna remains a veritable treasure
trove of taxonomic and ecological novelties
waiting to be discovered (Heitkamp et al,
2014; Kessler et al., 2014; Sylvester, 2014;
Sylvester et al, 2014a,b; Pfanzelt et al, 2015;
Sundue et al., 2015; Ospina et al., 2016;
Sylvester et al, 2016a,b). Here we present

230 I ARNALDOA 2%|bliero - Junio, 2011

4 new records and 5 overlooked records,
belonging to 6 families and 8 genera, of
vascular plant species for Perú that we
discovered during botanical exploration of
the high puna of Southern Perú and discuss
previous knowledge on the distribution of
these species.

Material and methods

The new and overlooked records were
recovered among collections made in the
high elevation puna grasslands of the
Cordilleras Urubamba and Vilcabamba,
Southern Perú, between 2010 and 2013,
as part of a larger ecological project to
reconstruct the potential natural vegetation
and soils of these Andean landscapes (see
Heitkamp et al, 2014 and Sylvester et al,
2014a for preliminary studies). Species
ñames were checked against the Catalogue
of the Flowering Plants and Gymnosperms
of Perú (Brako & Zarucchi, 1993), additions

ArnaldoA 24(i)|:

ArnaldoA 24(1 i;

Sylvester etal: Fourr

Oesterr. Bot. Z. 52 (3): 108.1902.

TYPE: ARGENTINA. Salta, Nevado
del Castillo, 19-23-III-1873, Hieromjmus &
Lorentz 60 (Holotype: G; Isotypes: B, IT-
BAA4417 (photo ex B), LIL (fragm.), US-
1127175 (fragm. ex B), US-3048361, W).

Peruvian specimens examined: Dpto.
Cusco, prov. La Convención, distrito
Vilcabamba, grazed slopes towards the top
of the Totora-Purkay valley, 3 km east of the
Totora-Purkay village, 4159 m, 13°10'51.1"S,
73°03'34.2"W, 8-V-2013, S. P. Sylvester 1977
(LPB!, USM!, Z!).

Notes: Found locally common in grazed
puna grassland at the one site in distrito
Vilcabamba where it was encountered. This

Bolivia and Perú in the Catalogue of New
World Grasses (Soreng & Greene, 2003;

Soreng et al, 2003 and onwards). As the
only Peruvian specimen, Bradley C. Bennett
2494 (MO), was collected from Dpto. Puno,
prov. Sandia, our specimen from Dpto.
Cusco extends the westerly distribution of
this species ca. 400 km.

Festuca soukupii Stancík, Folia Geobot.
Phytotax. 39 (1): 103-104, f. 2,1-5. 2004.

TYPE: ECUADOR. Imbabura. Munic.
Cayambe, Volcán Cayambe, 78°55.6'W,
00°31.6'N, swamps below the refuge with
Loricaria sp.. Festuca ghimosa, Distichia
muscoides etc., 4450 m s.m., 20-X-2000,
Stancík 4162 (Holotype: PRC; Isotypes:
AAU, QCA).

Peruvian specimens examined: Dpto.
Cusco, prov. La Convención, distrito
Vilcabamba, forest towards the top of the
Totora-Purkay valley on the north side of

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 233

234 I ARNALDOA 2^;

4255 m, 13°16'08.4"S, 72°01'06.6"W, 23-IV-

13°12'01.1"S / 72°08'48.4"W / 5-II-2011, S. P.

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 235

Fig. 2. Photographs of so me of the overlooked species records i

Acknowledgements

This study was supported by The
Leverhulme Trust, UK, the University
of Zurich, and the SNSF [grant
P2ZHP3_161988]. We thank Colín Hughes,
Ihsan Al-Shehbaz, Juan C. Ospina,
Nick Hind, Simón Pfanzelt, and Xenia
Villavicencio for species determination
or confirmation. ECOAN Perú and
Washington Galiano are thanked for their
logistical support during fieldwork in
Perú. The CUZ, LPB and USM herbaria are
thanked for allowing revisión of specimens.

Literature cited

Brako, L. & J. Zarucchi. 1993. Catalogue of the Flower-
ing Plants and Gymnosperms of Perú. Monographs
in Systematic Botany from the Missouri Botanical
Garden 45:1-1286.

Cuatrecasas, J. 1978. Studies in Neotropical Sene-
cioneae, Compositae. I. Reinstatement of genus
Lasiocephalus. Phytologia 40(4): 307-312.

García, E. & S. G. Beck. 2006. Puna. In Moraes, M., 011-
gaard, B., Kvist, L.P, Borchsenius, F. & Balslev, H.
(eds.). Botánica económica de los Andes Central¬
es, pp. 51-76. Universidad Mayor de San Andrés,

La Paz, BO.

Gonzáles, P.; M. I. La Torre & A. Cano. 2011. Des-
champsia danthonioides (Poaceae - Pooideae) un
nuevo registro para la flora peruana. Revista Perua¬
na de Biología 18 (2): 185-187.

Heitkamp, F.; S. R Sylvester; M. Kessler; M. D.

P. V. Sylvester & H. F. Jungkunst. 2014. In-
accessible Andean sites reveal human in-
duced weathering in grazed soils. Prog-
ress in Physical Geography 38(5):576-601.

doi: http://dx.doi.Org/1 0.1177/0309133314544918
Huamantupa, I.; R. Vásquez; R. Foster; M. Cuba &
G. Calatayud. 2014. Adiciones de angiospermas
a la Flora del Perú procedentes de los bosques
Andino Amazónicos del sur peruano. Revista Pe¬
ruana de Biología 21 (2): 163-170. http://dx.doi.
org/10.15381/rpb.v21 ¡2.9819
Jorgensen, P. M. & C. Ulloa Ulloa. 1994. Seed plants of
the high Andes of Ecuador—A checklist. AAU Rep.
34:1-443.

Jorgensen, P. M. & S. León-Yánez (eds.). 1999. Cat¬
alogue of the Vascular Plants of Ecuador. Monogr.
Syst. Bot. Missouri Bot. Gard. 75: i-viii, 1-1181.
Jorgensen, R M.; M. H. Nee & S. G. Beck (eds.). 2014.
Cat. Pl. Vasc. Bolivia, Monogr. Syst. Bot. Missouri
Bot. Gard. 127(1-2): i-viii, 1-1744. Missouri Bo¬
tanical Garden Press, St. Louis.

Jorgensen, R M.; M. H. Nee & S. G. Beck (eds ). 2015
and onwards. Catalogo de las plantas vasculares
de Bolivia (adiciones), http://www.tropicos.org/
projectwebportal.aspx?pagename=Home&projec-
tid=13 (accessed 13/1/2017).

Kessler, M.; J. M. Toivonen; S. P. Sylvester; J. Kluge
& D. Hertel. 2014. Elevational patterns of Polyl-
epis tree height (Rosaceae) in the high Andes of
Perú: role of human impact and climatic conditions.
Frontiers in Functional Plant Ecology. doi: http://dx.
doi.org/10.3389/fpls.201 4.00194
Linares, E.; J. Campos; W. Nauray; J. Vicente & A.
Galán De Mera. 2010. Nuevas adiciones a la flora
del Perú, V.Arnaldoa 17 (1): 99-106.

Luteyn, J. L. 1999. Páramos, a checklist of plant diver-
sity, geographical distribution, and botanical litera-
ture. Mem. New York Bot. Gard. 84: viii-xv, 1-278.
Madriftán, S.; A. J. Cortés & J. E. Richardson. 2013.
Páramo is the world’s fastest evolving and coolest
biodiversity hotspot. Frontiers in Genetics 4:192.

236 I ARNALDOA 24<ttf 6» - Junio, 2017

Sylvester etal: Fourr

http://dx.doi.Org/1 0.3389/fgene.2013.00192
Montesinos-Tubée, D. B.; A. M. Cleef & K. V. Sykora.

2015. The Puna vegetation of Moquegua, South
Perú: Chasmophytes, grasslands and Puya raimon-
dii stands. Phytocoenologia 45 (4): 365-397.

Ospina, J. C.; S. P. Sylvester & M. D. P. V. Sylvester.

2016. Taxonomic delimitation of the Festuca setifo-
lia complex (Poaceae) in Southern South America
and a new species for the Peruvian Andes. Sys-
tematic Botany 41(3): 727-746. doi: http://dx.doi.
org/10.1600/036364416X692398

Pfanzelt, S.; S. R Sylvester; L. Ammann & M. D. P.

V. Sylvester. 2015. Gentianella viridiflora (Genti-
anaceae), a new species from the Peruvian Andes.
Phytotaxa 222 (4). doi: http://dx.doi.org/10.11646/
phytotaxa.222.4.6

Romoleroux, K. 1996. 79. Rosaceae. 56 In G.

W. Harling & L. Andersson (eds.) Fl. Ecuador. Uni-
versity of Goteborg, Goteborg.

Rodríguez, E. F.; R. Vásquez; R. Rojas; G. Calatayud;
B. León & J. Campos. 2006. Nuevas adiciones de
angiospermas a la flora del Perú. Revista Peruana
de Biología 13 (1): 129-138.

Salvador, F.; M. Ángeles & S. Ríos. 2008. Tres nuevos
registros del genero Carex (Cyperaceae) para el
Perú y adiciones a la flora andina del departamento
de Huánuco. Revista Peruana de Biología 15 (2):
83-92.

New World Grasses. Missouri Botanical Garden, St.

Stancík, D. & R M. Peterson. 2007. A revisión of Festu¬
ca (Poaceae: Loliinae) in South American Paramos.
Contr. U.S. Nati. Herb. 56:1-184.

Stancík, D. 2003. Las especies del género Festuca (Po¬
aceae) en Colombia. Darwiniana 41 (1-4): 93-153.
Sundue, M.; S. P. Sylvester; M. Kessler; B. Lyons; T.
A. Ranker & C. W. Morden. 2015. A new species
of Moranopteris (Polypodiaceae) from inacces-
sible ledges in the high Andes of Perú. System-
atic Botany 40 (3):652-657. doi: http://dx.doi.
org/10.1600/036364415X689375
Sylvester, S. P. 2014. Bartsia lydiae, a new species
of Bartsia sect. Laxae (Orobanchaceae) from the
Southern Peruvian Andes with a revised key to
Bartsia sect. Laxae. Phytotaxa 164 (1): 041-046.
doi: http://dx.doi.Org/1 0.11646/phytotaxa.l64.1.4
Sylvester, S. P.; M. D. P. V. Sylvester & M. Kessler.
2014a. Inaccessible ledges as refuges for the nat¬
ural vegetation of the high Andes. Journal of Veg¬
etation Science, doi: http://dx.doi.org/10.1111/
jvs.12176

Sylvester, S. P.; M. D. P. V. Sylvester & M. Kessler.

2014b. The World’s highest vascular epiphytes
found in the Peruvian Andes. Alpine Botany 124 (2):
179-185. doi: http://dx.doi.org/10.1007/s00035-
:: /»'-:#14-0130-2

Smith, A. R.: B. León; H. Tuomisto; H. van der Werff;
R. C. Moran; M. Lehnert & M. Kessler. 2005. New
records of pteridophytes for the Flora of Perú. Sida
21:2321-2341.

Soreng, R. J. & C. W. Greene. 2003. Calamagrostis.
48: 191-227. In R. J. Soreng, P M. Peterson, G.
Davidse, E. J. Judziewicz, F. 0. Zuloaga, T. S. Filgue-
iras & O. Morrone (eds.) Catalogue of New World
Grasses (Poaceae): IV. Subfamily Pooideae, Contr.
U.S. Nati. Herb. Smithsonian Institution, Washing¬
ton, D.C.

Soreng, R. J.; G. Davidse; R M. Peterson; F. O. Zu¬
loaga; E. J. Judziewicz; T. S. Filgueiras & O.
Morrone. 2003 and onwards. On-line taxonom¬
ic novelties and updates, distributional additions
and corrections, and editorial changes since the
four published volumes of the Catalogue of New
World Grasses (Poaceae) published in Contr. U.S.
Nati. Herb. vols. 39, 41, 46, and 48. http://www.
tropicos.org/Project/CNWG:. In R. J. Soreng, G. Da¬
vidse, P M. Peterson, F. 0. Zuloaga, T. S. Filgueiras,
E. J. Judziewicz & 0. Morrone (eds.) Internet Cat.

Sylvester, S. P.; R. J. Soreng; P. M. Peterson & M. D. R
V. Sylvester. 2016a. An updated checklist and key
to the open-panicled species of Poa (Poaceae) in
Perú including three new species, Poa ramoniana,
Poa tayacajaensis, and Poa urubambensis. Phy-
tokeys 65: 57-90. doi: http://dx.doi.org/10.3897/
phytokeys.65.7024

Sylvester, S. P.; D. Quandt; L. Ammann & M. Kessler.

2016b. The World’s smallest Campanulaceae: Ly-
sipomia mitsyae sp. nov. Taxon 65 (2): 305-314.
doi: http://dx.doi.Org/10.12705/652.7

TROPICOS.ORG. 2017. Missouri Botanical Garden.
http://www.tropicos.org (accessed 13/01/2017).

Ulloa Ulloa, C.; J. Zarucchi & B. León. 2004. Diez
años de adiciones a la flora del Perú: 1993-2003.
Arnaldoa, Ed. Especial: 7-242. http://dx.doi.
org/10.5962/bhl.title.63538

Vásquez, R.; R. Rojas & E. Rodríguez. 2002. Adiciones
a la Flora Peruana: especies nuevas, nuevos regis¬
tros y estados taxonómicos de las Angiospermas
para el Perú. Arnaldoa 9 (2): 43-110.

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 237

W3TR0PIC0S-Peru Checklist. 2017. Missouri Bota-
nical Garden. http://www.tropicos.org/Project/PEC
(accessed 13/01/2017).

W 3 TROPICOS-Paramo Flora. 2017. Missouri Botanical
Garden. http://www.mobot.org/MOBOT/Research/
paramojlora.shtml (accessed 13/01/2017).

Weberling, F. 2005. Notes on South American Valeria-
naceae III. Feddes Repertorium 116: 294-312.

Wilcox, B. P.f F. C. Bryant; D. Wester & B. L. Alien.
1986. Grassland communities and soils on a high
elevation grassland of Central Perú. Phytologia 61
(4): 231-250.

Zuloaga, F. 0. & 0. Morrone. 1997. Catálogo de las
plantas vasculares de la República Argentina.
Monogr. Syst. Bot. Missouri Bot. Gard. 74(1-2):
1-1331.

238 I ARNALDOA 2%^/Íero - Junio, 2017

Arnaldoa 24 (1): 239 - 246, 2017
http:// doi.org/ 10.22497/arnaldoa.241 .24

ISSN: 1815-8242 (edición impresa)
ISSN: 2413-3299 (edición Online)

Abundance dynamics of endangered plant
species Galatella rossica (Asteraceae) in the
Republic of Mordovia (Central Russia): Short
report

Dinámica de la abundancia de la especie de planta en
peligro Galatella rossica (Asteraceae) en la República
de Mordovia (Rusia Central): Reporte breve

Khapugin & Kunaeva: Abundance dynamics of endangered species Galatella rossica (Asteraceae) ¡n the Republic of Mordovia: Short Report
Recibido 1-11-2017; Aceptado: 23-III-2017; Publicado: VI-2017; Edición online 30-V-2017

Abstract

The population-based studies of vulnerable plant species provide important data on both their
own ecological preferences and environmental conditions of habitats. Galatella rossica is endangered
plant species included in the Red Data Book ofthe Republic of Mordovia (Central Russia). In the región,
it is known from six micropopulations. None of them is located within the regional protected areas
network. We have carried out the study of abundance dynamics for two of the known populations:
for location 1 -between 2009-2013-, for location 2 -between 2004-2013-, We established that the
number of individuáis in both studied populations has decreased. It was caused by processes of
afforestation and overgrowing in habitats by tall vegetation and shrubs (e.g., Salix spp., Spiraea
crenata). We suggest the resumption of more detail population-based studies in the región.
Keywords: Galatella rossica, Asteraceae, abundance dynamics, population-based studies, Republic
of Mordovia, Red Data Book, afforestation, rare species.

sobre sus preferencias ecológicas y condiciones ambientales de sus hábitats. Galatella rossica es una
especie de planta en peligro incluida en el Libro Rojo de la República de Mordovia (Rusia Central). Se

detallados en la región.

Palabras clave: Galatella rossica, Asteraceae, dinámica de la abundancia, estudios poblacionales.
República de Mordovia, libro rojo, reforestación, especie rara.

The genus Galatella Cass. ineludes
between 30 and 45 species distributed mainly
throughout Europe, Russia, Irán, and from
India to western China (Ling et al., 1985;
Nesom & Robinson, 2007; Tzvelev, 1959).
Its main centre of diversity is located within
Eastern Europe and Russia. Although main
systematic studies of the tribe invariably
argued for the independence of the genus
Galatella with respect to the genus Aster
(Ling et al., 1985; Nesom, 1994a,b; Nesom
& Robinson, 2007; Tzvelev, 1959), this
viewpoint remains debatable in regional
and national floras of Europe and Asia
(Brouillet et al., 2009; Ekim, 2012; Ignatov,
2014; Nesom & Robinson, 2007).

Galatella rossica Novopokr. is one of three
Galatella species known in the Republic of
Mordovia. This is perennial plant 25-150
cm. Numerous stems erect, covered by
short hairs. Leaves sessile, linear-lanceolate,
glandular-punctate, 8 mm in width and up
to 10 cm in length. Anthodes 7-12 mm in
length and 8-12 mm in width. Disk flowers
are jonquil-yellow, ray flowers - pinkish-
purple. Fruits - achenes with albescent
pappus (Ignatov, 2014; Merxmüller &
Schreider, 1976; Tzvelev, 1994). According
to different sources this species is named
as Galatella sedifolia (L.) Greuter (Greuter,
2003), G. punctata (Waldst. et Kit.) Nees
(Ignatov, 2014), Aster sedifolia L. subsp.
sedifohus (Merxmüller & Schreider, 1976).
We use the ñame Galatella rossica Novopokr.

240 I ARNALDOA 2%fjbliero - Junio, 2017

peripheral populations of plant

ArnaldoA 24 (1)¿

Khapugin & Kunaeva: Abundance dynamics of endangered species Galatella rossica (Asteraceae) ¡n the Republic of Mordovia: Short Report

During vegetative seasons of 2009-2013,
we have carried out estimation of abundance
dynamics of Galatella rossica individuáis in
location 1, and during 2004-2013 in location
2. For this purpose, we have counted total
number of individuáis in each studied
location. In order to count the abundance
of individuáis in each population, each
aboveground shoot was considered as one
individual.

Results and discussion

As a result of conducted investigations,
we found that abundance of Galatella rossica

individuáis in location 1 has increased
from 2009 to 2010 in the first year of study
when vegetation cover has been influenced
by extremely dry season (Fig. 2). Due to
oppression State of main competitors,
Galatella rossica has increased its own
abundance in location 1. However, in next
years its abundance has decreased till 147
individuáis in 2013 (minimal valué over all
study period).

This decline of abundance was caused by
decrease of grazing and haymaking impacts
on this flood meadow. As a consequence.

2009 2010 2011 2013

Study years

shrub vegetation became to overgrow
those areas. As a result Galatella rossica
could not compete with shrubs and tall
herbaceous vegetation; and its population
area gradually had declined.

In location 2, in the year 2013 Galatella
rossica population was presented by the
smallest number of individuáis over a
whole study period (Fig. 3) similarly to
situation with location 1. Although this
population is much more numerous

in compare with location 1 (the largest
number of individuáis reached 1424 units
in 2008), we have observed that Galatella
rossica plants located directly near the forest
canopy (under shadiness impact) differed
by lower vitality. This was reflected in
lower height of individuáis and anthode's
diameter; the flowering stage of these
plants has begun earlier in compare with
individuáis distant of the edge of forest
stand. However, these differences were

242 I ARNALDOA 2%|t ; liero - Junio, 2017

endangered species Galatella /

; Republic of Mordovia: -Short Report

Khapugin & Kunaeva: Abundance dynamics of e

registered visually; therefore special studies
of this phenomenon are needed in future.

Regarding of abundance dynamics in
Gnlntelln rossicn population in location 2, we
found that number of individuáis varied
during the first study years (2004-2006)
until the year 2008. In this year we registered
sharp increase of the abundance up to

maximal valué over the whole study period
(Fig. 3). Further we have observed constant
decrease in abundance of individuáis year
by year during the entire subsequent period
of our study. In our opinión, there are two
interrelated reasons.

At first, the termination of pioneer
camp functioning caused the reduction

Fig. 3. Abundance dynamics of individuáis in Galatella rossic

of trampling effects at this flood meadow.
This in turn led to its overgrowing of tall
vegetation that depresses the Gnlntelln rossicn
population. Additionally, large population
of Spirnen cremtn L. is known there. The
termination of pioneer camp functioning
in 2008 had a positive impact on status of
its population. Year by year Spirnen crenntn
population has increasingly expanded on
this flood meadow vegetatively and by
seeds. Therefore, another one regionally
rare species ( Spirnen crenntn) became one
more competitor for Gnlntelln rossicn in
location 2.

At second, decrease of anthropogenic
impact has resulted in intensification of
afforestation processes at forest edge where
Gnlntelln rossicn population is situated. So,
active resettiement (seed reproduction)
of Acer tntnricum and Quercus robiir was
observed here. Taking into account that
Acer tntnricum is considered as one of trees
forming forest stand here (Khapugin et
al., 2016b), we should say that without
changes in current situation Gnlntelln rossicn
population in location 2 can disappear due
to its displacement by more competitive

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 243

Khapugin & Kunaeva: i

f endangered species Galatella /

Conclusión

Taking into account all mentioned
above, we can conclude that Galatella
rossica populations in the Republic of
Mordovia suffer of natural succession
processes. Main threat for them is complete
cessation of grazing in their habitat leading
to 1) afforestation of their habitats; 2)
overgrowing of habitats by tall vegetation.
In our opinión, exactly these factors have
caused the decline of studied populations of
Galatella rossica.

In order to understand what factors
influence status of Galatella rossica
populations in Mordovia, resumption of
annual detail population-based studies
of this species is necessary. Investigations
of age structure of species' populations,
long-term abundance dynamics, data on
morphometry of different-age individuáis,
composition of the accompanying flora,
seed ecology can provide more complete
knowledges on status of this species
in Central Russia and to help prepare
appropriate recommendations for its

Authors would like to thank the
Children's Ecological Organisation "Green
World" for the organisation of annual
republican camps "Sura" dedicated to the
research project "Tree of Land Where I
Live".

Literature cited

Brouillet, L.; T. K. Lowrey; L. Urbatsch; V. Karaman-
Castro; G. Sancho; S. Wagstaff & J. C. Semple.

2009. Astereae. In: V. A. Funk, A. Susanna, T. F.
Stuessy & R. J. Bayer (eds.). Systematics, Evo-
lution, and Biogeography of Compositae, pp. 589-
629. IAPT, Vienna.

Chau, M. M.; W. R. Reyes & T. A. Ranker. 2013.
Ecological factors influencing growth of the en¬
dangered Hawaiian fern Marsilea villosa and impli-

cations for conservaron management. American
Journal of Botany 100:1532-1543. DOI: 10.3732/
ajb.1200625.

Ctvrtlíková, M.; J. Hejzlara; J. Vrba; J. Kopácek; J.
Nedoma; R Hekera; A. J. Wade & S. Roy. 2016
Lake water acidification and temperature have a la-
gged effect on the population dynamics of Isoétes
echinospora via offspring recruitment. Ecologi¬
cal Indicators 70: 420-430. DOI: 10.1016/j.eco-
lind.2016.06.042.

Ekim, T. 2012. Galatella Cass. In: A. Güner, S. Asían,
T. Ekim, M. Vural, M. T. Babag (eds.). Türkiye Bi-
tkileri Listes! (Damarli Bitkiler), pp. 161-162. Flora
Aragtirmalari Dernegi ve Nezahat Gokyigit Botanik
Bahgesi: istanbul, Turkey.

Greuter, W. 2003. The Euro+Med treatment of Aste¬
reae (Compositae) - generic concepts and required
new ñames. Willdenowia 33:45-47. DOI: 10.3372/
w¡.33.33103.

Ignatov, M. S. 2014. Galatella Cass. In: Flora of Center
of European part of Russia, vol. 11,357-358. KMK
Scientific Press Ltd., Moscow. (In Russian).

IUCN. 2012a. IUCN Red List Categories and Criteria:
Versión 3.1, second ed. Gland, UK: Switzerland and
Cambridge.

IUCN. 2012b. Guidelines for Application of IUCN Red
List Criteria at Regional and National Levels: Ver¬
sión 4.0. Gland, UK: Switzerland and Cambridge.

IUCN. 2014. IUCN Standards and Petitions Subcommit-
tee. Guidelines for Using the IUCN Red List Catego¬
ries and Criteria. Versión 11. Prepared by the Stan¬
dards and Petitions Subcommittee. Available from:
http://www.iucnredlist.org/documents/
RedListGuidelines.pdf. (accessed: 15 Fe-
bruary 2017).

Khapugin, A. A. & G. G. Chugunov. 2015. Two popu¬
lations of Lunaria rediviva L. (Cruciferae Juss.) at
the eastern edge of its range. Wulfenia 22: 83-94.

Khapugin, A. A.; G. G. Chugunov; T. B. Silaeva & E. N.
Kunaeva. 2016a. Neottianthe cucullata (L.) Schltr.
(Orchidaceae Juss.), an endangered orchid in Cen¬
tral Russia. Wulfenia 23:189-202.

Khapugin, A. A.; T. B. Silaeva & Yu. N. Utorova. 2016b.
Three Maples ( Acer L., Aceraceae Juss.) in the Re¬
public of Mordovia, Russian Federation. Annales
Universitatis Paedagogicae Cracoviensis Studia
Naturae 1:129-143.

Khapugin, A. A.; G. G. Chugunov; E. V. Vargot & T. B.
Silaeva. 2017a: Vascular plants at the protected

244 I ARNALDOA 2%^/Íiero - Junio, 2017

endangered species Galatella /

3 Republic of Mordovia: -Short Report

Khapugin & Kunaeva: Abundance dynamics of e

areas network of the Republic of Mordovia: pre-
sent status and prospects. In: S. A. Mukul & A.
Z. M. M. Rashid (eds.). Protected Areas: Policies,
Management and Future Directions, pp. 203-231.
Nova Science Publishers, Inc., USA.

Khapugin, A. A.; T. B. Silaeva; E. V. Vargot; G. G. Chu-
gunov; G. A. Grishutkina; 0. G. Grishutkin; E. V.
Pismarkina & Ju. S. Orlova. 2017b. Estimation of
taxa included in the first volume of the Red Data
Book of the Republic of Mordovia (Russia) using
the IUCN Red List Categories and Criteria. Nature
Conservation Research 2, accepted article. Avai-
lable from: http://ncr-journal.bear-land.org/
article/48. (In Russian).

Ling, R.; Y. L. Chen & Z. Shi. 1985. Astereae. In: R.
Ling, Y L. Chen & Z. Shi (eds.). Flora Reipublicae
Popularis Sinicae, vol. 74, pp. 70-353. Science
Press, Beijing.

Merxmüller, H. & A. Schreider. 1976. Aster L. In: T. G.

Tutin, V. H. Heywood, N. A. Burges, D. M. Moore,
D. H. Valentine, S. M. Walters & D. A. Webb (eds.).
Flora Europaea. 4. Plantaginaceae to Compositae
(and Rubiaceae), vol. 4, pp. 112-116. Cambridge
Umversity Press, Cambridge.

Nesom, G. L. & H. Robinson. 2007. Tribe Astereae
Cass. In: J. W. Kadereit & C. Jeffrey (eds.). The
families and genera of vascular plants 8. Flowering
Plants. Eudicots. Asterales, pp. 316-376. Springer,
Berlín. DOI: 10.1007/978-3-540-31051-8_7.

Nesom, G. 1994a. Subtribal classification of the Astere¬
ae (Asteraceae). Phytologia 76:193-274.

Nesom, G. 1994b. Review of the taxonomy of Aster
sensu lato (Asteraceae: Astereae), emphasizing the
New World species. Phytologia 77:141-297.

Resolution of the Government of the Republic of Mor¬
dovia □ 559 from October 1, 2015. 2015. «On
Amending Resolution of the Government of the Re¬
public of Mordovia from February 25, 2003 □ 61:
“About the Red Data Book of rare and endangered
species of plants, fungí and animáis of the Republic
of Mordovia”». (In Russian).

and native population dynamics. Restoration Ecolo-
gy DOI: 10.1111/rec.l 2468.

Tzvelev, N. N. 1959. Galatella Cass. In: B. K. Schischkin
(ed.). Flora of the USSR, vol. 25, pp. 138-172. Pub-
lisher of the Academy of Sciences of USSR, Mos-
cow & Leningrad. (In Russian).

Tzvelev, N. N. 1994. Galatella Cass. In: N. N. Tzvelev
(ed.). Flora of the European part of USSR, vol. 7,
pp. 189-194. Nauka, Saint-Petersburg. (In Rus¬
sian).

Webster, C. R.: M. A. Jenkins & J. H. Rock. 2005. Long-
term response of spring flora to chronic herbivory
and deer exclusión in Great Smoky Mountains Na¬
tional Park, USA. Biological Conservation 125 (3):
297-307. DOI: 10.1016/j.biocon.2005.03.027

Silaeva, T. B.; I. V. Kiryukhin; G. G. Chugunov; V. K.
Levin; S. R. Mayorov; E. V. Pismarkina; A. M.
Ageeva & E. V. Vargot. 2010. Vascular plants of
the Republic of Mordovia (synopsis of flora). Pub-
lisher of the Mordovia State University, Saransk. (In
Russian).

Trowbridge, C. C.; A. Stanley; T. N. Kaye; P. W. Dun-
widdie & J. L. Williams. 2016. Long-term effects
of prairie restoration on plant community structure

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 245

Khapugin & Kunaeva: Abundance dynamics of endangered species Galatella rossica (Asteraceae) ¡n the Republic of Mordovia: Short Report

ANEXO

246 I ARNALDOA

Arnaldoa 24 (1): 247 - 266, 2017
http://doi.org/10.22497/arnaldoa.241.241]

ISSN: 1815-8242 (edición impresa)
ISSN: 2413-3299 (edición Online)

Catálogo de las briofitas de la
región La Libertad, Perú

Catalogue of the bryophytes of
La Libertad Región, Perú

Resumen

248 I ARNALDOA 2

Rodrígu

/.: Catálogo de las briorita

i reglón La Libertad, Perú

Material y métodos

El estudio se realizó de la revisión
de material de herbario para la región
La Libertad, Perú (acrónimos: HUT,
MO) (Thiers, 2015), especialmente de las
colecciones efectuadas por P. D. Hegewald
& E. H. Hegewald (EPH), y de aquellas
realizadas en las diversas expediciones
botánicas por personal del Herbarium
Truxillense de la Universidad Nacional de
Trujillo (HUT) a través de su historia: N.
Angulo E., A. López M., A. Sagástegui A.,
H. Aguado L., F. Ayala F., E. Rodríguez R.
Otros colectores también han enriquecido la
colección de musgos para la región: K. Young,
M. Weigend, R. Bussmann, N. Pariagua Z.,
S. Arroyo A., entre otros. Las colecciones
modernas se realizaron de acuerdo con
la metodología y técnicas convencionales
de herborización (Rodríguez & Rojas,
2006). Las determinaciones registradas
en las etiquetas de los especímenes en los
herbarios respectivos, han sido efectuadas
por especialistas a través del tiempo, tales
como: H. E. Robinson, E. Hegewald, R. H.
Zander, H. A. Crum, H. Ochi, D. Griffin III,
B. Alien, J. Lewinsky, S. Churchill, S. He, E.
Feltz, J. A. Jiménez, B. Alien, J. P. Frahm, J.
Larraín.

Para cada especie, se indica: El nombre
científico aceptado en negrita y cursiva,
seguido con la cita del nombre del autor.
El Material Examinado (Exsiccatae) se
encuentra según su distribución geográfica
(DG) ordenado por provincias de la
región La Libertad en forma abreviada
(AS=Ascope, BO=Bolivar, CH=Chepén,
GC=Gran Chimú, JU=Julcán, OT=Otuzco,
PA=Pacasmayo, PT=Pataz, SC=Sánchez
Carrión, ST=Santiago de Chuco, TR=Trujillo,
VI=Virú), altitudes, ejemplar(es)

representativo(s) (ER) indicando el o los
colectores y signado por el número de

colección del colector principal, y el (los)
herbario(s) donde está(n) depositado(s).
La lista completa de sinónimos para las
especies, si las tuviera, pueden consultarse
en los portales de internet: The Plant List
(The Plant List, 2015) y TROPICOS-Base
de Datos del Missouri Botanical Garden
Herbarium (MO) (Trópicos, 2015). Los
detalles completos de las publicaciones de
las especies se encuentran en este último
portal y en The International Plant Ñames
Index (IPNI) (IPNI, 2015).

Nota: (*) indica el número del herbario
HUT, el mismo que erróneamente es
considerado como número del colector en
algunas publicaciones.

Resultados y discusión

ACROBOLBACEAE

Lethocolea glossophylla (Spruce)
Grolle

DG: OT. 3050-3100 m. ER: P. D. Hegewald
& E. H. Hegewald 5300 (EPH, MO).

AMBLYSTEGIACEAE

Cratoimironfilicinum (Hedw.) Spruce

DG: OT, SC. 2700-3000 m. ER: P. D.
Hegewald & E. H. Hegewald 6067 (HUT).

ANDREAEACEAE

Andreaea sp.

DG: ST. 4150 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H. Hegewald 6003 (EPH, MO).

ANTHOCEROTACEAE

Anthoceros sp.

DG: OT. 1300-3100 m. ER: P. D. Hegewald
& E. H. Hegewald 6519 (EPH, MO).

ARNELLIACEAE

Gongylantlius liebmannianus (Lindenb.
& Gottsche) Steph.

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 249

Rodrígu

uez etal.\ Catálogo de las brlofltas de la reglón La Libertad, Perú

DG: OT. 3100 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H Hegewnld 5299 (EPH, MO).
AYTONIACEAE

Asterella elegans (Spreng.) Trevis.

DG: GC. No se descarta su presencia en
la provincia Gran Chimú por encontrarse en
zona limítrofe con Contumazá en donde fue
colectada a 2250 m de altitud (colección: A.
López et ni 3694*( HUI)).

Asterella macropoda (Spruce) A. Evans
DG: OT. 3100 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H Hegewnld 7174 (EPH, MO).

Asterella sp.

DG: ST. 3800 m. ER: A. Sngnstegui A., /.
Mostacero L. &M. Diestro Q. 11707 ( HUT).
Mannia hegewaldii Bischl.

DG: OT. 3100 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H Hegewnld 5168 (EPH, MO).

Plagiochasma rupestre (J. R. Forst. & G.
Forst.) Steph.

DG: OT, TR. 920-2000 m. ER: F. Aynln F.
7227*{ HUT), P. D. Hegewnld & E. H Hegewnld
5037 (EPH, MO).

BARTRAMIACEAE

Anacolia laevisphaera (Taylor) Flowers
DG: OT, SC, ST. 2350-4000 m. ER: A.

Sngnstegui A., J. Mostacero L. & M. Diestro Q.
11711 (HUT); A. Sngnstegui A., J. Mostacero
E. & M. Diestro Q. 11983 (HUT, MO); P. D.
Hegewnld & E. H Hegewnld 7218 (EPH, HtJX/
MO).

Bartramia brevifolia Brid.

DG: OT. 3100 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H Hegewnld 5283 (EPH, MO).

Bartramia mathewsn Mitt.

DG: ST. 4150 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H Hegewnld 5983 (EPH, MO).

Bartramia potosica Mont.

DG: OT, SC. 2690-4150 m. ER: P. D.

Hegewnld & E. H Hegewnld 5162 (EPH,

MO); P. D. Hegewnld & E. H Hegewnld 5166
(EPH, HUT, MO).

Breutelia trianae (Hampe) A. Jaeger
DG: BO. 3900 - 4150 m. ER: R. IV.
Bussmnnn , N. Pnningun Z„ C. Vega O. & C.
Téllez A. 18067B (MO).

Philonotis angulata (Taylor) A. Jaeger
DG: OT, SC. 3050-3600 m. ER: A. López
M. & A. Sngnstegui A. 2849*(HUT), P. D.
Hegewnld & E. H Hegewnld 5934 (EPH, MO).

Philonotis cernua (Wilson) D. G. Griffín
&W.R. Buck

DG: PT. 3700 m. ER: K. Yoiing 3133
(MO).

Philonotis fontanella (Hampe) A.
Jaeger

DG: BO. 3250 m. ER: N. Pnningun Z„ R.
Bussmnnn & C. Vegn O. 8600 (MO).

Philonotis Imstata (Duby) Wijk &
Margad.

DG: OT. 2000 m. ER: P. D. Hegewald &
E. H. Hegewnld 5036 (EPH, HUT, MO).
Philonotis uncinata (Schwágr.) Brid.
DG: OT, TR. 60-3050 m. ER: A. Sngnstegui
A. 6986*( HUT); P. D. Hegewnld & E. H
Hegewnld 7184 (EPH, MO). "musgo".
BRACHYTHECIACEAE
Brachythecium Schimp.

DG: SC. 3542 m. ER: S. Arroyo A., E.
Rodríguez R. & M. Moro C. 301 (HUT, MO).

Rhynchostegimn riparioides (Hedw.)
Cardot

DG: SC. 2300 m. ER: A. López M. & A.
Sngnstegui A. 2764* (HUT).

250 I ARNALDOA 24^Íero-Junio,;

Rodrígu

/.: Catálogo de las briorita

i reglón La Libertad, Perú

Rkynckostegium sp.

DG: OT. 3050 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H Hegewald 7192 (EPH, MO).

BRYACEAE

Acidodontium exaltatum (Spruce ex
Mitt.) A. Jaeger

DG: TR. 550-750 m. ER: F. Ayala F.
7110*(HUT) / 7118% HUI), "musgo".
Acidodontium lanceolatifolimn Ochi
DG: GC, OT. 2050 m. ER: P. D. Hegewald
& E. H Hegewald 7204 (Holótipo: EPH, MO),
5214 (Parátipo: MO).

Acidodontium seminerve Hook. í. &
Wilson

DG: OT. 3050 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H Hegewald 7202 (EPH, MO).

Acidodontium subrotundum (Taylor)
Hook. í. & Wilson

DG: OT, TR. 500-3100 m. ER: P. D.
Hegewald & E. H Hegewald 7449 (HUI).
Anomobryumfilifomie (Griíí.) A. Jaeger
DG: OT, SC. 3000-3400 m. ER: H. Aguado
E. 6726 * 6744% HUT). "musgo".

Nota: En HUT bajo el nombre invalido:
Anomobryum filiforme (Dicks.) Solms.

Anomobryumfilifomiev ar. concinnatum
(Spruce) Loeske

DG: OT. 2900-3050 m. ER: P. D. Hegewald
& E. H Hegewald 5091 (EPH, HUT, MO).

Anomobryum julacetmi (Schrad. ex G.
Gaertn., B. Mey. & Scherb.) Schimp.

DG: OT, ST. 2000-3400 m. ER: P. D.
Hegewald & E. H Hegewald 6060 (EPH, ¿¿fe,
MO).

Anomobryum prostratum (Müll. Hal.)
Besch.

DG: OT. 2350-3050 m. ER: P. D. Hegewald
& E. H Hegewald 5140 (EPH, MO).
Bmckymenium sp. 1
DG: OT. 2050 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H Hegewald 5242 (EPH, MO).
Bmckymenium sp. 2
DG: TR. 820 m. ER: N. Angulo E. 4667*
(HUT). "musgo".

Bmckymenium acuminatum Harv.

DG: OT. 2050-2690 m. ER: P. D. Hegewald
& E. H Hegewald 5237 (EPH, MO).

Bmckymenium columbicum (De Not.)
Broth.

DG: TR. 500-700 m. ER: P. D. Hegewald &

E. H Hegewald 7445 (EPH, MO).

Bmckymenium systylium (Müll. Hal.)
A. Jaeger

DG: OT. 2050 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H Hegewald 5258 (EPH, MO).

Bryum alpinum Huds. ex With.

DG: OT, SC. 2050-3000+m. ER: P. D.
Hegewald & E. H. Hegewald 6031 (EPH, MO).
Bryum andícola Hook.

DG: OT, SC, TR. 500-3000+ m. ER: P. D.
Hegewald & E. H. Hegewald 6027 ( EPH, MO).
Bryum argenteum Hedw.

DG: GC, OT, PT, SC, ST, TR. 700-3000 m.
ER: F. Ayala F. 7137% HUT). "musgo".
Bryum billarderii Schwagr.

DG: OT. 1300 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H Hegewald 6478 (EPH, MO).

Bryum capillare Hedw.

DG: OT, SC, TR. 585-3000 m. ER: F. Ayala

F. 7052* 7072* 7120* (HUT). "musgo".

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 251

Rodríguez etai. Catálogo de las brlofltas de la reglón La Libertad, Perú

Bryum chryseum Mitt.

DG: OT, TR. 500-2050 m. ER: F. Ayaln F.
7138 * (HUI), "musgo".

Bryum densifolium Brid.

DG: OT. 3050 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H Hegewnld 7171 (EPH, MO).

Bryum spininervium Broth.

DG: OT. 2050 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H Hegewnld 5262 (EPH, HUT).

Bryum truncorum (Brid.) Brid.

DG: ST, TR. 750-3050 m. ER: E. Paredes
4734\ HUT).

Leptobryum wilsonii (Mitt.) Broth.

DG: OT. 1300 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H Hegewnld 6521 (EPH, MO).

Polilia cruegeri (Hampe) A. L. Andrews
DG: TR. 60 m. ER: A. Sngnstegui A.
6987*( HUT). "musgo".

Pohliaflexuosa Hook.

DG: SC. 3000 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H. Hegewnld 6047 (EPH, MO).
Pohliafusifem (Mitt.) Broth.

DG: OT. 3600 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H. Hegewnld 5978 (EPH, MO).

Pohlia walilenbergii (F. Weber & D.
Mohr) A. L. Andrews

DG: OT. 2600 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H. Hegewnld 5124 (EPH, MO).

Rhodobryum aubertii (Schwágr.) Thér.
DG: OT. 3100 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H. Hegewnld 5124 (EPH, MO).

Rhodobryum (Schimp.) Limpr.

DG: GC. 2600 m. ER: E. Rodríguez R. &
A. Angeludis C. 2380 (HUT, MO).

CEPHALOZIACEAE
Ceplmlozia crossii Spruce
DG: OT. 2000 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H Hegewnld 6006 (EPH, MO).

Ceplmloziopsis intertexta (Gottsche)
R.M. Schust.

DG: OT. 1300-2000 m. ER: P. D. Hegewnld
& E. H Hegewnld 5042 (EPH, MO).
CHONECOLEACEAE
Chonecolea andina Grolle & Váña
DG: OT. 2690 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H. Hegewnld 5192 (EPH, MO).
CRYPHAEACEAE
Crypliaea F. Weber

DG: OT. 3050 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H. Hegewnld 7198 (EPH, MO).

Crypliaea latifolia Mitt.

DG: TR. 500-700 m. ER: P. D. Hegewnld &
-f; Hegewnld 7271 (EPH, MO).

Crypliaea pateas Hornsch. ex Müll. Hal.
DG: OT. 2050 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H. Hegewnld 5209 (EPH, MO).
DALTONIACEAE
Daltonia ovalis Taylor
DG: OT. 3100 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H Hegewnld 7203n (EPH, MO).

Daltonia stenopliylla Mitt.

DG: OT. 3100 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H Hegewnld 7203 (EPH, MO).

Lepidopilum longifolium Hampe
DG: GC. 2400 m. ER: E. Rodríguez R. & S.
Arroyo A. 3136 (HUT, MO).
DICRANACEAE

Aongstroemia julacea (Hook.) Mitt.

252 I ARNALDOA 2%^Íero-Junio,;

Rodrígu

/.: Catálogo de las briorita

i reglón La Libertad, Perú

DG: SC. 3000 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H Hegewnld 6045 (EPH, MO).

Campylopus albidovirens Herzog
DG: OT. 3650 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H Hegewnld 5949 (EPH, MO).

Campylopus areodictyon (Müll. Hal.)
Mitt.

DG: ST. 4150 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H. Hegewnld 5990 (EPH, MO).

Campylopus chrismarii (Müll. Hal.)
Mitt.

DG: TR. 500-750 m. ER: F. Aynln F.
7066*, 7075*, 7105*, 7106*, 7116*,7117*, 7128*
(HUT). "musgo".

Campylopus concolor (Hook.) Brid.

DG: OT. 2750 m. ER: A. Eópez M., A.
Sngñstegui A. & G. Suárez G. 2669*(Hm).
musgo .

Campylopus edithae Broth.

DG: SC. 3000+ m. ER: P. D. Hegewnld &
E. H Hegewnld 6019 (EPH, MO).

Campylopus flexuosus var. incacorralis
(Herzog) J.-P. Frahm

DG: BO. 3682 m. ER: N. Pnnmgun Z„ R.
IV. Bussmnnn & C. Vega O. 8803 (MO).
Campylopus introflexus (Hedw.) Brid.
DG: TR. 700-750 m. ER: F. Aynln F. 7069*,
7087* 7088*( HUT).

Nota: En Trópicos (2015) se encuentra
como sinónimo de C. pilifer Brid.; sin
embargo en The Plant List (2015) se
encuentra como nombre aceptado.
Campylopus nivalis (Brid.) Brid.

DG: GC, ST. 2400-4150 m. ER: E.
Rodríguez R. & S. Arroyo A. 3135 (HUT, MO).

Campylopus nivalis vía. multicapsularis
(Müll. Hal.) J.-P. Frahm

DG: OT, TR. 500-2690 m. ER: P. D.
Hegewnld & E. H Hegewnld 5164 (EPH, MO).

Campylopus nivalis (Brid.) Brid. var.
nivalis

DG: TR. 700 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H Hegewnld 7263 (EPH, MO), 7351 (EPH,
HUT, MO).

Campylopus perexilis (Müll. Hal.) Paris
DG: SC. 3000 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H Hegewnld 6035 (EPH, MO).

Campylopus pilifer Brid.

=Campylopus polytrichoides De Not.

DG: OT, SC, TR. 500-3000+ m. ER: A.
Sngñstegui A. 9216 (HUT, MO). "musgo".

Campylopus subannotinus Thér. & P.
de la Var de

DG: OT. 2690 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H Hegewnld 5164 (EPH, HUT).

Campylopus tricliophylloides Thér. ex

DG: OT. 2000 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H Hegewnld 5053 (EPH, MO).

Campylopus zygodonticarpus (Müll.
Hal.) Paris

DG: SC. 3000 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H Hegewnld 6015 (EPH, MO).

Campylopus sp.

DG: TR (cerro Campana). 800 m. ER: A.

Sngñstegui A., R. Ramírez V. & J. Mostacero L.
12944 (HUT, MO).

Chorisodontium mittenii (Müll. Hal.)
Broth.

DG: BO. 3950 m. ER: R. IV. Bussmnnn, N.
Pnningun Z., C. Vega O. & C. Tellez A. 17565
(MO).

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 253

Rodrígu

uez etal.\ Catálogo de las brlofltas de la reglón La Libertad, Perú

Dicmnella Schimp.

DG: SC. 3000 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H Hegewald 6065 (EPH, MO).

Dicmnella Schimp.

DG: OT. 2700 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H Hegewald 7248 (EPH, MO).

Dicmnella Schimp.

DG: OT. 2000 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H Hegewald 6008 (EPH, MO).

Dicmnodontium pulchroalare Broth.
DG: BO. 3140 m. ER: N. Paniagua Z„ R.
IV. Bussmann & C. Vega O. 8694(MO).
Holomitrium Brid.

DG: BO. 3070 m. ER: N. Paniagua Z„
R.W. Bussmann & C. Vega O. 8666(MO).
Hygrodicmnum bolivianum Herzog
DG: OT. 3600 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H. Hegewald 5963 (EPH, HUT, MO).

Pilopogon guadalupensis (Brid.) J.-P.

DG: SC. 3000 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H. Hegewald 5964, 6041 (EPH, MO).
Pilopogon laevis (Taylor) Thér.

DG: ST. 4150 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H. Hegewald 5979 (EPH, MO).

Pilopogon pemvianus (R.S. Williams)
J.-P. Frahm

DG: OT, SC. 2690-4150 m. ER: P. D.
Hegewald & E. H. Hegewald 6021 (EPH, HUT,
MO).

DITRICHACEAE
Ditrichum gracile (Mitt.) Kuntze
DG: BO. 3280 - 3600 m. ER: M. Weigend
et al. 2000/851 (MO).

Ditrichum sp. 1

DG: OT. 2400 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H Hegewald 5043 (EPH, MO).

Ditrichum sp. 2

DG: OT. 3400 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H Hegewald 5931 (EPH, MO).

Pleuridium andinum Herzog
DG: OT. 3400 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H Hegewald 5930 (EPH, MO).
ENCALYPTACEAE
Encalypta asperifolia Mitt.

DG: BO, OT, SC. 2900-4150 m. ER: R. IV.
Bussmann, N. Paniagua Z., C. Vega O. & C.
TellezA. 18074 ( MO).

ENTODONTACEAE
Entodon beyrichii (Schwágr.) Müll. Hal.
DG: OT. 2050-3100 m. ER: P. D. Hegewald
& E. H. Hegewald 5930 (EPH, MO).

Entodon erythropus Mitt.

DG: OT. 2650 m. ER: A. Eópez M. & A.
Sagástegui A. 2670*(HUT).

Entodon jamesonii (Taylor) Mitt.

DG: OT, PT. 3050-3100 m. ER: A. Eópez
M. &A. Sagástegui A. 3536% HUT).

Entodon micans Herzog
DG: BO. 1916 m. ER: R.W. Bussmann, N.
Paniagua Z., C. Vega O. & C. Téllez A. 17381
(MO).

Erythrodontium longisetum (Hook.)
Paris

DG: OT. 2050 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H. Hegewald 5229 (EPH, MO).
FABRONIACEAE

Fabronia ciliaris var. polycarpa (Hook.)
W. R. Buck

254 I ARNALDOA 2%^Íero-Junio,;

Rodrígu

/.: Catálogo de las briorita

i reglón La Libertad, Perú

DG: OT. 2350-2400 m. ER: P. D. Hegewnld
& E. H Hegewnld 5057 (EPH, MO).

Fabronia jamesonii Taylor
DG: OT. 1300-2700 m. ER: P. D. Hegewnld
& E. H Hegewnld 7229 (EPH, MO).
FISSIDENTACEAE
Fissidens asplenioides Hedw.

DG: OT. 2690 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H Hegewnld 5139 (EPH, HUT, MO).
Fissidens bryoides Hedw.

DG: OT, SC. 1300-3400 m. ER: P. D.
Hegewnld & E. H Hegewnld 6051 (EPH, MO).
Fissidens crispas Mont.

DG: OT. 2050-3100 m. ER: P. D. Hegewnld
& E. H Hegewnld 5032 (EPH, HUT, MO).
Fissidens curvatus Hornsch.

DG: OT. 2050 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H. Hegewnld 5244 (EPH, HUT, MO).

Nota: En HUT como Fissidens milobnkeri
L. F. Koch.

Fissidens excurrentinervis R.S. Williams
DG: OT. 2000-3400 m. ER: P. D. Hegewnld
& E. H. Hegewnld 5112 (EPH, HUT, MO).
Fissidens rigidulus Hook. í. & Wilson
DG: OT, SC. 3000-3050 m. ER: P. D.
Hegewnld & E. H. Hegewnld 7193 (EPH, HUT,
MO).

FOSSOMBRONIACEAE

Fossombronia sp. 1

DG: OT. 2690 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H. Hegewnld 5193 (EPH, MO).
FRULLANIACEAE

Frullanin cucullata Lindenb. &
Gottsche

DG: TR. 500 m. ER: F. Aynln E.

7189*(HUT). "musgo".

Fnillania haematocysta Spruce
DG: TR. 500 - 700 m. ER: P. D. Hegewnld
& E. H Hegewnld 7269 (EPH, MO).

Fmllania intumescens (Lehm. &
Lindenb.) Lehm. & Lindenb.

DG: OT. 3100 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H Hegewnld 5295 (EPH, MO).

Fmllania osculantiara De Not.

DG: PT, TR. 500-3250 m. ER: A. Eópez M.
& A. Sngnstegui A. 3467*(HUT); A. Eópez M.
4875*(HUT).

Fmllania riparia Hampe ex Lehm.

DG: TR. s.a. (lomas de Virú). ER: F.
Aynln F. 7029 * 7931 * 7032* (HUT).

Fmllania squarrosa Dumort
DG: TR. 500-3250 m. ER: F. Aynln F.
71 72*, 71 77*(HUT). "musgo".

Fmllania tetraptera Nees & Mont.

The Plant List (2015) menciona que es un
taxón aún por resolver. En el herbario HUT
existe un ejemplar signado como Isótipo,
bajo el nombre de: Frullnnin tetrnptern H.
Robinson.

DG: TR. 550 m. ER: F. Aynln F.
7175*( Isótipo: HUT).

Fmllania sp. 1

DG: TR. 500-600 m. ER: P. D. Hegewnld &
E. H Hegewnld 5011 (EPH, MO).

Fmllania sp. 2

DG: OT. 2000 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H Hegewnld 5052 (EPH, MO).
FUNARIACEAE
Entosthodon andícola Mitt.

DG: TR. 585-650 m. ER: F. Aynln F.
7044*(HUT). "musgo".

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 255

Rodrígu

uez etal.\ Catálogo de las brlofltas de la reglón La Libertad, Perú

Entostliodon laevis (Mitt.) Fiíe
DG: OT. 2050 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H. Hegewald 5239 (EPH, MO).

Entostliodon lindigii (Hampe) Mitt.

DG: ST. 4190 m. ER: M. J. Cano & J. A.
Jiménez 4982 (MO).

Fuñaría calvescens Schwágr.

DG: OT. 2000 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H Hegewald 5025 (EPH, MO).

Fuñaría hygrometrica Hedw.

DG: OT. 3200 m. ER: H. Aguado E.
6727*{ HUI), "musgo".

Fuñaría mathwesii (Hook. í.) Broth.
DG: TR. 500 m. ER: A. Eópez M.
4894*( HUI).

Fuñaría megalostoma Mitt.

DG: BO. 3000 m. ER: A. Eópez M. & A.
Sagástegui é.. 3291*{ HUT). "musgo".
GEOCALYCACEAE
Clasmatocolea vemiicularis (Lehm.)
Grolle

DG: OT. 1300-3600 m. ER: P. D. Hegewald
& E. H. Hegewald 5075 (EPH, MO).
GIGASPERMACEAE
Lorentziella sp.

DG: TR. 650 m. ER: F. Ayala F.
7048*( HUT).

Nota: Colección citada por Ayala (1970)
y luego por Hegewald & Hegewald (1975).
Sin embargo, en el mismo artículo Ayala
(1970) indica también a la misma colección
como Barbilla replicato. Actualmente, en el
herbario HUT se encuentra determinada
como la última especie por Dr. Harold E.
Robinson.

GRIMMIACEAE
Grimmia longirostris Hook.

DG: OT, SC, ST. 2350-4150 m. ER: A.
Sagástegui A. et al. 16491 (MO).

Grimmia navicitlaris Herzog
DG: ST. 4150 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H. Hegewald 6001 (EPH, MO).

Grimmia trinervis R.S. Williams
DG: OT. 2690 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H. Hegewald 5158 (EPH, MO).

Racomitrium crispipilum (Taylor) A.
Jaeger

DG: BO, OT. 3040-3650 m. ER: R. IV.
Bussniann etal. 17649 (MO).

Racomitrium lanuginosum (Hedw.)
Brid.

DG: PT. 3950 m. ER: A. Eópez M. & A.
Sagástegui A. 3574*(HUT). "turbera".

Racomitrium lanuginosum subsp.
geronticum (Müll. Hal.) Vitt & C. Marsh
=Raconiitriunt geronticum Müll. Hal.

DG: PT. 3700 m. ER: K. Yoiing 3130
(MO).

Nota: Determinación inicial como su
sinónimo: R. geronticum Müll. Hal.

Racomitrium subsecundum (Hook. &
Grev. ex Harv.) Mitt.

DG: BO. 3950 m. ER: R. IV. Bussniann et
al. 17573 (MO).

Racomitrium sp.

DG: BO. 3850 m. ER: R. IV. Bussniann et
al. 17975 (MO).

Schistidium apocarpum (Hedw.) Bruch
& Schimp.

DG: OT. 2700-3650 m. ER: P. D. Hegewald
& E. H. Hegewald 7241 (EPH, MO).

256 I ARNALDOA 2%^Íero-Junio,;

Rodrígu

/.: Catálogo de las briorita

i reglón La Libertad, Perú

Schistidium sp. 1

DG: OT. 2900-3050 m. ER: P. D. Hegewald
& E. H Hegewald 5097 (EPH, MO).
GYMNOMITRIACEAE
Gymnomitrion laceratum (Steph.)
Horik.

DG: OT. 3600 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H Hegewald 5972 (EPH, MO).

StephanieUidium sleumeri (Müll. Frib.)
S. Winkl. ex Grolle

DG: SC. 3000 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H Hegewald 6038 (EPH, MO).
HEDWIGIACEAE
Braunia cirrhifolia (Mitt.) A. Jaeger
DG: OT. 2700 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H Hegewald 7226 (EPH, HUI).

Braunia plicata (Mitt.) A. Jaeger
DG: OT, SC. 2000 m. ER: P. D. Hegewald
& E. H Hegewald 5054 (EPH, MO).

Braunia rupestris (Mitt.) A. Jaeger
DG: OT. 2700 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H. Hegewald 7215 (EPH, HUT, MO).

Espécimen determinado como B.
secunda (Hook.) Bruch & Schimp.en el
herbario HUT.

Braunia sp. 1

DG: OT. 2690 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H. Hegewald 5169 (EPH, MO).

Braunia sp. 2

DG: SC. 3150 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H Hegewald 6013 (EPH, MO).

Hedwigia ciliata (Hedw.) P. Beauv.

DG: OT. 2900 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H Hegewald 5084 (EPH, HUT).

Especie citada por López (1993) bajo esta

misma colección.

Hedwigia nivalis (Müll. Hal.) Mitt.

DG: OT, SC. 2200-3050 m. ER: P. D.
Hegewald & E. H Hegewald 7216 (EPH, MO).

Hedwigidium imberbe (Sm.) Bruch &
Schimp.

DG: OT, SC, ST. 2690-3400 m. ER:
A. Sagástegiu A. 11108 (HUT, MO), P. D.
Hegewald & E. H Hegewald 5130 (EPH, HUT,
MO).

HYLOCOMIACEAE

Pleurozium quítense (Mitt.) B.H. Alien
& Magill

DG: OT. 3050 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H Hegewald 7195 (EPH, HUT, MO).

Nota: Espécimen determinado en
el herbario HUT como: Pilotricliella
quitensis (Mitt.) A. Jaeger por E. H.
Hegewald.

HYPNACEAE

Hypnum amabile (Mitt.) Hampe
DG: BO, OT. 3400-3800 m. ER: P. D.

Hegewald & E. H Hegewald 5921 (EPH, HUT,
MO).

Mittenothaninium reptans (Hedw.)
Cardot

DG: BO. 3140 m. ER: N. Paniagua Z„ R.
IV. Bussmann & C. Vega O. 8684 (MO).
Pylaisiafalcata Schimp.

DG: BO, SC. 3000-3550 m. ER: N.
Paniagua Z\ r P, H Bussmann & C. Vega O.
8882 (MO).

JUBULACEAE
Sp. Indet. 1

DG: BO (Uchumarca). 3950 m. ER: R. IV.

Bussmann, N. Paniagua Z„ C. Vega O. & C.
Téllez A. 17503 ( MO).

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 257

Rodríguez etal.\ Catálogo de las brlofltas de la reglón La Libertad, Perú

Sp. Indet. 2

DG: BO (Uchumarca). 3950 m. ER: R. W.
Bussmnnn, N. Pnningm Z., C. Vega O. & C.
TellezA. 17564 (MO).

JUNGERMANNIACEAE
Jungermannia amoena Lindenb. &
Gottsche

DG: SC. 3000 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H Hegewnld 6048 (EPH, MO).

Jungermannia spímerocarpa Hook.

DG: SC. 3600 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H Hegewnld 5974 (EPH, MO).

Lophozia incisa (Schrad.) Dumort.

DG: OT. 3050-3100 m. ER: P. D. Hegewnld
& E. H Hegewnld 3179 , 3183 (EPH, MO).

Lophozia subinflata (Spruce) R.M.
Schust

DG: OT. 3050-3600 m. ER: P. D. Hegewnld
& E. H Hegewnld 7181, 7185, 5937, 5968
(EPH, MO).

Nardia succulenta (Rich. ex Lehm. &
Lindenb.) Spreng.

DG: OT. 2000 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H Hegewnld 6006 (EPH, MO).
LEJEUNEACEAE

Dicranolejeunea axillaris (Nees &
Mont.) Schiíín.

DG: TR, VI. 710-720 m. ER: F. Aynln F.
7104*, 7081 *(HUT).

Microlejeunea ulicitm (Tayl.) Evans
DG: TR (Cerro Chiputur). s.a. ER: F.
Ay ala F. 7076*(HUT).

Lejeutiea sp. 1

DG: SC. 3000 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H Hegewnld 6115 (EPH, MO).

Lejeutiea sp. 2

DG: TR (cerro Campana). 500-700 m.
ER: P. D. Hegewnld & E. H Hegewnld 7268
(EPH, MO).

Lejeutiea sp. 3

DG: OT (Huancamarca). 2700 m. ER: P.

D. Hegewnld & E. H Hegewnld 7233 (EPH,
MO).

Ptychanthus Nees

DG: SC. 3000 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H Hegewnld 6087 (EPH, MO).
LEPYRODONTACEAE
Lepyrodon tomentosas (Hook.) Mitt.
DG: OT (cerro Sango). 3632 m. ER: A.
Sngñstegui A. & M. Znpntn C. 16431 (HAO+,
MO).

León et ni. (2010) también precisan que
esta especie neotropical se distribuye en la
región La Libertad.

LESKEACEAE

Leskeadelphus angustatus (Taylor) B.
H. Alien

DG: OT, SC. 2050-3050 m. ER: P. D.
Hegewnld & E. H Hegewnld 0Z7' r 5123, 5253,
6108, 7227 (EPH, HUT, MO).
LOPHOCOLEACEAE
Lophocolea (Dumort.) Dumort.

DG: OT. 2690-3100 m. ER: P. D. Hegewnld
& E. H Hegewnld 5143, 5149, 5301, 5935,
7180, 7182, 7188a, 7232 (EPH, MO).
LUNULARIACEAE

Lunularia cruciata (L.) Dumort. ex
Lindb.

DG: OT. 2350-2400 m. ER: P.D. Hegewnld
& E.H. Hegewnld 5072 (EPH, MO).

258 I ARNALDOA 2%^Íero-Junio,;

Rodrígu

/.: Catálogo de las briorita

i reglón La Libertad, Perú

MARCHANTIACEAE

Asterella elegans (Spreng.) Trevis.

DG: GC. 2250 m. ER: A. López M„ A.
Sagástegui A. &L Sánchez V. 3694% HUI)).

Nota: En la etiqueta indica como
perteneciente a la provincia Contumazá
(Cajamarca), sin embargo la localidad
precisada ahora pertenece a la provincia
liberteña Gran Chimú.

Asterella sp.

DG: ST. 3800 m. ER: A. Sagástegui A., J.
Mostacero L. &M. Diestra Q. 11707 (HUT).

Marchantía chenopoda L.

DG: GC, BO. 3100 m. ER: A. López M. &
A. Sagástegui. A 3216% HUT).

Marchantía plicata Nees & Mont.

DG: OT, PT, SC. 2000-3800 m. ER:
A. López M. & A. Sagástegui A. 2762*,
82 61 (HUT).

Marchantía polymorpha L.

DG: GC. No se descarta su presencia en
la provincia Gran Chimú, colindante con
la provincia de Contumazá (Cajamarca)
en donde ha sido colectada a 2600-2700
m de altitud (colección: A. Sagástegui A.
2527% HUT)). PT. 3597 m. ER: E. Rodríguez
R., E. Alvítez I. & L. Pollack V. 3850 (HUT).

Marchantía sp.

DG: ST. 2800 m. ER: A. Sagástegui A. & J.
Mostacero L. 11729 (HUT).

METEORIACEAE

Barbería tenuissima (Hook. & Wilson)
M. Fleisch.

León et al. (2010) precisan que esta
especie americana se distribuye en la región
La Libertad.

Squamidium leucotrichum (Taylor)
Broth.

DG: TR. 610-710 m. ER: F. Ayala
F.7103% HUT). "musgo".

Squamidium brasiliense (Hornsch.)
Broth.

DG: TR. 610 m. ER: F. Ayala F. 7190% HUT,
MO). "musgo".

METZGERIACEAE

Metzgeria parviinvolucrata Kuwah.

DG: OT. 3400 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H. Hegewald 5916a (EPH, MO).

Metzgeria sp.

DG: OT. 3050 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H. Hegewald 7211 (EPH, MO).

NECKERACEAE

Neckera andina Mitt.

DG: GC. Especie que habita en
la provincia Contumazá (La Herilla,
Guzmango; 2800 m) en Cajamarca
(colección: A. Sagástegui A. 9705-HUT). No
se descarta su presencia en la provincia
colindante Gran Chimú, perteneciente a la
región La Libertad.

Neckera chilensis Schimp. ex Mont.

= Neckera jamesonii Tayl.

DG: OT, TR, VI. 680-2700 m. ER: F. Ayala
F. 7077*, 7085*(HUT); P. D. Hegewald & E. H.
Hegewald 7213 (EPH, HUT, MO).

Nota: En el herbario HUT determinada
por su sinónimo Neckera jamesonii Taylor.

Neckera scabridens Müll. Hal.

DG: ST. 2800 m. ER: A. Sagástegui A
U843( MO).

Porotrichum substriatum (Hampe)
Mitt.

DG: OT. 2700 m. ER: P. D. Hegewald & E.

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 259

Rodrígu

uez etal.\ Catálogo de las brlofltas de la reglón La Libertad, Perú

H. He gemí Id 7219 (EPH, MO).
ORTHOTRICHACEAE
Amphidium tortuosum (Hornsch.)
Cufod.

= Amphidium cynthicnrpum (Mont.) Broth.
DG: OT. 3100 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H. Hegewnld 5274 (EPH, HUT, MO).

Nota: Determinado en HUT como A.
cynthicnrpum (Mont.) Broth.

Macromitrimn lomasense H. Rob.

DG: TR. 500-780 m. ER: F. Aynln
F. 7080* (HUT), F. Aynln F. 7124\ Holótipo:
US; Isótipo: HUT), P. D. Hegewnld & E. H.
Hegewnld 7458 (EPH, HUT, MO).

Especie no citada por López (1993),
registrada como indeterminada por Ayala
(1970), y referenciado Isótipo por López et
ni. (2003). Taxón considerado endémico a
Perú. También registrada para Lima (Lomas
de Lachay) (ver: Trópicos, 2015).

Macromitrimn podocarpi Müll. Hal.
DG: TR. 850 m. ER: A. López M. 4749*
(HUT).

Macromitrimn puncttitum (Hook. &
Grev.) Brid.

DG: OT. 2050 m. ER: P.D. Hegewnld &
E.H. Hegewnld 5225 (EPH, MO).
Orthotrichum aequatoreum Mitt.

DG: OT. 2050 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H Hegewnld 6088pp (EPH, MO).
Orthotrichum pariatmn Mitt.

DG: OT. 3400 m. ER: P. D. Hegewnld &
E. H. Hegewnld 5918 (EPH, MO).
Orthotrichum pungens Mitt.

DG: SC. 3000 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H Hegewnld 6099 (EPH, MO).

Orthotrichum pycnophyUum Schimp.
DG: OT. 3050-3650 m. ER: P. D.
Hegewnld & E. H Hegewnld 5319, 5948, 7201
(EPH, MO). Orthotrichum pycnophyllum
var. verrucosum (Müll. Hal.) Lewinsky
DG: OT, SC. 2050-3400 m. ER: P. D.
Hegewnld & E. H Hegewnld 5207, 5915, 6100
(EPH, MO).

Zygodon sp.l

DG: SC. 3000 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H Hegewnld 6105 (EPH, MO).

Zygodon sp.2

DG: OT. 2700 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H Hegewnld 7242 (EPH, MO).

PALLA VICINIACEAE
Symphyogytta Nees & Mont.

DG: BO. 3040 m. ER: R. IV. Bussmnnn, N.
Pnnmgun Z. & C. Vegn 0.17670( MO).
PELLIACEAE

Noteroclada confluens Taylor ex Hook.
f. & Wilson

DG: OT. 2700 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H. Hegewnld 5967 (EPH, MO).

Pellia sp.

DG: OT. 2690 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H. Hegewnld 5176 (EPH, MO).
PLAGIOCHILACEAE
Plagiochila sp. 1

DG: GC (Cascas, bosque Cachil). 2400

m. ER: E. Rodríguez R. & S. Arroyo A. 3134

(HUT).

Plagiochila sp. 2

DG: BO (Uchumarca). 3950 m. ER: R. IV.
Bussmnnn et ni 17571 (MO).

260 I ARNALDOA 2%^Íero-Junio,;

Rodrígu

/.: Catálogo de las briorita

i reglón La Libertad, Perú

POLYTRICHACEAE
Pogonatmn alpinifonne (Cardot) E. B.
Bar Ira m

DG: GC. No se descarta su presencia
en la provincia Gran Chimú, por habitar
en localidades aledañas en la provincia
Contumazá (La Herilla, Guzmango,
Cajamarca, 2850 m)(Colección: A. Sngástegui
A. et al. 641 U-HUT).

Pogonatmn pericímetiale subsp.
oligodus (Kunze ex Müll. Hal.) Hyvónen
DG: BO, OT. 3400-3600 m. ER: V.
Quipuscon S. 2592 (MO).

Polytrichadelphus peruvianas Broth.
DG: PT. 3250 m. ER: A. López M. & A.
Sngástegui A. 3494* (HUT).
Polytrichadelphus sp. 1
DG: BO (Uchumarca). 3950-4150 m. ER:
R. IV. Bussmnnn et ni 18117 (MO).
Polytriclmdelphus sp. 2
DG: PT (Ongón). 3597 m. ER: E.
Rodríguez R., E. Alvítez I. & L. Pollnck V. 3848
(HUT).

Polytrichum juniperinum Hedw.

DG: OT, PT, SC, ST. 1300-4300 m. ER: A.

Sngástegui A., J. Mostacero L. & M. Diestra Q.
H858(HUT);A. Sngástegui A. 16397 ( HAO+,
MO); A. López M. & A. Sngástegui A. 2668*
(HUT), 2743% HUT), 8263 (HUT, MO).
musgo .

PORELLACEAE

Porella swartziatm (F. Weber) Trevis.
DG: OT. 2050-4150 m. ER: P. D. Hegewnld
& E. H. Hegewnld 5247 (EPH, MO).

Porella sp. 1.

DG: BO (Uchumarca). 3550 m. ER: N.
Pnningun Z. etnl. 8871 (MO).

Porella sp. 2.

DG: OT. 2700 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H Hegewnld 7235 (EPH, MO).

POTTIACEAE

Aloina catillum (Müll. Hal.) Broth.

DG: SC. 3000 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H. Hegewnld 6801 (EPH, MO).

Andimi elata (R.S. Williams) J.A.
Jiménez & M.J. Cano

DG: OT. 2350-3400 m. ER: P. D. Hegewnld
& E. H. Hegewnld 5056 (EPH, MO).

Andina pruinosa (Mitt.) J. A. Jiménez &
M. J. Cano

DG: BO, OT, PT, SC. 2350-4150 m. ER:

A. López M. & A. Sngástegui A. 8150* (HUT,
MO), P. D. Hegewnld & E. H Hegewnld 5061
(EPH, HUT, MO).

En el herbario HUT, la última
colección se encuentra determinada como
BryoerytJirophylluni colunibinnum var.
ntncnmense R. H. Zander & M. A. Lewis
(=Bryoerythropliy1hun fuscinervium (Mitt.) R.
H. Zander).

Anoectangium aestivum (Hedw.) Mitt.
DG: OT. 2690-3100 m. ER: P. D. Hegewnld
& E. H Hegewnld 5200 (EPH, HUT, MO),
plf (EPH, HUT, MO).

Barbilla spl.

DG: OT (Samne). 1300 m. ER: P. D.
Hegewnld & E. H Hegewnld 6520 (EPH, MO).
Barbilla sp2.

DG: SC (cerca laguna Sausacocha). 3150
m. ER: P.D. Hegewnld & E. H. Hegewnld 6033
(EPH, MO).

Bryoerythrophyllum bolivianum (Müll.
Hal.) R. H. Zander

DG: OT. 2350-3400 m. ER: P. D. Hegewnld

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 261

Rodrígu

uez etal.\ Catálogo de las brlofltas de la reglón La Libertad, Perú

& E. H. Hegewnld 5171 (EPH, HUT, MO).

Bryoerythrophyllum jamesonii (Taylor)
H.A. Crum

DG: OT. 3100 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H. Hegewnld 5303, 5315 (EPH, MO).
Crossidium sp.

DG: TR. 750 m. ER: Aynln F. 7133 *(HUI).
musgo .

Didymodon acutiis (Brid.) K. Saito
DG: OT. 2900-3050 m. ER: P. D. Hegewnld
& E. H Hegewnld 5090, 5154 (EPH, MO).

Didymodon australasiae (Hook. &
Grev.) R. H. Zander

= Tortuln nustrnlnsine Hook. & Grev.

= Trichostowopsis nustrnlnsine (Hook. &
Grev.) H. Rob.

DG: OT, TR. 500-3000 m. ER: P. D.

Hegewnld & E. H Hegewnld 5024 (EPH, HUT,
MO).

Didymodon laevigatus (Mitt.) R. H.
Zander

DG: OT, SC. 3000-3100 m. ER: P. D.

Hegewnld & E. H Hegewnld 5292, 5296, 6071
(EPH, MO).

Didymodon tophaceus (Brid.) Lisa
DG: OT. 2700 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H Hegewnld 7250 (EPH, MO).

Didymodon umbrosus (Müll. Hal.) R. H.
Zander

DG: OT. 2050-2700 m. ER: P. D. Hegewnld
& E. H Hegewnld 5245, 7249 (EPH, MO).

Dolotortula mniifolia (Sull.) R.H.
Zander

DG: OT. 2050 m. ER: P. D. Hegewnld &
E. H Hegewnld 5265 (EPH, MO).

Erythrophyllastrum andinum (Sull.) R.
H. Zander

DG: OT. 2900-3050 m. ER: P. D. Hegewnld
& E. H Hegewnld 5095, 7187 (EPH, MO).

Leptodontiella apiculata (R.H. Zander)
R. H. Zander & E. H.

DG: TR. 500-700 m. ER: A. Sngnstegui A.
9221 (HUT, MO).

Leptodontium apiculatum R. H. Zander
DG: OT, TR, VI. 500-2050 m. ER: F. Aynln
F. 7036*, 7062*, 7102*, 7187* (HUT); P. D.
Hegewnld & E. H Hegewnld 5204 (EPH, MO).

Leptodontium brachyphyllum Broth. &
Thér.

DG: GC, OT, ST, TR. 500-3400 m. ER: E.
Rodríguez R. & A. Angeludis C. 2381 (HUT,
MO); E. Rodríguez R. & S. Arroyo A. 3133
(HUT, MO, USM).

Leptodontium capituligemm Müll. Hal.
DG: OT, SC, ST. 3250-3542 m. ER: A.
Eópez M. 4583*(H\JT)} A. Sngnstegui A.
11109( HUT); S. Arroyo A., E. Rodríguez R. &
M. Mora C. 302 ||p| MO).

Zander (1972) citado por Hegewald
& Hegewald (1975) indica la presencia de
E. brtuliyphylluni y E. cnpituUgerum en La
Libertad.

Leptodontium longicaule Mitt.

DG: BO. 3040-4150 m. ER: R. IV.

Bussninnn, N. Pnningm Z., C. Vega O. & C.
Téllez 17920 (MO).

Leptodontium longicaule Mili. var.
longicaule

DG: OT, ST. 3400-3650 m. ER: A.
Sngnstegui11781 (HUT, MO); P. D.
Hegewnld & E. H. Hegewnld 5922 (EPH, MO),
5951 (EPH, HUT, MO).

262 I ARNALDOA 2%^Íero-Junio,;

Rodrígu

/.: Catálogo de las briorita

i reglón La Libertad, Perú

Leptodontimn luteum (Taylor) Mitt.
DG: OT. 3050-3100 m. ER: P. D. Hegewald
& E. H Hegewald 7190 (EPH, HUT, MO).
Leptodontimn pungens (Mitt.) Kindb.
DG: BO, OT, ST. 2690-4150 m. ER: A.
Sagástegni A. 16657 (HUT, MO).

Leptodontimn tricolor (R. S. Williams)
R. H. Zander

DG: OT. 3100 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H Hegewald 5287 (EPH, MO).

Leptodontimn wallisii (Müll. Hal.)
Kindb.

DG: BO. 3550 m. ER: N. Panlagua Z„ R.
IV. Bnssmann , C. Vega O. & C. Téllez 8866
(MO).

Leptodontimn sp.l

DG: SC. 3450 m. ER: S. Arroyo A., E.
Rodríguez R. & M. Mora C. 303 (HUT, MO).

Molendoa peruviana (Sull.) M. J. Cano
& J. A. Jiménez

DG: SC. 3000 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H Hegewald 6064 (EPH, MO).

Pseudocrossidimn replicarían (Taylor)
R. H. Zander

=Barbula replícala Taylor
DG: OT, TR. 500-3400 m. ER: A. López M.
4582* (HUT); F. Ayala F. 7039* 7040*, 7042*,
7047*, 7050* 7054* 7058* 7068* 7113*,
7184*, 7185*, 7068* (HUT); P.D. Hegewald &
E.H Hegewald 5035( EPH, HUT, MO).
Pseudocrossidimn sp.

DG: SC. 3000 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H. Hegewald 6059 (EPH, MO).

Rltexophyllum subnigrmn (Mitt.) Hilp.
DG: OT. 2350-3650 m. ER: P. D. Hegewald
& E. H Hegewald 7225 (EPH, HUT, MO).

Streptopogon clavipes Spruce ex Mitt.
DG: SC. 3000 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H Hegewald 6098 (EPH, MO).

Streptopogon erythrodontus (Taylor)
Wilson

DG: SC. 3000-3100 m. ER: P. D. Hegewald
& E. H Hegewald 7210 (EPH, HUT, MO).
Syntrichia andícola (Mont.) Ochyra
DG: BO, OT. 2700-4150 m. ER: R. IV.
Bussniann, N. Panlagua Z., C. Vega O. & C.
Téllez 18069 (MO); P. D. Hegewald & E. H
Hegewald 7224 (EPH, MO).

Syntrichia fragilis (Taylor) Ochyra
=Tortula fragilis Taylor
DG: OT, SC, TR. 400-3050 m. ER: F.
Ayala F. 7038*, 7053* 7055*, 7065*, 7112*
(HUT): P. D. Hegewald & E. H Hegewald 5078
(EPH, HUT, MO).

Syntrichia obtusissima (Müll. Hal.)
R.H. Zander

DG: OT, TR. 450-3400 m. ER: P. D.
Hegewald & E. H Hegewald 7452 (EPH,

MO), 7455 (EPH, HUT, MO).

Syntrichia sp.

DG: OT. 2600 m. ER: E. Rodríguez R. & A.
Angeludis C. 2379 (HUT, MO).

Tortella sp.

DG: OT. 2050 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H. Hegewald5270 (EPH, MO).

Tortilla denticulata (Wilson) Mitt.

DG: GC. No se descarta su presencia
en la región La Libertad (provincia aledaña
Gran Chimú) debido a que ha sido colectada
en la provincia colindante de Contumaza,
región Cajamarca (Guzmango, 2700 m.
Colección: A. Sagástegui et al. 6408*-HUT).

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 263

Rodrígu

uez etal.\ Catálogo de las brlofltas de la reglón La Libertad, Perú

Tortilla muralis Hedw.

DG: TR. 490-500 m. ER: F. Ayala F.
7071% HUI), 7091% HUI), 7123*(HUT).
Trichostomopsis sp.

DG: TR. 550-750 m. ER: F. Ayala F. 7095*,
7108*, 7067*. 7131*, 7097* (HUT).

Trichostomum brachydontimn Bruch
DG: OT, TR. 500-2700 m. ER: P. D.
Hegewald & E. H. Hegewald 5009, 5015, 5048,
6509, 7246, 7259 (EPH, MO).

Weissia jamesonii Taylor
DG: OT. 2000 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H. Hegewald 5046 (EPH, MO).

Pottiaceae Indet.

DG: ST. 2800 m. ER: A. Sagástegui A.
11782 (HUT, MO).

PTYCHOMITRIACEAE
Ptychomitrium chimborazense (Spruce
ex Mitt.) A. Jaeger

DG: OT. 2690 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H. Hegewald 5133 (EPH, HUT, MO).
RHACOCARPACEAE
Rhacocarpus purpurascens (Brid.) París
DG: PT. 3950 m. ER: K. Yoiing 3118 (MO)
León et al. (2010) también precisan
que esta especie americana de amplia
distribución se habita en la región La
Libertad.

RICCIACEAE
Ricciafmchartii Steph.

DG: OT. 2050-2690 m. ER: P. D. Hegewald
& E. H. Hegewald 5147, 5264 (EPH, MO).
Riccia hegewaldiana Jovet-Ast
DG: OT. 2000 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H. Hegewald 5050 (EPH, MO).

Riccia lindmanii Steph.

DG: OT. 2050 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H. Hegewald 5230 (EPH, MO).

Riccia cf. membranácea Gottsche &
Lindenb.

DG: OT. 2690 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H. Hegewald 5148 (EPH, MO).

Riccia sorocarpa Bisch.

DG: OT, TR. 500-3400 m. ER: P. D.

Hegewald & E. H. Hegewald 5109, 7258 (EPH,
MO).

Riccia violácea M. Howe
DG: OT. 2000 m. ER: P. D. Hegewald & E.
H. Hegewald 5031 (EPH, MO).
SCORPIDIACEAE

Scorpidinm scorpioides (Hedw.) Limpr.
León et al. (2010) indican que esta especie
cosmopolita se encuentra en la región La
Libertad.

SPHAGNACEAE

Spliagnum cuspidatum Ehrh. ex Hoffm.
DG: OT, SC. 3000-4062 m. ER: E.

Rodríguez R., E. Alvítez I., E. Pollack V., E.
Huanián R., V. Rimarachín C. & R. Vásquez C.
3699(HUT); P. D. Hegewald & E. H. Hegewald
6040 (EPH, HUT, MO).

Spliagnum sancto-josephense H. A.
Crum & Crosby

DG: SC. 3250 m. ER: A. Eópez M. & A.
Sagástegui A. 8'/37(HUT, MO).

Spliagnum subbalticum Warnsl.

DG: BO, SC. 3000-3500 m. ER: A. Eópez
M. &A. Sagástegui A. 3199% HUT, USM), H.
Aguado E. 6751* (HUT).

Spliagnum sp. 1

DG: PT. 3000 m. ER: A. Sagástegui A.

264 I ARNALDOA 2%^Íero-Junio,;

Rodrígu

/.: Catálogo de las briorita

i reglón La Libertad, Perú

16357 (MO).

Sphagnum sp. 2

DG: ST. 3960 m. ER: D. N. Smith C-176
(MO).

Tovar (1989) registró a S. cuspidntum y S.
subbnlticum para La Libertad.
SPLACHNACEAE

Splachnobryum obtusmn (Brid.) Müll.
Hal.

DG: TR. 60 m. ER: A. Sngnstegui A. 6985
(HUT).

STEREOPHYLLACEAE
Juratzkaea seminervis (Kunze ex
Schwágr.) Lorentz

DG: OT. 2690 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H. Hegewnld 5150 (EPH, MO).

Sciuroleskea mittenii (Spruce ex Mitt.)
M. Fleisch. ex Broth.

DG: OT. 2050 m. ER: P. D. Hegewnld &

E. H. Hegewnld 5210, 5228, 6513 (EPH, MO).

Stereophyllmn denticnlatmn Bartram
DG: OT. 2250 m. ER: A. Eópez M. 1073
(Isótipo: HUT).

Especie citada por López (1993) para
La Libertad, y por López et ni (2003) como
un Isótipo del herbario HUT-40203. No
se descarta su presencia en la provincia
Gran Chimú (GC) por existir colecciones
en localidades aledañas de la provincia
Contumaza (Guzmango, 2500 m) (Colección:
A. Sngnstegui A. etnl. 6366*-HUT).
TARGIONIACEAE
Targionia hypophylla L.

DG: TR, OT. 1050-2690 m. ER: F. Aynln

F. 7228* (HUT), P. D. Hegewnld & E. H
Hegewnld 5026 , 5167 (EPH, MO).

THUIDIACEAE

Leptopterigynandmm tenuicanle (R. S.
Williams) S. He

DG: OT. 3650 m. ER: P. D. Hegewnld & E.
H Hegewnld 5946 (EPH, HUT, MO).
Thuidium pemvianum Mitt.

DG: OT, PT, SC. 3000-4000 m. ER: A.
Sngnstegui A. & M. Znpntn C. 17041 (HAO+,
MO).

León et ni. (2010) precisan que esta
especie americana se distribuye en la región
La Libertad.

Thuidium sp.

DG: SC. 3542 m. ER: S. Arroyo A., E.
Rodríguez R. & M. Morn C. 300 (HUT, MO).
TRICHOCOLEACEAE
Trichocolea tomentosa (Sw.) Gottsche
DG: BO. 3140 m. ER: N. Pnningim Z„ R.
IV. Bussmnnn & C. Vegn O. 8692 (MO).

Agradecimientos

A los directores, curadores y autoridades
de los herbarios HUT y MO por hacer
posible la revisión de sus colecciones y
bases de datos botánicos. Nuestra gratitud
a todos los colectores y en especial a P. D.
Hegewald & E. H. Hegewald (EPH) por sus
magníficas colecciones, determinaciones
taxonómicas y producción científica; las
cuales son consideradas como referencia y
un gran legado que siempre enaltecerá el
conocimiento de las briofitas de la región La
Libertad y del Perú.

Literatura citada

Ayala, F. 1970. Lista de Briofitas de las Lomas de Tru-
jillo. Boletín de la Sociedad Botánica de La Libertad
2(1-2): 45-62.

Carrillo, E. & M. Chanco. 1971. Algunas briofitas de
Lima y alrededores. Raymondiana 4: 99-118.

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 265

Rodrígu

uez etal.\ Catálogo de las brlofltas de la reglón La Libertad, Perú

Churchill, S.R 2009. Moss diversity and endemism
of the tropical andes. Annals of the Missouri Bo-
tanical Garden 96(3):434-449. doi: http://dx.doi.
org/10.3417/2008043

Churchill, S.R; D. Griffin III & J. Muñoz. 2000. A Chec-
klist of the Mosses of the Tropical Andean Coun-
tries. Ruizia 17:1-203.

Hegewald, RH. & E. Hegewald. 1975. Verzeichnis der
laubmoose von Perú nach literaturangaben. Journ.
Hattori Bot. Lab. 39: 39-66.

Herrera, F. 1941. Sinopsis de la flora del Cusco. Tomo
I. Parte Sistemática. Publicado bajo los auspicios
del Supremo Gobierno. Urna 4 de julio de 1941.
pp. 65-93.

IPNI. 2015. The International Plant Ñames Index. Dispo¬
nible en: http://www.ipni.org/. Acceso: 20 de julio
del 2015.

Soukup, J. 1955. Catálogo de la flora del Departamento
de Puno. Biota 1: 70-91.

The Plant List. 2015. The Plant List. A working list of
all plant species. Versión 1.1. 2015. Disponible en:
http://www.theplantlist.org. Acceso: 22 de junio del
2015.

Thiers, B. 2015. Index Herbariorum: A global directory
of public herbaria and associated staff. New York
Botanical Garden’s Virtual Herbarium. Disponible
en: http://sweetgum.nybg.org/ih/. Acceso: 1 de
mayo del 2015.

Tovar, D. 1989. Las Especies Peruanas del Género
Sphagnum. Biota 95(14): 12-32.

Trópicos. 2015. Tropicos.org. Missouri Botanical Gar¬
den. Index of Mosses Database (W3MOST). Dis¬
ponible en: http://www.tropicos.org. Acceso: 18 de
julio del 2015.

León, B.; K. Young; J. Roque & A. Cano. 2010. Nue¬
vos registros de plantas de la zona alta del Parque
Nacional Rio Abiseo, Perú. Arnaldoa 17(1): 51-83.
López, A. 1993. Catálogo de la flora del departamento
de La Libertad (Primera Parte). Arnaldoa 1 (3): 15-

López, A.; E. Rodríguez & V. Medina. 2003. Catálogo
de los Tipos e Isotipos del Herbarium Truxillense
(HUT). Parte II. Arnaldoa 10(2): 39-92.

Opisso, J. 2001. Contribución al Conocimiento de los
Musgos Pleurocárpicos de la Provincia de San
Ignacio, Cajamarca. Tesis para optar el Título Pro¬
fesional de Biólogo, Lima. Universidad Nacional
Mayor de San Marcos.

Valcárcel, L. 1961. Musgos frecuentes en las Lomas
Costaneras. Revista de Ciencias de la Universidad
Nacional Mayor de San Marcos 3-4: 55-72.

Young, K. & B. León. 1990. Catálogo de las plantas
de la zona alta del Parque Nacional del Rio Abiseo,
Perú. Publ. Mus. Hist. Nat. UNMSM, serie B Botá¬
nica 34:1-37.

Weberbauer, A. 1945. El mundo vegetal de los Andes
peruanos. Nueva Edición. Estación Experimental
Agrícola de La Molina. Dirección de Agricultura.
Ministerio de Agricultura.

Opisso, J. 2003. Briófitos de Pomahuaca. Cajamarca.
Perú. Arnaldoa 10(2): 7—14.

Opisso, J. & S. R Churchill. 2008. Bryophytes from
the environs of Yanachaga-Chemillén National Park,
Department of Pasco, Perú. The Bryologist 111 (2):
310-317.

Rodríguez, E. & R. Rojas. 2006. El Herbario: Adminis¬
tración y Manejo de Colecciones Botánicas. 2da.
Edición. Editado por R. Vásquez M., Missouri Bota¬
nical Garden, Perú.

Sagástegui, A.; J. Mostacero & S. López. 1988. F¡-
toecología del Cerro Campana (Provincia de Truji-
llo). Boletín de la Sociedad Botánica de La Libertad.
14(1-2): 1-47.

Soukup, J. 1951. Algunas diatomeas del Perú Central
y lista de los musgos peruanos. Bol. Soc. Peruan.
Bot. 3: 67-78.

266 I ARNALDOA 2%^/Íero - Junio, 2017

Arnaldoa 24 (1): 267 - 288, 2017
http://doi.org/10.22497/arnaldoa.241.241]

ISSN: 1815-8242 (edición impresa)
ISSN: 2413-3299 (edición Online)

Flora y vegetación de la Reserva Nacional
de Calipuy, La Libertad

Flora and vegetation of Calipuy National
Reserve, La Libertad

por el Es

ARNALDOA 24(1 i;

ArnaldoA 24(i)|:

270 I ARNALDOA 2

3 y Poáceas con 35, 21

dato inédito en la quebrada El
hay evidencias de que el "oso de ai

ARNALDOA 24 (1)y

iL Flora y vegetación de la Rese

I de Callpuy, La Libertad

arequipensis. Los cactus grandes
generalmente crecen sobre las superficies
pedregosas, también se encuentra otras de
menor tamaño como Espostoa melnnostele y
Opuntia sp. En esta comunidad también son
característicos algunos arbustos caducifolios
y ralos asociados a Trixis cacalioides, Scutin
spicata, Croton alnifoUus, Jatropha iiiacrantha,
Paracalia jungioides y Carien enndienns ; las
hierbas aparecen solo cuando hay lluvias,
permanecen vivas por un tiempo corto
como Anthephora hermafrodita, Aristida
ndscencionis, Cenchrus mijos tiroides, Chloris
halophila, Chloris virgntn, Cottea pappoporoides,
Nnssella brachyphylla y Nassella pubiflora.

En esta Unidad Vegetal registramos 133
especies agrupadas en 36 familias, siendo
Asteráceas y Solanáceas las más diversas
con 12 y 11 especies respectivamente.

Vegetación Ribereña.- Típica de las
riberas fluviales en los ríos con estiaje
permanente o estacional, caracterizado
por una flora particular debido a factores
ecológicos más favorables. Aquella
vegetación ribereña estacional localizada en
casi todas las quebradas de la Reserva, está
presente solo cuando la cantidad de agua es
suficiente para mantener una comunidad de
hierbas siempre verde, conforme se agota
el recurso hídrico quedan sólo arbustos de
Eticelin canescens, Lyciam boerhaviifolium,
Scutin spicntn, Trixis cacalioides, Galvezin
fruticosa, y Cryptocarpus py rifaríais y arbolitos

de Acacia mncmcnnthn, Scliinus molle, Prosopis
pallida, Capparis avicenifalia, Cappa ris cordata
y Capparis scabrida siempre verdes durante
todo el año, que contrasta con la aridez
del paisaje circundante. Por otro lado, la
vegetación ribereña permanente es aun
más escasa como la encontrada en la parte
intermedia de la Quebrada El Silencio, por
la presencia del manantial que sustenta un
bosquecillo denso de hasta dos metros de
altura conformada por Tessaria integrifolia,
Baccharis lanceolata, Baccharis sp., Gynerium
sagittatum y Typlui angustifalia y a la
sombra varias hierbas como Adíantum sp.,
Pityrogramma trifaliata y Cyperáceas.

En esta Unidad Vegetal registramos 82
especies catalogadas en 27 familias las más
diversas son Asteráceas y Poáceas y Fabaceae
con 20,11 y 9 especies respectivamente.

Composición Florística

En los predios de la RNC se logró
registrar una apreciable cantidad de
plantas vasculares 470 (sin considerar
musgos, liqúenes, hongos y algas), en 82
familias (Anexo 1) incluyendo el área de
amortiguamiento. Los grupos taxonómicos
de mayor jerarquía son las Magnoliopsida
(Tabla 1).

A nivel de familia se tiene Asteráceas
(93 spp.), Poáceas (40 spp.), Solánaceas
(26 spp.), Fabáceas (24 spp.). Cactáceas (16
spp.), Malváceas (14 spp.), Lamiáceas (13

Tabla í. Grupos taxonómicos con mayor número de géneros y especies.

ó Familias Géneros % Géneros Especies

Gimnosperma 1

Pteridophyta 8

Liliopsida 12

Magnoliopsida 61

82

13

235

298

272 I ARNALDOA 2%|i ; liero-Junio,;

5 Calipuy, La Libertad

spp.), Boragináceas (12 spp.), Euphorbiáceas
(12 spp.) y Apiaceae (10 spp.) todas ellas
poseen la mayor riqueza y en su conjunto
constituye más del 57% de la flora (Tabla 2),
30 familias están representadas por una sola
especie. Hay pocos estudios de las vertientes
occidentales del norte del Perú que abarca la
magnitud del rango altitudinal encontrada
en la reserva, para realizar comparaciones
adecuadas, pero es evidente que en la parte
superior asteráceas y poáceas son las más

diversas, hacia la parte baja e intermedia
aparecen otras familias más diversas como
Solanáceas, Fabáceas y Boragináceas.
Algunas familias como Capparidaceae,
Nyctaginaceae, Cactaceae, Rhamnaceae son
notorias en las partes bajas e intermedias de
la Reserva.

Algunas especies típicas de lugares
semidesérticas adaptadas a la poca
disponibilidad de agua son; Baccharis
spnrten, Helogyne ferreyrae, Ophryosporus

Familias

N° Especies

N° Géneros

Asteraceae

93

56

Poaceae

40

29

Solanaceae

26

11

Fabaceae

24

16

Cactaceae

16

13

Malvaceae

14

6

Lamiaceae

13

6

Boraginaceae

13

5

Euphorbiaceae

12

8

Apiaceae

10

8

Caryophyllaceae

10

6

Verbenaceae

10

5

Scrophulariaceae

9

5

Pteridaceae

8

5

Convolvulaceae

8

6

gnlioides, Allionia incnrnntn, Boerliavia
cari buen, Cryptantlm pyriformis y Lyáanthes
boerhnviifolium.

A nivel de género Solnnum 11, Calceolaria
9, Baccliaris 6, Heliotropiuiii 6, Salvia 6 y
Loniantlms 5 son las más diversas, el último
recientemente transferido de Senecio ;
además de estos géneros otros 5 tienen
cuatro especies. Probablemente las especies

más abundantes son las gramíneas; Aristida
adscencionis, Cenchrus myosuroides, Chloris
halophila, Chloris virgata, Chondrosum simplex,
Cottea pappoporoides, Nassella brachyphylla ,
Nassella pubiflora y Tragas berteronianus.

Registros interesantes

A parte de dar ha conocer el primer
listado de especies para una Unidad de
Conservación, algunos registros sonnotables;

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 273

iL Flora y vegetación de la Rese

I de Callpuy, I

Dichondrn argenten es citado por primera vez
para la flora peruana; Helogyne ferreyme,
Helogyne virgata, Lomanthus ya uyen sis,
Lopliopappus tarapacanus, Loniantlius tovarii,
Pectocarya anómala, Merremia grandiflora,
Pygniaeocereus bieblii, Ophryosporus

pubescens, Salvia perlncida, Tarassa cerratei,
Passiflora peduncularis, Syncretocarpus
ancashino. Senecio canipanelliferus y Senecio
emmae son observados por vez primera para
La Libertad y la última especie colectada
por segunda vez después del tipo.

Una gran proporción de especies 352 son
de origen americano (distribuidas en más
de dos paises) y 57 europeas introducidas,
y lo relevante es el registro de 61 endémicas
del Perú que representa un 12,9% de la flora
de RNC.

Lo indicado no debería ser sorprendente,
debido a que representa el primer estudio
analítico y cualitativo de la flora y además
le confiere un valor adicional a esta área de
protección.

Situación Actual de la flora y vegetación
de la Reserva.

La gran extensión de la Reserva y su
inaccesibilidad podría ser un factor benéfico
con fines de protección, solamente hacia
el noroeste hay prácticas de agricultura
aunque esta actividad estuvo desde
antes del establecimiento de la Reserva;
en la quebrada Quitasueño la presencia
de mineros informales representa una
amenaza.

Agradecimientos

Agradecemos al Blgo. Fredy A. Abanto
Terrones, jefe de la Reserva Nacional de
Calipuy, y su personal que facilitaron el
trabajo en la RNC. A la Blga. Marybel
Morales por el trabajo de campo e
identificación de especies.

El presente trabajo fué financiado por
CONDESAN-GIZ (Deutsche Gesellschaft
für Internationale Zusammenarbeit) y
SERNANP. Resolución Jefatural del Parque
Nacional de Calipuy 003 -2011-SERNANP-
RNC.

274 I ARNALDOA 2%^Íero-Junio,;

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 275

276 I ARNALDOA 2

5 Calipuy, La Libertad

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 277

Beltrán etal.\ Flora y vegetación de la Reserva Nacional de Callpuy, La Libertad

278 I ARNALDOA

5 Calipuy, La Libertad

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 279

Beltrán etal.\ Flora y vegetación de la Reserva Nacional de Callpuy, La Libertad

280 I ARNALDOA

5 Calipuy, La Libertad

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 281

282 I ARNALDOA

5 Calipuy, La Libertad

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 283

Beltrán etal.\ Flora y vegetación de la Reserva Nacional de Callpuy, La Libertad

284 I ARNALDOA

5 Calipuy, La Libertad

Literatura citada.

Brako, L. & J. Zaruchii. 1993. Catálogo de las angios-
permas y gimnospermas del Perú. Monographs in
Systematic Botany Missouri Botanical Garden. No
45:1-1123.

Braun-Blanquet. 1979. Fitosociolgia, bases para el
estudio de las comunidades vegetales. H. Blume
Ediciones, Madrid.

Cerrate, E. 1969. Manera de preparar plantas para un
herbario. Museo de Historia Natural. Serie de divul¬
gación No 1.

Cronquist, A. 1981. An integrated system of classifica-
tion of flowering plants. Columbia University Press,
New York.

Decreto Supremo 043-2006-AG. Aprueban categori-
zación de especies amenazadas de flora silvestre.
www.inrena.gob.pe

Gentry, A. 1993. A Field Guide to the Families and Gen¬
era of Woody Plants of North West South America:
(Colombia, Ecuador, Perú). With Supplementary
Notes.

Tovar, 0. & L. Oscanoa. 2002. Guía para la identifica¬
ción de pastos naturales alto andinos de mayor im¬
portancia ganadera. Huaraz, Instituto de Montaña.
1-184 pp.

Tovar, 0. 1973. Comunidades vegetales de la Reserva
Nacional de Vicuñas Pampas Galeras, Ayacucho.
Perú. Publ. Mus. Hist. Natur. Javier Prado. Ser. B.
Bot. N a 27:1-32.

Vegas, C. 2002. Estudio florístico realizado en el San¬
tuario Nacional de Calipuy y en la Reserva Nacional
de Calipuy. No publicado. INRENA.

Ulloa, C., J. L. Zarucchi & B. León. 2004. Diez años de
adiciones a la flora del Perú: 1993-2003. Arnaldoa.
Edición Especial.

IUCN. 2002 IUCN Red List of Threatened Species.
http://www.redlist.org

Instituto Nacional de Recursos Naturales (INRENA).

1994. Mapa ecológico del Perú. Guía Explicativa.
INRENA. Urna-Perú.

León, et al, 2006. El Libro Rojo de las Plantas endé¬
micas del Perú. Rev. Perú. Biol. Núm. Esp. 13(2):
64-164.

Linares, L. & G. Mendoza, V. Linares, H. Herrera.

2010. Distribución y organización social del gua¬
naco (Lama guanicoe cacsilensis) en la reserva
nacional de Calipuy, Perú. Scientia Agropecuaria 1:
27-35.

Lot, E. & F. Chiang. 1986. Manual de Herbario. Consejo
Nacional de la flora de México, 42 pp.

López, A. 1995. Catálogo de la flora del departamento
de La Libertad (Primera parte). Arnaldoa, 1:15-44.

López, A.1995. Catálogo de la flora del departamento
de La Libertad (segunda parte). Arnaldoa, 1 : 59- 91

Herrera, E. & V. Pulido. 1980. Informe para el estable¬
cimiento de una unidad de conservación en Calipuy.

Sklenár, P.; Luteyn, J. L.; Ulloa, C.; Jorgensen, P. M.; &
Dillon, M. 0. 2005. Flora Genérica de los Páramos.
Guía Ilustrada de las Plantas Vasculares. Memoirs
ofthe New York Botanical Garden, Volume 92. USA.

Tovar, 0. 1993. Las Gramíneas (Poaceae) del Perú. Rui-
zia. Tomo 13. Madrid. España.

ArnaldoA ^ En

o, 2017 1 285

286 I ARNALDOA 24|í|„|iero-Junio,;

5 Calipuy, La Libertad

Fig. 2. A y B. Paisaje de Reserva en la parte alta en diferentes estaciones; C. Dichondra
argenten; D. Ribes sp.; E. Calceolaria weberbaueriana ; F. lochroma salpoanum.

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 287

iL Flora y vegetación de la Rese

I de Callpuy, I

Fig. 3. A y B. Paisaje de Reserva en la parte baja dominada por cactáceas; C. Deuterocohnia
longipetala ; D. Cardiospemun corinduiir, E. Presliophyhmi heucheraefoUum ; F. Cnjptocarpus
pxjriformis.

288 I ARNALDOA

Arnaldoa 24 (1): 289 - 300, 2017
http://doi.org/10.22497/arnaldoa.241.241]

ISSN: 1815-8242 (edición impresa)
ISSN: 2413-3299 (edición Online)

Extracción de azúcares reductores totales ART
por métodos físicos y químicos de planta de Zea
mays (Poaceae) “maíz amarillo duro”

Extraction of total reducing sugars TRS by physical
and Chemical methods from plant of Zea mays
(Poaceae) “hard yellow maize”

Karen Chauca Espinoza, César A. Grosso Gamboa, José Cabrera Matara, Carlos
León Torres, Julio Arellano Barragán, Carlos Norberto Rodríguez & Orlando
Pretel Sevillano

Facultad de Ciencias Biológicas. Universidad Nacional de Trujillo, Trujillo, Perú, karen13688@gmail.com;
agrossogamboa@gmail.com

ARNALDOA 24 (1): Enero - Junio, 2017 I 289
cia CC BY-NC 4.0: https://crcativccommons.Org/liccnscs/by-nc/4.0/

La lignina y la celulosa no siempre pueden emplearse en su forma natural, por ello deben
hidrolizarse, y esto puede llevarse a cabo con enzimas, con ácidos o con bases; las dos ultimas
presentan la ventaja de mejorar la hidrólisis de la celulosa. La alternativa de emplear residuos
lignocelulósicos en la producción de bioetanol y de proteína unicelular constituye hoy día una
posibilidad altamente prometedora por su amplia disponibilidad en el mundo. En el presente trabajo
se evaluaron los diferentes métodos de hidrólisis del residuo lignocelulósico de la planta de Zea
mays (Poaceae) "maíz amarillo duro" con la finalidad de determinar el método más adecuado para
la máxima obtención de azúcares reductores totales ART y poder así utilizarlos como sustrato en
procesos fermentativos para la producción de proteínas unicelulares v bioetanol. La materia prima
empleada fue planta seca y fraccionada de un tamaño de partícula <1,0 mm y se evaluó mediante
métodos de hidrólisis químicos, físicos y la combinación de ambos, utilizando como soluciones
extractantes agua destilada estéril, ácido sulfúrico e hidróxido de sodio al 1,25 %. La relación planta-
solvente utilizada en todos los tratamientos fue de 1:10. La determinación de los azúcares reductores
totales se realizó en los filtrados obtenidos de cada uno de los tratamientos empleando el método
de Folin-Wu. Los resultados indican que la máxima concentración de azúcares reductores totales
obtenidos corresponde a 82,94 y 84,18 g/L, y se obtienen después de realizar la hidrólisis mixta
como resultado de la combinación del método físico y físico-químico.

Palabras clave: azúcares reductores totales, planta, hojas, tallo. Zea mays.

The lignin and the cellulose can not always be used in their natural form, they need to be
hydrolyzed, and it can be carried out by enzymes, with acids or with bases; the last ones have
the advantage of improving the hydrolysis of the cellulose. The alternative of using lignocellulosic
residues in the production of bioethanol and single-cell protein is today a highly promising
possibility due to its wide availability in the world. In the present work, different methods of
hydrolysis of the lignocellulosic residue of plant of Zea mays (Poaceae) "hard yellow maize" were
evaluated with the purpose of determining the most appropiate method for the extraction of total
reducing sugars TRS and then use them as substrate in fermentative processes for single-cell protein
and bioethanol production. We used dry and fractionated plant with particle size <1.0 mm and
we evaluated it through Chemical and physical hydrolysis methods and the combination of both
using as extractant Solutions sterile distilled water, sulfuric acid and sodium hydroxide 1.25 %. The
relation plant-solvent used in all treatments was 1:10. The determination of total reducing sugars
was carried out in the filtrates obtained with each treatment using the Folin-Wu method. The results
indícate that the máximum concentration of total reducing sugars obtained are 82.94 and 84.18 g/L,
after carrying out the mixed hydrolysis as a result of the combination of physical and physico-
chemical methods.

Keywords: total reducing sugars, plant, leaves, stem. Zea mays.

Introducción

La energía como una forma concreta de
existencia de la materia posee diferentes
manifestaciones, pero como elemento de
los factores de producción constituye un
componente fundamental para el desarrollo
de las fuerzas productivas, toda vez que es

la fuerza capaz de poner en movimiento,
mediante procesos físicos y químicos, el

que satisface las necesidad del progreso, el
trabajo y de la sociedad. Por otra parte, las
posibilidades de obtención de energía se
encuentra determinada por la viabilidad de
la transformación de un recurso o la síntesis

290 I ARNALDOA 2%fjbliero - Junio, 2017

ArnaldoA 24 (1)¿

ArnaldoA 24(1 i;

Chauca etal.\ Extracción de azúcares reductores totales por métodos físicos y químicos de Zea mays (Poaceae)

TABLA 1: Valores originales y sus estimadores aritméticos de los azúcares reductores
totales ART extraídos de la planta de Zea mays (Poaceae) "maíz amarillo duro" mediante
hidrólisis química, física y químico-física

TRATAMIENTOS

REPETICIONES

ESTIMADORES

Características

_

s 2

c.v.

Código

Solución

T\

H 2 S0 4

38.45

39.6

39.38

117.43

39.14

0.61

0.37

0.02

T 2

NaOI 1 |

2.1

1.03

1.61

4.74

1.58

T 3

h 2 o j

7.09

6.41

19.19

6.40

0.70

0.49

0.11

T 4

H 2 S0 4

81.84

83.46

248.82

82.94

0.95

0.91

0.01

t 5

fllplffll

3.03

2.87

¡lif ; •• j*l

y¡?t§, °ii

0.04

0.07

T 6

h 2 o 1

7.08

6.73

7.32

21.13

7.04

0.30

0.09

0.04

T 7

H 2 S0 4

84.70

82.83

85.02

252 55 ■ ■

84.18

1.18

1.40

0.01

t 8

2.76

3.64

1.72

8.12

2.71

0.96

0.92

;|at ;

T 9

H 2 0

11.36

11.64

10.8

33.80

11.27

0.43

0.18

0.04

T 10

H 2 S0 4

4.45

5.42

13.13

4.38

1.08

1.17

T u

NaOH

4.68

3.80

2.73

11.21

3.74

0.98

0.95

0.26

T 12

h 2 ° ¡

7.24

8.50

9.74

25.48

8.49

1.25

1.56

0.15

T 13

h 2 so 4

49.05

50.70

51.49

151.24

50.41

1.25

1.55

0.02

T 14

NaOH

3.23

3.64

4.03

10.90

3.63

0.40

0.16

0.11

t 15

hÜBB

7.16

7.85

1

¡ 0M ' ;{

7.82

0.42

SW-'

Leyenda: Lo valores en negrita muestran los valores más altos de ART promedio.

294 I ARNALDOA 2%fjt ; liero - Junio, 2017

i

«

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H

s

i

i

H

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5

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1

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H

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5

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i

H

0

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H

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5

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1

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1

I

1

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=

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H

H

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H 3

H S

H

H

h"

H 2

H

H

H=

H

ArnaldoA 24(i)|:

DIAGRAMA 1: Resultados del test de comparación de promedios (Método de Duncan).

296

ARNALDOA 24(1^

ArnaldoA 24(i)|:

3/.: Extracción

zúcares reductores totales por métodos físlc

las fibras, principalmente de las regiones
más débiles (celulosa amorfa). Esto puede
explicar los resultados los cuáles indican
que al realizar la hidrólisis "mixta" se
obtuvo mayor concentración de azúcares,
de concentraciones 84,18 g/L y 82,94g/L,
correspondiente al tratamiento N° 7 (T 7 ) y al
tratamiento N° 4 (T 4 ) respectivamente.

Estos resultados son muy aceptables al
ser comparados con los estudios realizados
por Urbaneja et ni. (1997) que reportan entre
5,2 y 8,6 g/L al hidrolizar la pulpa del "café",
a los señalados por Gonzáles et ni. (1986)
en la hidrólisis de la paja de "trigo" con
H 9 S0 4 al 2% con lo cual se obtuvieron 2,0
g/L de azúcares reductores en equivalentes
de glucosa y a los estudios realizados por
Bardales et ni. (2009) al realizar diferentes
métodos de hidrólisis de la "peladilla" de
"espárrago" lo cual se obtuvo 7 g/L de
azúcares reductores totales.

Conclusiones

La planta de Zen mnys (Poaceae) "maíz
amarillo duro" sometida a hidrólisis mixta
(métodos físico-químico) presenta buena
cantidad de ART lo cual puede utilizarse

procesos fermentativos para la producción
de bioetanol y biomasa microbiana.

Agradecimientos

A los maestros y personal técnico del
Departamento de Química Biológica y
Lisiología Animal de la Lacultad de Ciencias
Biológicas de la Universidad Nacional
de Trujillo por el apoyo brindado para la
ejecución de este trabajo.

Literatura citada

Ballesteros, I. 2000. Obtención de etanol a partir de
biomasa lignocelulósica mediante un proceso de
sacarificación y fermentación simultánea (SFS).
Tesis doctoral. Universidad de Alcalá de Henares.
España.

Bardales, C.; C. Torres; J. Mostacero; J. Arellano; C.
Rodríguez; 0. Pretel & M. Salazar. 2009. Extrac¬
ción de azúcares reductores totales ART de “peladi¬
lla” d eAsparagus officinalis “espárrago”. Arnaldoa
16 (1): 69-73.

Cardona, A. C.; T. 0. Sánchez; M. M. Rodríguez & Q.
J. Suárez. 2005. Producción de etanol carburan¬
te: material lignocelulósico una nueva alternativa.
Ingeniería de Recursos Naturales y del Ambiente,
núm. 3, 2005, pp. 47-55. Colombia.

DDS Technologies. USA, 2002. Disponible endds:
www.ddstechusa.com/spanish/corn.htm

Doelle, H. W.; D. A. Mitchell & C. Rolz. 1992. Solid
substrate cultivation. Elsevier Science publisher
Ltd. Great Britain.

Fabelo, J. 1998. Determinación de los costos de pro¬
ducción de la etapa de fermentación alcohólica con
utilización de diferentes sustratos. Rev. Centro Azú¬
car. 3,12-15.

González, G.; J. López Santón; G. Caminal & C. Sola.

1986. Dilute acid hidrolysis of wheat straw hemi-
cellulose at modérate temperatura: A simplified
kinetic model. Biotecnology and biongenering.
28:288-293.

Gray K. S, Zhao L. & M. Emptage. 2006. Bioethanol.
Curr.Opin. Chem. B¡ol. ; #ff|¡-146.

Islas J.; F. Manzini & 0. Masera. 2006. A prospec-
tive study of bioenergy use in México. Energy. 32:
2306-2320.

Larsson, S. 2000. Ethanol from lignocellulose-Fer-
mentation inhibitors, detoxification and genetic
engiuneering of saccharomyces cerevisege for
enhenced resistente. Tesis dostoral. Lund. Suecia.

Lázaro, L. & J. Arauzo. 1994. Aprovechamiento de
residuos de la industria de conservas vegetales.
Hidrólisis enzimática. Universidad de Zaragoza. Za¬
ragoza. España.

Lynd, L.; P. Weimer; W. van Zyl & I. Pretorius. 2002.
Microbial Cellulose Utilization: Fundamentáis and
Biotechnology. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 3: 506-

Mesa- Garriga, L.; M. Morales-Zamora; E. González-
Suárez & E. Castro. 2013. Estrategia de recon¬
versión de la industria diversificada de la caña de
azúcar para la producción conjunta de bioetanol y
coproductos. Revista Facultad de Ingeniería Uni¬
versidad de Antioquia, (66), 189-198. Retrieved
February 13, 2017.

298 I ARNALDOA 2%^/Íero - Junio, 2017

Oliva, D. J. 2003. Efecto de los productos de degrada¬
ción Originados en la explosión por vapor de Bio-
masa de chopo sobre Kluyveromyces marxianus.
Tesis Doctoral. 160 páginas. ISBN: 84-669-1709-

Portal Informativo de La Libertad. 2009. La Libertad
lidera producción de “espárragos”, “maíz” y “tri¬
go”. La Libertad-Perú.

Sun y Cheng, J. 2002. Hydrolysis of lignocellulosic ma-
terials for ethanol production: a review. Bioresurce
Technology. 83:1-11.

Urbaneja, G.; J. Ferrer; G. Páez; L. Arenas de Moreno;
G. Coloina & L. Sandoval. 1997. Hidrólisis ácida
y caracterización de carbohidratos de la pulpa de
café revista de la facultad de Agronomía (LUZ).
Universidad de Zulia. Maracaibo. Venezuela. 14:
265-275.

ARNALDOA 24(1): En

Chauca etal.\ Extracción de azúcares reductores totales por métodos físicos y químicos de Zea mays (Poaceae)

300 I ARNALDOA

Arnaldoa 24 (1): 301 - 310, 2017
http://doi.org/10.22497/arnaldoa.241.24113

ISSN: 1815-8242 (edición impresa)
ISSN: 2413-3299 (edición Online)

Selección de funciones de densidad de
probabilidad para plantaciones de Pinus
caribaea var. caribaea (Pinaceae) en Pinar del
Río (Cuba)

Selection of probability density functions for
plantations of Pinus caribaea var. caribaea (Pinaceae)
in Pinar del Rio (Cuba)

Bertha Rita Castillo Edua

Departamento de Ciencias Forestales, Universidad de Pinar del Río (UPR). Calle Martí # 270 final. Pinar del
Río, Cuba

Autor para correspondencia: e-mail daycrist@af.upr.edu.cu
Zhofre Aguirre Mendoza
Docente-lnvestigador de la Universidad Nacional de Loja, Ecuador

ARNALDOA 24 (1): Enero - Junio, 2017 I 301
cia CC BY-NC 4.0: https://crcativccommons.Org/liccnscs/by-nc/4.0/

Castillo & Aguirre: Selección de funciones de densidad de probabilidad para Pinus caribaea (Pinaceae) en Pinar del Rí| f¡lj|jál
Recibido: 3-1-2017; Aceptado: 22-111-2017; Publicado: VI-2017; Edición online: 01-VI-2017

Resumen

La investigación tuvo como objetivo ajustar una función de densidad de probabilidad (FDP)
en plantaciones de Pinus caribaea var. caribaea Morelet Barret y Golfari (Pinaceae) de la Empresa
Agroforestal Pinar del Río, Cuba. Los datos fueron tomados del Proyecto de Ordenación del Decenio
2006-2016 de la Unidad Silvícola San Juan y Martínez. Para seleccionar los rodales incluidos en el
estudio, se identificaron, según la Norma Ramal 595 y con la ayuda del SINFOMAP IV. aquellos
con densidades superiores a 0,7 con diferentes edades y calidades de sitio. En total, fueron incluidos
80 rodales pertenecientes a 41 lotes que tenían manejo recomendado. Se determinó la función de
densidad de probabilidad de mejor ajuste con el software EasyFIT y como criterio para determinar
el mejor ajuste se utilizó el estadístico de Anderson-Darling. La función de mejor desempeño resultó
ser la de Weibull (2P) por mostrar mejor comportamiento en la predicción del número de individuos
por clases diamétricas; las ecuaciones de los parámetros de escala y de forma se obtuvieron por
regresión lineal múltiple por pasos.

Palabras clave: función de densidad de probabilidad, raleos, redes neuronales artificiales, Pinus

The research had as objective to adjust a probability density function (PDF) in plantations of
Pinns caribaea var. caribaea Morelet Barret and Golfari (Pinaceae) from Pinar del Río Agroforestry
Company, Cuba. The data were taken from the Management Plan of the Decade 2006-2016 of
the San Juan y Martínez Silviculture Unit. To select the stands included in the study, according
to Branch Standard 595 and with the help of SINFOMAP IV, those with densities above 0.7 with

the EífsyFIT software and the Anderson-Darling statistic criterion was used to determine the bel
fit. The best performance function turned out to be that of Weibull (2P) because it showed a better
behavior in the prediction of the number of individuáis by diametric classes; the equations of the
scale and shape parameters were obtained by múltiple stepwise linear regression.

Keywords: probability density function, thinning, artificial neural

Introducción

La caracterización de las distribuciones
diamétricas proporciona información
sobre la estructura del rodal y ayuda en la
planeación de los tratamientos silvícolas en
masas forestales bajo manejo. Conocer el
número de árboles correspondiente a cada
clase diamétrica de un rodal es de gran
utilidad para el planeamiento y manejo
de plantaciones, ya que permite estimar la
variabilidad entre individuos, los posibles
productos a obtener y, por lo tanto, el valor
de la plantación. Las funciones de densidad
de probabilidad (fdp) son utilizadas en el
ámbito forestal para estimar la probabilidad
de ocurrencia de un número de individuos

y la probable distribución que presentará
según sus diámetros, describiendo en
términos matemáticos la estructura del rodal
(Vallejos et al., 2004). Varios investigadores
han realizado estudios en este tema entre
ellos se encuentran: Nanang (1998) empleó
la distribución Normal y Log-Normal,
Zhang et al. (2001); Maldonado & Návar
(2002); Gorgoso et al. (2007); Lei (2008),
utilizaron la distribución Weibull, Álvarez
& Ruiz (1997) emplearon la distribución
gamma, y la distribución SB de Jhonson fue
empleada por Kudus et al. (1999); Zhang et
al (2003) y Fidalgo et al (2009).

Pinus caribaea es una de las especies
forestales que ha despertado un especial

302 I ARNALDOA 2%fjbliero - Junio, 2017

Castillo & Agu

ARNALDOA 24(1)|:

Tabla 1. Función de Densidad de Probabilidades utilizadas para modelos de I

FDP

S B de
Johnson

ti _2 [y i SLn\ ^ £ ll

f(X) = -— e Á2 \ Y+ÓLn h+E-x\\ ni

JK J V27 t(X-sXA+s-X) LJ

e, A, 8, ey ^Parámetros del límite inferior (localización), amplitud
(escala), asimetría (forma) y cutrosas

Weibull (2P)

= 81

a = Parámetro de escala; /? = parámetro de forma; X = centro de
clase de diámetro

Burr (4P)

y

y y k parámetros de forma (y > 0 ); /? = parámetro de escala (/? >

304 I ARNALDOA 2^;

Castillo & Aguirre: Selección de funcio

? (Pinaceae) en Pinar del Río (Cuba)

Tabla 2. Bondad de ajuste de la Funciones analizadas y su ranking

Función
Weibull (2p)
Johnson SB
Burr (4p)

Anderson Darling Ra

0,32123 1

0,32429 2

0,32458 3

»»g

Una representación de esta función para la muestra analizada se obtiene en la fig. 1

Fig. 1. Ajuste de la función de Weibull de 2 parámetros para la especie en el área de estudio

Con el empleo de la correlación las variables dasométricas obteniéndose la
bivariada se correlaciona los parámetros matriz de correlación de Pearson (Tabla 3).
de escala y de forma de la función de con

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 305

Castillo & Aguirre: Selección de funciones de densidad de probabilidad para Pinus caribaea (Pinaceae) en Pinar del Río (Cuba)

En la tabla 4 se muestran los coeficientes
de regresión parcial de las variables
incluidas en el modelo de regresión, es decir
la información necesaria para construir
la ecuación de regresión en cada paso
(incluyendo el término constante así como
la significación estadística de los mismos)

rechazándose para el modelo 1 la constante
siendo significativo todos los coeficientes
para el modelo 2 con valores de tolerancia
mayores que 0,01 lo cual rechaza la hipótesis
nula para el supuesto de muticolinealidad
como etapa de validación de modelo
denotando la calidad del mismo.

Tabla 4. Coefici

Modelo

Coeficientes no
estandarizados

Coeficientes

estandarizados

Sig.

Estadísticas de
colinealidad

B

Error

estándar

Beta

Tolerancia

VIF

(Constante)

,362

,283

1,281

,211

Dmin

,324

,023

,938

14,341

,000

1,000

1,000

2

(Constante)

2,653

,272

9,749

,000

Dmin

,395

,013

1,144

30,189

,000

,688

1,454

Dmax

-,109

,011

-,368

-9,711

,000

,688

1,454

a. Variable dependiente: parámetro escala ( a )

Así resultan para la modelación del parámetro escala (a) como modelo de mejor ajuste el siguiente:
a = 2,653 + 0,395 D min - 0,109 Dmax [18]

En relación al ajuste del modelo del parámetro forma (/?) se determinó por el mismo procedimiento
que para el parámetro escala ( a) resultando la tabla 5.

306 I ARNALDOA

Castillo & Aguirre: Selección de funciones de densidad de probabilidad para Pinus caribaea (Pinaceae) en Pinar del Río (Cuba)
Tabla 5. Bondad de ajuste del modelo para el parámetro forma (P)

Modelo

R

R 2

R 2 ajustado

Error estándar de
la estimación

Durbin-Watson

1

,897 a

,804

,797

2,10066

2

,965 b

,930

,925

1,27460

3

,976 c

,953 VV

CVU948 f

1,06353

4

,980 d

,961

,955

r

'2,380' '■

a. Predictores: (Constante), Dmax

b. Predictores: (Constante), Dmax, Dmin

c. Predictores: (Constante), Dmax, Dmin, edad

d. Predictores: (Constante), Dmax, Dmin, edad, H V

Por su parte en la tabla 6 se muestran
los coeficientes de regresión parcial de
las 4 variables incluidas, para analizar la
significancia estadística de los mismos,
aceptándose para los 4 modelos la relación

existente entre las variables al presentar
sig.<0,05 lo que indica que el modelo
mejora significativamente la predicción del
parámetro forma.

Tabla 6. Coeficientes no estandarizados para el modelo de parámetro forma (P).

Modelo

Coeficientes no
estandarizados

Coeficientes

estandarizados

Sig.

Estadísticas de
colinealidad

B

Error

estándar

Beta

Tolerancia

VIF

1 (Constante)

,207

’ 'ÍJIr/i

,105

,917

Dmax

,725

,068

,897

10,716

,000

1,000

1,000

2 (Constante)

1,074

1,200

,895

,379

Dmax

,532

,050

,657

10,736

,000

,688

1,454

Dmin

,403

,058

,429

7,004

,000

,688

1,454

3 (Constante)

-3,885

1,711

-2,271

,032

Dmax

,602

,046

,744

13,156

,000

,561

1,781

Dmin

,394

,048

,418

8,174

,000

,686

1,458

edad

,106

,030

,172

3,575

,001

,776

1,288

4 (Constante)

-3,675

1,592

-2,308

,030

Dmax

,640

,046

,792

13,978

,000

,483

2,070

Dmin

,338

,051

,359

6,603

,000

,525

1,905

edad

,172

,040

,279

4,285

,000

,365

2,736

H

-,187

,083

-,142

-2,261

,033

,396

2,528

a. Variable dependiente:

Así resultan sustituyendo los coeficientes de regresión no estandarizados el siguiente
P = - 3,675 + 0,64 Dmax + 0,338 Dmin + 0,172 edad - 0,187 H [19]

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 307

Castillo & Aguirre: Selección de funcio

e) en Pinar del Ríf

Discusión

El análisis de las distribuciones
diamétricas permite inferir el estado
demográfico de las masas de bosque y sus
posibles problemas de manejo. Los modelos
de distribución de diámetros (MDD) o

de árboles por hectárea por clase diamétrica
en edades presentes y futuras (Campos &
Leite, 2013).

Estos resultados del mejor ajuste de la
función de Weibull se corresponden con los
encontrados por Ferrere et al. (2001) para P.
caribaea var. caribaea en Argentina así como
para otras especies de Pinas como: P. pinaster
por Álvarez & Ruiz (1998) en Galicia, España;
P. piuca por Nanos (2002) en Valladolid,
España; en plantaciones de P. ihimngensis,
P. engelnumnii, P. cooperi, y P. arizonica por
Maldonado & Návar (2002) en Durango
México y para P. patilla por Santiago et al.
(2014) en la región de Zacualtipán, Hidalgo,
México; así como con los encontrados en
plantaciones de P. taeda por Hirigoyen &
Rachid (2014) en Uruguay, por Rubio et al.
(2015) para parcelas permanentes de Pinus,
Juníperas y Quenas en Nuevo León, México.
Además, estos resultados discrepan con los
encontrados para la especie por Montalvo et
al. (1992) quienes encontraron como función
de mejor ajuste la de Gauss.

Como se puede constatar en la matriz
de correlación existe una correlación fuerte
y significativa del parámetro de escala
con el diámetro mínimo y una correlación
medianamente aceptable y negativa con el
diámetro dominante y el diámetro medio de
la plantación, por su parte para el parámetro
de forma la variable más fuertemente
correlacionada fue el diámetro máximo y
también existe una correlación aceptable
con el diámetro mínimo, estos resultados
coinciden con los obtenidos para otras

especies por Rennolls et al. (1985); Ortega
(1989); Erviti, (1991); Maltamo et al. (1995);
Alvarez (1997), Maldonado & Návar (2002).

Con el modelo 4 se explica el 96,1% de
la varianza del parámetro forma ( siendo el
mejor. Al realizar el análisis o puntaje de la
prueba de Durbin - Watson se observa que
tiene un valor de 2,380 por lo que se acepta
el supuesto de independencia serial de los
residuos al encontrarse 1,5 y 2,5.

El valor del nivel crítico permite afirmar
que la incorporación de las variables edad y
altura media contribuyen significativamente
a explicar el comportamiento de la variable
dependiente (parámetro forma ( forma. Las
cuatro variables (Dmax, Dmin, edad, H)
seleccionadas en el modelo final consiguen
explicar el 96,1% de la variabilidad que
presenta el parámetro forma (.

Con una metodología similar a la
utilizada para la obtención de los parámetros
a y (3 por la relación de las variables de la
masa en este trabajo, Rennolls et al. (1985)
obtuvieron para Picea sitchensis, con datos
de 120 parcelas, una varianza explicada del
45,5% para un modelo lineal cuya variable
independiente fue el dg, al igual Álvarez
(1997) en P. pinaster en Galicia con R 2
=0,99 y por García et al. (2002) en P. pinea
en Valladolid, España quienes expresan la
preponderancia de dg casi con exclusividad
para explicar el parámetro a, así como para
el parámetro (3 presenta un importante
porcentaje de variación que no es absorbido
por el modelo lineal que lo relaciona con dg
y la edad.

Kilkki et al. (1989) construyeron modelos
de regresión lineal de los parámetros a y (3
de la función de Weibull. En ambos casos,
la variable de la masa que explicaba una
mayor variación de los parámetros es dg en
el caso del parámetro (3, los autores también
incluyeron otras variables como g y la edad.

308 I ARNALDOA 2%^Íero-Junio,;

Castillo & Aguirre: Selección de funcio

? (Pinaceae) en Pinar del Río (Cuba)

aunque no comentan la correlación entre el
conjunto de las variables independientes,
Ibáñez et al. (1995) obtuvieron un coeficiente
de correlación de 0,79 en un modelo de
predicción de a a partir de la raíz cuadrada
del diámetro cuadrático medio y del
logaritmo de la edad.

Maldonado & Navar (2002) en 18 rodales
plantados con P. ihirangensis, P. cooperi, P.
engehnainiii y P. arizonica obtuvieron los
modelos del parámetro a en función de
diámetro 1,30 medio y la altura dominante
con un R 2 = 0,99, y el parámetro forma ((3)
es explicado con un 92% del diámetro
cuadrático basal, la altura media y el
parámetro escala (a).

La función Weibull puede caracterizarse
de manera dinámica a partir de la
predicción de sus parámetros. Es decir,
después de haber estimado los parámetros
a, (3 (parámetros de escala y forma) con
alguno de los métodos diseñados para ello
se pueden relacionar con variables del rodal
usando modelos lineales (o no lineales).
De esta forma al cambiar las variables del
rodal, automáticamente cambiarán los
parámetros que caracterizan la distribución
diamétrica. En general este se considera un
método débil para estimar los parámetros
de la función Weibull, sin embargo se han
obtenido buenos resultados de ajuste que
además permiten obtener directamente los
parámetros de las distribuciones futuras
proyectadas y facilitan la planeación de los
regímenes de cortas intermedias (García et
al., 2002).

Conclusiones

La obtención de la función de
probabilidad de densidad de Weibull para el
Pinus caribaen, permite tener una herramienta
para el manejo y aprovechamiento forestal
en la Unidad Silvícola San Juan y Martínez

de la EAF Pinar del Río, obteniéndose que
para el parámetro de escala y de forma de
la distribución por clase diamétricas fueron
respectivamente:

a = 2,653 + 0,39 bDmin - 0,109 Dmax
P = -3¿Í> OMDmax + 0,338 Dmin +
0,172edad - 0,187 H

Literatura citada

Aldana, E.; J. Rodríguez; G. Padilla & I. García. 2009.
Análisis de diferentes edades para establecer el tur¬
no de tala en plantaciones de Pinus caribaea
Álvarez, J. G. & A. D. Ruiz. 1998. Análisis y modela¬
ción de las distribuciones diamétricas de Pinus pi-
naster ait. En Galicia. Escuela Politécnica Superior
de Lugo Campus Revista Investigación Agr.: Sist.
Recur. For. V.

Álvarez, 0. P & Y. García. 2006. Determinación del sis¬
tema de raleos por índices de sitio para plantacio¬
nes de Eucalytus sp en Pinar del Río.

Bailey, R. L. & T. R. Dell. 1973. Quantifying diameter
aisiriDunons with the Weibull function. [En línea],
[Citado el: 2 de mayo de 2016.] http://ftp.ceces.
upr.edu.cu/centro/repositorio/Textuales/Libros.
Binoti, M. L. 2012. Emprego de Redes Neurais Artifi¬
ciáis em Mensuragáo e Manejo Florestal. Presen¬
tada para optar por el grado de doctor en Ciencias
Forestales Universidad Federal de Vigosa. 130 pp.
Binoti, D. H. B.; M. L. M. S. Binoti & H. G. Leite. 2014.
Projegáo da distribuigáo diamétrica de povoamen-
tos eqüiáneos utilizando a fungáo Nakagami e Wei¬
bull. Brazilian Journal of Wood Science, v. 5, n. 2,
p. 103-110.

Binoti, D. H. B.; M. L. M. S. Binoti; H. G. Leite & A.
Silva. 2013. Modelos de distribuigáo de diámetros
utilizando a fungáo log gama. Pesquisa Florestal
Brasileira, Colombo, v. 33, n. 73, p. 103-107.
Bishop, C. 1995. Neural Networks for Pattern Recogni-
tion. Oxford University Press.

Borders, B. E. & W. D. Patterson. 1990. Projecting
stands tables: A comparison of the Weibull diam¬
eter distribution method. a Percentile-Based pro-
jection method. and a basal area growth projection
method. Forest Science 36(2): 413-424.

Campos, J. C. & H. G. Leite. 2013. Mensuragáo flores¬
tal: perguntas e respostas. 2ed. Vigosa. 356p.

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 309

Castillo & Aguirre: Selección de funcio

e) en Pinar del ñgrjj&j

stillo, B.; H. Barrero & V. P. Pérez. 2015. Trata¬
miento matemático para la selección del raleo en
plantaciones de Pinus caribaea Morelet. Revista
cubana de Ciencias Forestales CFORES ISSN-e-

Castillo, B.; H. Barrero & V. P. Pérez. 2014. Optimi¬
zación del raleo en plantaciones de Pinus caribaea
Morelet var. caribaea Barret y Golfari mediante un
modelo matemático. Revista Forestal Baracoa.
Vol33. Número Especial. ISSN: 2078- 7235.

Erviti, J. J. 1991. Desarrollo de modelos de crecimien¬
to y producción de las masas forestales de Pinus
halepensis Mili en España. Tesis doctoral. ETSI.
Montes. U. P M. 319 pp.

Ferrere, P.; H. Fassola; J. Fahler & E. Crechi. 2001.
Distribución diamétricas en Pinus caribaea var. ca¬
ribaea. Montecarlo, EEA Montecarlo.

Fidalgo, I; C. Pacheco & B. R. Parresol. 2009. De-
scñbing maritime pine diameter distribution with
Jhonson’s SB distribution using a new all-param-

García, Y. 2002. Variabilidad genética en pruebas
combinadas de procedencia/progenies en Pinus
caribaea Morelet var. caribaea Barret y Golfari. [En
línea] 2002. [Citado el: 18 de Agosto de 2016.];,-
fttp://ftp.ceces.upr.edu.cu/centro/repositorio/Tex-
tuales/Libros.

Gorgoso, J. J.; J. G. Álvarez; A. Rojo & J. A. Garan¬
das-Arias. 2007. Modeling diameter distributions
of Betula alba L. stands in northwest Spain with

Hirigoyen, A. & C. Rachid. 2014. Selección de fun¬
ciones de distribución de frecuencias diamétricas.
para Pinus taeda. Eucalyptus globulus y Eucalyptus
dunnii en Uruguay. Revista Bosque (Valdivia) v.35
n.3.

Kikki, P.: M. Maltamo; R. Mykkánen & R. Paivinen.

1989. Use of the Weibull function in estimating the
basal area dbh-distribution 2. Madrid: INIA. Diciem¬
bre de 1989. Investigación Agraria. Sistemas y Re¬
cursos Forestales. Vol. 11.

Maldonado, D. & J. Návar. 2002. Ajuste y predicción
de la distribución Weibull a las estructuras diamé¬
tricas de plantaciones de pino de Durango. México.
Instituto de Ecología. A.C. Xalapa. México. Madera
y Bosques, vol. 8. núm. 1 pp. 61-72.

Maltamo, M.; J. Puumalainen & R. Paivineen. 1995.
Comparison of beta and Weibull fuctions for model-

rrollo Forestal 2005-2015. Cuba.

mtalvo, J. M.; H. Gra & J. De Nacimiento. 1

i plantaciones de /

Nanos, N. & G. Monteros. 2002. Spatial prediction of
diameter distribution models. Forest Ecology and
Management. 161:147-158.

NORMA, RAMAL 595/1982. Tratamientos Silvicultu-
rales. DNMCC. Dirección de normalización, me¬
teorología y Control de la Calidad. Ministerio de la
Agricultura.

Peraz, A. O. 2011. Turno financiero y técnico forestal
para Pinus caribaea Morelet var. caribaea Barret y
Golfari en sitios de la Provincia de Pinar del Río.
Tesis en opción al título académico de Master en
Ciencias Forestales.

Rennoll, K; D. N. Geary & T. J. Rollinson. 1985. Char-
acterizing diameter distribution by the use of the
Weibull distribution. 2. Madrid: INIA. diciembre de

Russo, I. 2015. Situación del sector Forestal en Cuba
al cierre del 2014. Conferencia desarrollada en el
II Taller Nacional de Silvicultura. Dirección National
Forestal. Cienfuegos. Cuba.

Sanquetta, C. R.; L. Farinha; J. Eduard & A. Apareci¬
da. 2001. Ecuaciones de biomasa aérea y subte¬
rránea en plantaciones de Pinus taeda en el sur del
Estado de Paraná Brasil.

Vanclay, J. 1994. Modeling forest growth and yield. Ap¬
plications to mixed tropical forest. CAB Internatio¬
nal. 312 pg. Wallingford. United Kingdom.

310 I ARNALDOA 24 : ^/Íero - Junio, 2017

Arnaldoa 24 (1): 311 - 332, 2017
http://doi.org/10.22497/arnaldoa.241.2411

ISSN: 1815-8242 (edición impresa)
ISSN: 2413-3299 (edición Online)

Vegetales tintóreos promisorios más utilizados
en la región La Libertad, Perú

Most used promising dyeing plants in La Libertad
Región, Perú

312 I ARNALDOA 2

ArnaldoA 24(i)|:

314 I ARNALDOA 2

ArnaldoA 24(i)|:

316 I ARNALDOA 2

Rodríguez etal: Vegetales tintóreos promisorios más utilizados en la región La Libertad, Perú

17068 (F-2243272, MO-04833949). Provincia
Sánchez Carrión: Jalea de la Ramada, 3300-
4000 m, 17-VII-1951, N. Angulo E. & A.
López M. s.n. (HUT-1359). Los Quinuales
(carretera Yanazara-Huaguil), 3850 m, 24-
VI-1958, A. López M. & A. Sagástegui A. s.n.
(HUT-2750). Provincia Santiago de Chuco:
Shorey-Trujillo road, ca. 9 km from Shorey,
3600 m, 08°01'S 078°30'W, 26-VIII-1982, D.
N. Smith 2347 (MO- 4259138).

Usos: De la corteza, se obtiene tinte
amarillo que los campesinos utilizan para
teñir sus vestimentas típicas (Fernández &
Rodríguez, 2007).

Estado de Conservación: Especie
neotropical de amplia distribución
geográfica (Bolivia, Ecuador, Perú). En
Perú crece entre los 2500 a 3900 m (Dptos.
AM, AN, AY, CA, HU, LA, LI, PA, PI, PU,
SM) (Brako & Zarucchi, 1993; The Field
Museum, 2016; Trópicos, 2016). Con las
colecciones presentadas la especie amplía
su distribución geográfica hacia la región
LL. La quema y tala son las principales
amenazas antropogénicas.

BETULACEAE

Alnus acuminatn Kunth, Nov. Gen. Sp.
(quarto ed.) 2: 20.1817. (Fig. l.C).

Nombres Vulgares: "aliso" (todas las
colecciones), "lambrán" (N. Angulo E. & A.
López M. s.n., 1468-HUT).

Material Examinado:

Perú. Dpto. La Libertad. Provincia
Otuzco: Lecho del río Yamobamba, 2750
m, 13-VII-1951, N. Angulo E. & A. López M.
1468* (HUT-1468). Salpo-Shitahura, al N
de Salpo, 3200 m, 14-VI-1991, S. Le roa G.
& P. Lema G. 381 (F, MO-5617267). Fundo
el Tunja de Justino Sánchez, 3200 m, 03-
VI-1992, S. Lema G. 468 (F-2138565, MO-
5612168). Distrito San Pedro, San Pedro

(Motil), 3000 m, 7-VI-1997, M. Rodríguez
E. 106 (HUT-32173). Distrito San Pedro,
San Pedro-Motil, 3000 m, 15-XI-1997, M.
Rodríguez E. 323 (HUT-32779). Provincia
Pataz: Distrito Pataz, 31/2 km N Pataz, N
side cerro Potosi, 3300 m„ 7 o S 77° W, 2-III-
1986, K. Yoiing 3082 (HUT-025008) aliso.
Distrito Pataz, cerro Potosí, above pampa
Rosas, 2800-3250 m„ 7 o S 77° W, 3-III-1986,

K. Yoiing 3104 (HUT-025009). Provincia
Sánchez Carrión: Distrito Huamachuco,
cerca límite meridional de Huamachuco,
3300 m., 4-XI-1973, D. N. Smith, 21 (HUT-
12778). Distrito Huamachuco, Laguna
Sausacocha, s.a., s.f., M. Eukushima N.,

L. Gonzalos A. s/n (HUT-13056, MO-
2287283). Distrito Huamachuco, Trujillo-
Huamachuco road, 3400 m., 78° 05'W, 8 o
20'S, 14-11-1983, D. N. Smith & R. Vásquez M.
3355 (HUT-024600, MO-3393723). Distrito
Huamachuco, Yamobamba, Huamachuco,
3170-3300 m., 16-VII-1951, N. Angulo E„
& A. López M. 1382* (HUT-1382). Distrito
Cochorco. El Molino (= Molino Viejo), 3415
m, S 07°45'32.6"- W 077°46'14.5", 23-X-
2015, E. Rodríguez R. & L. Pollack V. 4064
(HUT-58472). Provincia Santigo de Chuco:
Santa Rosa (Hda. Uningambal), s.a., 13-IV-
1973, H. Rodríguez, s/n (HUT-12225). Distrito
Cachicadán, Stgo. de Chuco-Cachicadán,
2700 m, 14-VI-1984, A. Sagástegui A., J.
Mostacero L. & M. Diestra Q. 11839 (HLT-;
19249, MO-3246005).

Usos: Fernández & Rodríguez (2007)
mencionan que en la antigüedad eran
empleados en tintorería para teñir tejidos
de lana y algodón, preparando una infusión
de la corteza (marrón) y de sus hojas
(verde-amarillento). Actualmente, se sigue
utilizando en la misma forma en los pueblos
andinos de la región La Libertad (BO, GC,
JU, OT, PT, SC, ST). En las localidades
de Contumazá (Cajamarca) también se
emplea de igual forma (Sagástegui, 1995).

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 317

318 I ARNALDOA 2

ArnaldoA 24(i)|:

Huertas B. s.n. (HUT-54401).

Usos: Las vainas poseen abundantes
taninos (50-60%), usado en curtiembre,
tintorería para fijar los colores (mordiente)
(ver colección: Paredes 1265-HUT). Para
obtener el color negro, se hierven la corteza
y tallo en trozos pequeños conjuntamente
con lana y tejidos, práctica muy antigua y
arraigada en la Región Andina. Fernández &
Rodríguez (2007), indican que los antiguos
peruanos utilizaron esta planta para teñir
sus tejidos. Ugent & Ochoa (2006) indican
también, que de las vainas se extrae un tinte

Estado de Conservación: Planta nativa
del Perú, silvestre o cultivada, crece en las
lomas de la costa y valles interandinos,
llegando hasta los 3000 m. Se distribuye
a lo largo de los andes desde Venezuela
hasta Chile. Históricamente ha venido
soportando una tala indiscriminada, a fin
de ser utilizada como combustible (leña) y
como madera en la construcción de casas
(vigas, parantes, umbrales de puertas, entre

Indigofera suffmticosa Mili., Gard.
Dict. (ed. 8) Indigofera no. 2.1768.

Nombres Vulgares: "añil", "añil-añil"
(Rodríguez & Mora 764-HUT).

Material Examinado:

Perú. Dpto. La Libertad. Provincia
Ascope: Laguna la Paz, Ascope, 120 m, 19-
11-1974, A. López M. 8105 (HUT-12709, MO-
2673870). Provincia Bolívar: Distrito Pusac,
alrededores de Pusac, no alt., 15-IV-1982, /.
G. Sánchez V. 46-82 (MO- 6076515). Provincia
Chepén: Algarrobales S. J. de Moro, 55 m,
08-III-1996, E. Rodríguez R. &M. Mora C. 764
(HUT-30959). Provincia Otuzco: Otuzco:
arriba de El Platanar (oeste de Salpo), 1410
m, 19-III-1994, S. Leim G. 1035 (F- 2149920).
Provincia Trujillo: Trujillo, cerca del

hospital Obrero, 50 m, 12-IV-1949, E. Paredes
s.n. (HUT-489). Quirihuac-Simbal, 400 m,
22-IX-1973, A. Sagástegui A. 7804a (HUT-
12619).

Usos: De las hojas se extrae un colorante
añil, para teñir lana y algodón en la
provincia Chepén (Rodríguez et al., 1996).
El tinte está concentrado en las hojas, que
inmediatamente después de cortadas,
se sumergen en agua para lograr una
fermentación rápida; el agua con el tinte
disuelto se pasa a otro recipiente donde se
somete a un proceso de aireación; se forman
entonces granos insolubles del tinte; en un
tercer recipiente el índigo se deja depositar
en el fondo, luego se decanta el agua
(Fernández & Rodríguez, 2007).

Foster (1953) citado por Towle (1961)
y Fernández & Rodríguez (2007), expresa
que esta especie ha sido utilizada sola o en
combinación con otros colorantes para la
tinción de algodón, madera y plumas.

Estado de Conservación: Especie
neotropical de amplia distribución en
América. En Perú también se encuentra
bien distribuida en diferentes hábitats entre
0 y 1500 m de altitud, así como en la región
LL (Brako & Zarucchi, 1993; Trópicos, 2016;
The Field Museum, 2016). Se la categoriza
como de Preocupación Menor (LC).

HYPERICACEAE

Hypericum laricifolium Juss., Ann. Mus.
Nati. Hist. Nat. 3:160, pl. 16, f. 1.1804. (Fig.
l.F).

Nombre Vulgar: "chinchango"

(Rodríguez 018-HUT, Rodríguez & Ruiz 3165-

HUT).

Material Examinado: Perú. Dpto. La
Libertad. Provincia Gran Chimú: Arriba
del distrito de Lucma, 3900 m, 27-VII-1992,
E. Rodríguez R. 018 (HUT-28392). Provincia

320 I ARNALDOA 24'^Íero-Junio,;

ArnaldoA 24(i)|:

ArnaldoA 24(1 i;

ArnaldoA 24(i)|:

Andonsa, 7°06'32"S 077°49'20"W, 3665 m,
14-XI-2013, R.W. Bussmann, N. Pnningun, C.
Vega & C. Téllez 18421 (MO-6607350). Pro¬
vincia Pataz: Entre Paso La Sabana y Hua-
y lillas, 3200 m, 23-V-1961, A. López M. & A.
Sagástegiu A. 3526*(H UT). Chirimachay, Pa¬
taz, 7°S-77°W, 3450 m, 24-11-1986, K. Young
2958 (HUT-25061). Chigualen, 7°S-77°W,
3550 m, 21-11-1986, K. Young 2862 (HUT-
25060). Shrubby woodland on Cerro Colpar,
above Yalen, Pataz, 7°S-77°W, 3300-3700 m,

25- 11-1986, K. Young3035 (HUT-25059). 31/2
km N Pataz, N side of cerro Potosí, 3300 m,
02 march 1986, K. Young 3083 (HUT-25062).
Distrito Buldibuyo, carretera Buldibuyo a
laguna Huancaspata, 3300 m, 10-X-2000,
M. Mora C. s.n. (HUT-38242). Distrito Pias.
Quebrada de Alpachaque, 18M0220291-
9130688, 3513 m, 25-VII-2008, R. Rivera L. 72
(HUT-48111). Provincia Sánchez Carrión:
Munmalca, Hda. Cochabamba, 3200 m,

26- VI-1958, A. López M. & A. Sagástegui A.
2813 * (HUT). Distrito Huamachuco, 10 Km
NO de la ciudad de Huamachuco, comple¬
jo arqueológico Markawamachuko (=Mar-
cahuamachuco), 7°46'38.6"-7°47'07.7"S
078°05'11.6"W-78°04'40.1"W, 3542-3597 m,

27- VII-2013, E. Rodríguez R, M. Mora C„ B.
Martínez T., K. Monzón L. & V. Liza T. 3348
(HUT-56296-56297).

Usos: En los Andes de la región se
utiliza la corteza, especialmente de la raíz
para teñir de color marrón tejidos de lana
de ovino (e.g.: Ponchos), luego de triturarla
y hervirla en agua y algún mordiente (sal o
alumbre) para fijar el colorante en las fibras.

Estado de Conservación: Especie
de amplia distribución en Sudamérica
(Argentina, Chile, Ecuador, Perú). En Perú
se distribuye en AM, CA, LA, LL y PI, entre
2500 y 3800 m de altitud (Trópicos, 2016). Se
la categoriza como de Preocupación Menor
(LC).

ROSACEAE

Kageneckia lanceolata Ruiz & Pav.,
Syst. Veg. Fl. Peruv. Chü. 290. 1798. (Fig.
2.F).

Nombres Vulgares: "Hoque" ( Leiva &
Ullilén 642-HUT).

Material Examinado:

Perú. Dpto. La Libertad. Provincia
Otuzco: Ca. 12 km SE of Otuzco/
Huamachuco junction on road to
Agallpampa, 2950 m, 6-1-1983, M.O. Dillon,
U. Molau & P. A. Matekaitis 2671 (MO-
3127722, MO-3127723). Loma Colorada
(oeste de Salpo), 2820 m, 01-VII-1992, S.
Leiva G. & J. Ullilén 642 (HUT-28177, MO-
4772275). Provincia Santiago de Chuco:
Calipuy, 4000 m, 9-IX-1983, A. Martin A. s.n.
(HUT-18436). Reserva parte alta Calipuy,
9064573/797482-9064145, 3234-4102 m, 14-
IV-2012, M. Morales , H. Beltrán , G. Badillo
& Personal del Santuario Reserva Nacional de
Calipuy 3771 (HUT-56472).

Usos: Sus hojas resinosas y pegajosas
proporcionan materia colorante; los
pobladores lo utilizan en tintorería para
teñir tejidos de negro (e.g.: GC, OT, SC,
ST). Esta afirmación es corroborada por
Mostacero et al. (1990), Ugent & Ochoa
(2006) y Fernández & Rodríguez (2007).

Estado de Conservación: Especie
neotropical de amplia distribución en
Sudamérica: Argentina, Bolivia, Colombia,
Perú. En Perú se encuentra bien distribuida
en la zona andina (AM, AN, AP, AY, CA,
, I4, LL, TA) entre los 2000 y 4100 m de
altitud (Brako & Zarucci, 1993; Trópicos,
2016). Se la categoriza como de Preocupación
Menor (LC).

THYMELAEACEAE

% Daphnopsis weberbmieri Domke,
Notizbl. Bot. Gart. Berlin-Dahlem 12: 722.

324 I ARNALDOA 2%^Íero-Junio,;

Rodríguez etal.\ Vegetales tiritón

1935. (Fig. 2.G).

Nombre Vulgar: "cholito" ( Sagástegui et
al. 14743-F, 15129- HUT).

Material examinado:

Perú. Dpto. La Libertad. Provincia Gran
Chimú: + Bosque de Cachil, 2600 m, 28-VI-
1992, A. Sagástegui A., S. Lema G. & C. Téllez
A. 14743 (F-2114542). Entrada al bosque
Cachil, 2500 m, 13-XII-1993, A. Sagástegui A.,
S. Lema G. & P. Lezanm A. 15129 (F-2133088,
HUT-27989).

Nota: + E1 bosque relicto Cachil
actualmente pertenece a la provincia
Gran Chimú. En la etiqueta aparece como
perteneciente a la provincia Contumazá
(Cajamarca).

Usos: Sus hojas y corteza son usadas para
teñir las lanas y tejidos de amarillo hasta
marrón claro, mayormente en la provincia
GC. Los pobladores de las localidades
aledañas (provincia Contumazá, CA),
utilizan esta especie de la misma forma
(Sagástegui, 1995).

Estado de Conservación: Especie
endémica de Perú a CA (Contumazá)
y LL (Gran Chimú) (Trópicos, 2016),
categorizada como En Peligro: EN, Blab(iii)
(León, 2006b).

En general el poblador andino emplea
varias plantas fanerógamas para teñir de
diversas tonalidades, cuyos colores son
acentuados al ser mezcladas con productos
químicos (e.g.: anilina), como: lanas, hilos,
hilados y tejidos, vestimentas, entre otros
enseres utilizados en la vida diaria. Además
de las mencionadas y en menor escala
se encuentran varias especies de Oxalis
spp. (Oxalidaceae) "shulco", "chuleo"
("bayetas" rojizas). Agave americana L.
(Asparagaceae) penca azul , mejico ,
"maguey" ("bayetas" azuladas) (provincia

SC, ST).

LICHENOPHYTA

PARMELIACEAE

Ver: Truong & Clerc (2012).

Usnea brasiliensis (Zahlbr.) Motyka,
Lichenum Generis Usnea Studium
Monographicum. Pars Systematica 2: 486.
1937.

Material Examinado:

Perú. Dpto. La Libertad. Provincia
Trujillo: Cerro Campana, 300 m, IX-1950, A.
López M. 4674*(HUT-4674). Cerro Campana,
500 m, 30-VIII-1956, A. López M. 4895% HUT-
4895). "liquen". Determinación: C. Truong
(G), 2007.

Para esta especie, en el herbario
existe una determinación intraespecífica
efectuada por C. Truong (G)(2007), como:
Usnea brasiliensis (Zahlbr.) Motyka í.flemosa.
Material Examinado:

Perú. Dpto. La Libertad. Provincia
Otuzco: Motil, 3400 m, 16-VII-1967, H.
Aguado L. 6822% HUT). Determinación: C.
Truong (G), 2007.

Nota: Aparece en la misma lámina de
Usnea silesiaca Motyka. "shapra".

Usnea columbiana Motyka ex Rásánen,
Revista Universitaria Santiago 21:138.1936.
Material Examinado:

Perú. Dpto. La Libertad. Provincia
Otuzco: Otuzco, 3200 m, 20-XI-1967, R.
Ramírez V. 6938*(HUT). "shapra".

Usnea cornuta Kórb., Parerga
lichenologica. Erganzungen zum Systema
lichenum Germaniae: 2.1859.

Material Examinado:

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 325

ArnaldoA 24(1 i;

Rodríguez eta!; Vegetales tintóreos promisorios más utilizadosLa Libertad, Perú

Teloschistes flavicans (Sw.) Norman,
Nytt Magazin for Naturvidenskapene 7: 229
. 1853.

Nombres Vulgares: "barba de piedra",
"liquen dorado".

Material Examinado:

Perú. Dpto. La Libertad. Provincia Gran
Chimú: Bosque Cachil, 2300-2450 m, 05-
VIII-1995, E. Rodríguez R. et ni 421 (HUT-
29186). Provincia Trujillo: Cerro Campana,
330 m, IX-1950, A. López M. 4672% HUT-
4672).

Existen otras especies de Teloschistes,
como T. flnvicnns var. teiiuissimus (Mey. &
Fw.) Müll. Arg., T. Injpoglnucn (Nyl.) Zahlbr.,
T. nodulifer (Nyl.) Hilm. y T. stellntus (Mey.
& Flot.) Müll. Arg. conocidas en las lomas
de la provincia de Trujillo (300-800 m), T.
peruensis (Ach.) J. W. Thomson típica de
Otuzco (2500-2900 m.), así como Xnntlionn
pnrietinn (L.) Th. Fr. propia de las lomas de
la provincia de Trujillo (380-650 m) (ver
colecciones en herbario HUT); que muy
bien podrían ser utilizadas como especies
productoras de tintes naturales.

Se debe precisar, que especies de
los géneros Teloschistes y Xnnthorin son
productoras de un tinte amarillo (ácido
parietínico o ácido antraquinon-4,5-
dihidroxi-7-metoxi-2-carboxílico, puede
ser aislado del liquen con acetona) (Gibaja,
1998).

Usos: T. flnvicnns es utilizado en la región
andina de la región La Libertad (prov. GC)
para teñir diferentes tejidos de lana (e.g.:
ponchos, alforjas, jergas de animales) de
color amarillo-anaranjado, por el mismo
método empleado para las especies de

Estado de Conservación: T. flnvicnns y X.
pnrietinn son taxones de amplia distribución

geográfica en el mundo.

Conclusiones

Se concluye que 26 especies son
utilizadas como plantas promisorias
tintóreas, de ellas, 19 son angiospermas y 7
liqúenes. Luego, 4 especies son endémicas
de Perú ( Dicliptern hookerinnn Nees, Coreopsis
senaria S. F. Blake & Sherff, Berberís buceronis
J. F. Macbr., Dnphnopsis weberbnueri Domke).
En general, las especies son empleadas por
el poblador andino para teñir su vestimenta
y enseres de su vida cotidiana de diferentes
tonalidades.

Agradecimientos

A los directores, curadores y autoridades
de los herbarios F, HUT y MO por hacer
posible la revisión de sus colecciones y
bases de datos botánicos. Agradecemos
a nuestros maestros: Dr. Arnaldo López
Miranda (f) (HUT), Dr. Abundio Sagástegui
Alva (f) (HAO, HUT) y Dr. Isidoro Sánchez
Vega (f) (CPUN) por sus enseñanzas y
dirigir los trabajos de campo en el norte del
Perú. Nuestra gratitud al Dr. Michael O.
Dillon (F), Ing. Rodolfo Vázquez Martínez,
y Mg. Segundo Leiva González (HAO)
por el apoyo constante a los estudios de
Flora del Perú, y al Dr. Mac H. Alford
(The University of Southern Mississippi,
USA) por proporcionarnos la fotografía de
la especie Dnphnopsis weberbnueri Domke
(Thymelaeaceae).

Literatura citada

Acuña, L. & G. Rivera. 1990. Plantas tintóreas y otros
colorantes de Costa Rica. Editorial tecnológica de
Costa Rica. Cartago, Costa Rica.

APG IV. 2016. An update of the Angiosperm Phylogeny
Group classification for the orders and families of
flowering plants: APG IV. Botanical Journal of the
Linnean Society 1-20,1 fig.

Beltrán, H.; A. Granda; B. León; A. Sagástegui; I. Sán¬
chez & M. Zapata. 2006. Asteraceae endémicas

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 327

del Perú. In: El libro rojo de las plantas endémicas
del Perú. Ed.: Blanca León etal. Rev. perú. biol. Nú¬
mero especial 13 (2): 64-164.

Brack Egg, A. 1999. Diccionario enciclopédico de plan¬
tas útiles del Perú. Centro de Estudios Regionales
Andinos «Bartolomé de la Casas», Cuzco, Perú.

Brako, L. & J. Zarucchi. 1993. Catalogue of the Flow-
ering Plants and Gymnosperms of Perú. Monogr.
Syst. Bot. Missouri Bot. Gard. 45.

Fernández, A. & E. Rodríguez. 2007. Etnobotánica del
Perú Pre-Hispano. Ediciones Herbarium Truxillense
(HUT), Universidad Nacional de Trujillo, Trujillo,
Perú.

I. Villegas & M. Mo-

. Manual de tintes natura¬
les. Siguiéndole el hilo al color. Nencatacoa Corpo¬
ración de artes textiles. Bogotá.

Gibaja, S. 1998. Pigmentos Naturales Quinónicos. Fon¬
do Editorial, Universidad Nacional Mayor de San
Marcos, Urna, Perú.

HUI, A. 1965. Botánica económica, plantas útiles y
productos vegetales. Edic. Omega S.A. Barcelona,
España.

IPNI. 2016. The International Plant Ñames Index. Dis¬
ponible en: http://www.ipni.org/ . Acceso: 15 de
marzo del 2016.

León, B. 2006a. Acanthaceae endémicas del Perú. In:
El libro rojo de las plantas endémicas del Perú. Ed.:
Blanca León etal. Rev. perú. biol. Número especial
13(2): 23-29.

León, B. 2006b. Thymelaeaceae endémicas del Perú.
In: El libro rojo de las plantas endémicas del Perú.
Ed.: Blanca León etal. Rev. perú. biol. Número es¬
pecial 13(2): 654.

Mycobank. 2016. MYCOBANK DATABASE. Disponible
en: http://www.mycobank.org/. Acceso: 25 de dic¬
iembre del 2016.

Olson, D. M. & E. Dinerstein. 1998. The Global 2000: A
representation approach to conserving the earth’s
most biologically valuable ecoregions. Conserva-
tion Biology. 12: 502-515.

Patiño, V. 1967. Plantas cultivadas y animales domés¬
ticos en América Equinoccial. Fibras, Medicinas,
Misceláneas. Tomo III. Imprenta Departamental. I a
edición. Cali.

PNHQ. 2016. Plantas Nativas de la Hoyada de Quito.
Disponible en: http://plantasnativas.visitavirtualjbq.
com/index.php/epoca/xviii-joseph-de-jussieu/14-
hypericum-lañcifolium. Acceso: 21 de junio del
2016.

Rodríguez, E.; M. Mora & W. Aguilar. 1996. Inventario
florístico de El Algarrobal de Moro (provincia Che-
pén, departamento de La Libertad) y su importan¬
cia económica. Rebiol 57-65.

Rodríguez, E. & R. Rojas. 2006. El Herbario: Adminis¬
tración y Manejo de Colecciones Botánicas. 2da.
Edición. Editado por R. Vásquez M., Missouri Bota-
nical Garden, Perú.

Rodríguez, E.; E. Alvítez; L. Pollack; E. Huamán & A.
Sagastegui. 2015. Notas sobre Malvaceae subfa¬
milia Bombacoideae en la región La Libertad, Perú.
Rebiol 35 (2): 90-101.

Romero, T. & J. Hernán. 1983. Contribución al co¬
nocimiento de las plantas tintóreas registradas en
Colombia. Instituto de Ciencias Naturales-Museo
de Historia Natural Biblioteca José Jerónimo Triana
nal de Colombia-Colcien-

)95. Diversidad Florística de Contu-
zá. Universidad Antenor Orrego de Trujillo, Fon-
Editorial, Editorial Libertad E. I. R. L, Trujillo,

Mostacero, J.; R. Ramírez & F. Mejía. 2004. Caracte¬
rísticas taxonómicas, ecológicas y fitogeográficas
de las especies vegetales nativas con potencial
agroindustrial de la región La Libertad-Perú. Scien-
do 7 (1-2): 43-69.

e Field Museum. 2016. The Field Museum. Dispo¬
nible en: http://emuweb.fieldmuseum.org/ botany/
detailed.php. Acceso: 12 de agosto del 2016.

328 I ARNALDOA 2%^/Íero - Junio, 2017

2016.

org. Acceso: 12 de julio del

Thiers, B. 2016. Index Herbariorum: A global directory
of public herbaria and associated staff. New York
Botanical Garden’s Virtual Herbarium. Disponible
en: http://sweetgum.nybg.org/ih/. Acceso: 28 de
junio del 2016.

Towle, M. 1961. The Ethnobotany of Pre-Columbian
Perú. Viking Fund Publication in Antropology N°
30. Wenner-Gren Foundation for Anthropological
Research, Inc. New York, USA.

Trópicos. 2016. Tropicos.org. Missouri Botanical Gar-
den. Disponible en: http://www.tropicos.org. Acce¬
so: 13 de junio del 2016.

Truong, C. & R Clerc. 2012. The lichen genus Usnea
(Parmeliaceae) in tropical South America: species
with a pigmented medulla, reacting C+yellow. U-
chenologist 44 (5): 625-637.

Ugent, D. & C. Ochoa. 2006. La Etnobotánica del Perú
desde la Prehistoria al Presente. Consejo Nacional
de Ciencia, Tecnología e Innovación Tecnológica-
CONCYTEC, Urna, Perú.

UICN. 2012. Categorías y Criterios de la Lista Roja de la
UICN. Versión 3.1. Segunda Edición. Gland, Suiza y
Cambridge, Reino Unido: UICN. vi + 34pp.

geography of the Amotape-Huancabamba zone in
Northern Perú: Defining the South-Eastern limits.
Rev. perú, biol.11 (2): 127-134.

Ulloa Ulloa, C.; A. Sagástegui & I. Sánchez. 2006.
Berberidaceae endémicas del Perú. In: El libro rojo
de las plantas endémicas del Perú. Ed.: Blanca
León et al. Rev. perú. biol. Número especial 13 (2):
171-173.

Vargas, A.; L. Aída & D. Campos. 2004. La naturaleza
se viste de color. Catálogo de especies tintóreas del
bosque alto andino. Informe presentado al Instituto
de Investigación de Recursos Biológicos Alexander
Von Humboldt: Uso y saberes locales en Biodiver-
sidad.

Vavilov, N. 1 . 1960. Estudio sobre el origen de las plan¬
tas cultivadas. Ediciones ACME Agency S. R. Ltda.,
Buenos Aires.

Weberbauer, A. 1945. El Mundo Vegetal de los Andes
Peruanos. Estudio Fitogeográfico. Edit. Lumen. Mi¬
nisterio de Agricultura. Lima. Perú.

Weigend, M. 2002. Observations on the Biogeography
of the Amotape - Huancabamba Zone in Northern
Perú. In K. Young etal., Plant Evolution and Ende-
mism in Andean South American. Bot. Review 68
A 38-54.

Weigend, M. 2004. Additional observations on the bio-

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 329

Rodríguez etal.\ Vegetales tintóreos protnJsoffcs más utilizados en la región La Libertad, Perú

Fig. 1 A. Dicliptem hookerüma Nees (Acanthaceae); B. Schinus molle L. (Anacardiaceae); C. Alnas
acuminata Kunth (Betulaceae); D. Coriaria rusdfolia L. (Coriariaceae); E. Escallonia resinosa (Ruiz
& Pav.) Pers. (Escalloniaceae); F. Hypericum laridfolium Juss. (Hypericaceae). (Fotos: Eric F.
Rodríguez R., HUT).

330 I ARNALDOA 2%fjt ; ,Íiero - Junio, 2017

ArnaldoA 24(i)|:

332 I ARNALDOA

Arnaldoa 24 (1): 333 - 342, 2017
http://doi.org/10.22497/arnaldoa.241.24115

ISSN: 1815-8242 (edición impresa)
ISSN: 2413-3299 (edición Online)

Efecto del acondicionamiento osmótico en la
germinación de semillas de Caesalpinia spinosa
(Feuillée ex Molina) Kuntze (Fabaceae) “taya”

Effect of osmotic conditioning in germination of seeds
of Caesalpinia spinosa (Feuillée ex Molina) Kuntze
(Fabaceae) “taya”

e) “taya”

Recibido: 15-1-2017; Aceptado: 20-111-2017; Publicado: VI-2017; Edición online: 02-VI-2017

Resumen

La "taya" Caesalpinia spinosa (Feuillée ex Molina) Kuntze (Fabaceae) es muy valorada por sus
principios activos y propiedades medicinales. Esto ha ocasionado que su interés productivo haya
aumentado a nivel mundial, pues el sector industrial demanda ácido tánico,”^|‘^^tl es utilizado
como agente clarificador de alimentos, además de sus usos en la industria papelera, farmacéutica y
química. Ante esta realidad, se pretende masificar el cultivo de C. spinosa, para lo cual la propagación
empleando semilla botánica es una buena alternativa. Ante la necesidad de obtener plantas
vigorosas y uniformes, se tomó como objetivo determinar el efecto de acondicionamiento osmótico
de semillas de C. spinosa "taya". Para ello, se seleccionaron semillas, las cuales se transportaron al
Laboratorio de Biotecnología del Instituto de la Papa y Cultivos Andinos, donde se procedió a la
escarificación, para posteriormente someterlas a osmoacondicionamiento, según los tratamientos:
TI: 0 h; T2: 24 h; T3: 48 h; T4: 72 h y T5: 96 h. Finalmente, se dejaron secar por un lapso de siete
días a temperatura ambiente, para luego colocarlas a germinar en placas de Petri. Se encontraron
diferencias estadísticamente significativas, siendo T2 y T5 los que evidenciaron mayor potencia
germinativa, velocidad y uniformidad de germinación y vigor germinativo. Se concluye que el
acondicionamento osmótico mejora la germinación de C. spinosa, lo cual se evidencia en T2, siendo
el tratamiento que se recomienda utilizar para futuras investigaciones.

Palabras clave: efecto, acondicionamiento osmótico, semillas, Caesalpinia spinosa, "taya".

Caesalpinia spinosa ex Molina) Kuntze (Fabaceae) "taya" is highly valued for its active

principies and medicinal properties. This has caused a worldwide increase in its production interest,
as the industrial sector demands tannic acid, which is used as food clarifying agent, in addition to its

Given the need to obtain vigorous and uniform plants, the objective was to determine the effect
of osmotic conditioning of seeds of C. spinosa "taya". For this, seeds were selected, which were
transported to the Biotechnology Laboratory of the Potato and Andean Crops Institute, where the
scarification was carried out, and then subjected to osmo-conditioning, according to the treatments:
ifti® h; T2: 24 h; T3: 48 h; T4: 72 h and T5: 96 h. Finally, they dried for a period of seven days at
room temperature, then they were placed for germination in Petri dishes. Statistically significant
differences were found, with T2 and T5 showing greater germinative power, speed and uniformity
of germination and germinative vigor. It is concluded that the osmotic conditioning improves the
germination of C. spinosa, which is evident in T2 that is the recommended treatment to be used for
future researches.

Keywords: effect, osmotic conditioning, seeds, Caesalpinia spinosa, "taya".

Introducción

En la familia Fabaceae, el género
Caesalpinia, abarca 150 especies, de las
que 40 están presentes en Sudamérica. C.
spinosa, es un arbusto o árbol siempre verde,
con espinas en tallo y ramas, de 3 a 8 m de
altura. Las hojas son laxamente espinosas,
mientras que las flores se disponen en
racimos terminales. El fruto es una legumbre

coriácea de 6 a 10 cm de largo y 1,5 a 2,5 cm
de ancho; poseyendo entre 5 a 8 semillas
redondas. Es conocido como: "tara",
"guaranga", "tanino" o "taya" (Dostert et
al, 2009). Esta especie está distribuida en la
costa desde Piura hasta Tacna. En la sierra
abunda en los departamentos de Ancash,
Apurímac, Ayacucho, Cajamarca, Cusco,
Huánuco, Huancavelica, Junín y Pasco
(Brako & Zarucchi, 1993).

334 I ARNALDOA 24 (tk - Junio, 2017

ArnaldoA 24(i)|:

ArnaldoA 24(1 i;

López & Gil: Efecto c

i Caesalpinia spinosa (Fabaceae) “taya”

del acondicionamiento osmótico en la germinación de semillas de

Fig. 1 Diagrama del proceso de osmoacondicionamiento de C. spinosa.

■ T5(96h) ■ T4 (72h) ST3(4Sh) BT2(24h)

sometidos a análisis de varianza (ANOVA)
y Tukey.

Resultados y discusión

La tabla 1 presenta los resultados
de potencia germinativa, velocidad de
germinación y uniformidad de germinación.
Pudiéndose observar que T2 (24 h) tiene una
mayor potencia germinativa por encima
del 90%, el cual es 2,4 veces mayor que el
testigo. Siendo sinónimo de una mayor
energía y vigor germinativo. Recientes
investigaciones corroboran los resultados
obtenidos, al afirmar, que al someter semillas
a osmoacondicionamiento se obtiene mayor
porcentaje y velocidad de germinación
(Moreno et ni, 2013; Alfaro, 1997). Por
otro lado T2 y T5 (Tabla 1), evidenciaron
una mayor velocidad germinativa.
Estudios han demostrado que el tiempo de

germinación y emergencia disminuye ante
el incremento de las horas de inmersión
en el agente osmótico (Villa et al., 2012).
Por lo tanto, el osmoacondicionamiento
afecta directamente en la germinación,
emergencia y demás variables. En lo
referente a uniformidad de germinación,
Aljaro & Wyneken (1985), afirman que el
acondicionamiento osmótico puede no
afectar directamente sobre este factor. Siendo
importante también considerar, que esta
variable es indicador de energía germinativa
y del grado de domesticación del cultivo.
Por ello, se dice que a más silvestre y menos
domesticado sea un planta, su germinación
será menos uniforme debido a la existencia
de inhibidores de germinación. Cuyo
objetivo es preservar la especie, a través
de una germinación desuniforme, ante
condiciones no favorables (Medina, 2010).

Tabla 1. Comparación de las variables: PG = Potencia germinativa; VG = Velocidad de germinación y
UG = Uniformidad de germinación, para los diferentes tratamientos de osmoacondicionamiento en la
germinación de semillas de C. spinosa.

Tiempo PG VG UG

TI (Oh) 38.9 5.3 3

T2 (24 h) 92.2 3 4

T3 (48 h) 82.2 3 4.33

T4 (72 h) 83.3 3 4

T5 (96 h) 75,6 2 3,33

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 337

ArnaldoA 24(1 i;

Vil*

¡ento osmótico en la germinación di

Literatura citada

Alfaro, C. 1997. Efecto de tratamientos a las semillas
en la emergencia y calidad de plántulas para trans¬
plante en cinco cultivos olerícolas. Tesis Ingeniero
Agrónomo. Escuela Agrícola Panamericana ZAMO-
RANO, Honduras.

Aljaro, A. & L. Wyneken. 1985. Acondicionamiento
osmótico de semillas de “pimiento” ( Capsicum
annuum L.) y su efecto es en la germinación y
emergencia. Rev. Agricultura Técnica (Chile), 45
(4): 293:302.

ra, L. 1996. Biología de semillas forestales. Edit.
Centro Agronómico Tropical de Investigación y En¬
señanza -CATIE: Costa Rica.

Blayne, D.: C. Scholz & A. Boe.

ing and growth regulator seed treatment effect on
sugarbeet yield. Sugarbeet Research and Extensión
Reports, 16: 217-220.

Brako, L.; J. Zarucchi. 1993. Catalogue of the Flow-
ering Plants and Gymnosperms of Perú. Monogr.

Syst. Bot. Missouri Bot. Gard.

Cordero, D. & J. Trujillo. 1995. Viabilidad de semillas Me | 0

Lynne, K. 2000. Mejoramiento genético y semi¬
llas forestales. Rev. Forestal Centroamericana.
Disponibleen:https://books.google.com.pe/books?i
d=y20OAQAAIAAJ&printsec =frontcover&hl=es&
source=gbs_ge_summary_r&cad=0#v=onepag

laboratorio y su relación con el comporta¬
miento en vivero. Resum. Semana Científica CA-
TIE. Instituto tecnológico Costa Rica.

De La Cruz, P. 2004. Aprovechamiento integral y racio¬
nal de la “tara”. Revista del Instituto de Investiga¬
ciones FIGMMG, 7 (14): 64:73.

Duran, J.&N. Retamal. 1998. i

trico y osmótico de semillas hortícolas. Rev. Agro¬
pecuaria, 67:156-160.

Dostert, N.; J. Roque; G. Brokamp; A. Cano; M. La
Torre & M. Weigend. 2009. Datos botánicos de
“Tara”. Disponible en: http://www.botconsult.com/

i, M.; R Glorio & G. Tarazona. 2013. Efecto de la
madurez en los componentes de valor comercial
(taninos y goma) de “tara” Caesalpinia spinosa
(Molina) Kuntze. Rev. Soc. Quím. Perú, 79 (3) :
218-228.

Moreno, B. & S. Jiménez. 2013. Efecto del acondicio¬
namiento osmótico en semillas de “tomate2 ( So-
lanum lycopersicum L var. Santa Clara). Conexión
Agropecuaria, 3 (2): It^fL// ' J,

Piedrahita, E. 1998. Aumento del vigor en semillas de
Pinus patula (Schlecht. & Cham.) por el efecto de

Medio Ambiente ,13(1).

FAO. 2002. Evaluación de los recursos forestales Mun¬
diales. Edit. Food & Agriculture Org.: Roma.
Ffolliott, P. & J. Thames.1983. Recolección, manipu¬
leo, almacenaje y pre-tratamiento de las semillas de
Prosopis en América Latina. Universidad de Arizo-
na. Disponible en: http://www.fao.org/docrep/006/
Q2180S/Q2180S00.htm#TOC
Gilíes, A. 2007. Germinación, vigor, viabilidad, calidad
y mejora de semillas de “cebolla” ( Allium cepa L.).
Tesis Ingeniero Agrónomo. Universidad Politécnica
de Madrid.

Salinas, R.; M. Yoldjian; M. Craviotto & V. Bisaro.

2001. Pruebas de vigor y calidad fisiológica de
las semillas de “soya”. Rev. Pesq. agropec. Bras,
36(2): 371-379.

Sánchez, M.; J. Mejía; J.; A. Hernández; A. Carballo
& A. Peña. 2007. Acondicionamiento osmótico de
semillas de “cebolla” {Allium cepa L). Agricultura
técnica en México, 33(1), 63-71.

Silva, M.; M. Toselli & E. Casenave. 2011. Poder ger¬
minativo del “algodón”, una tecnología al alcance
del consumidor. Rev. Cultivos Tropicales, 33:41 -

ARNALDOA 24 (1): Enero - Junio, 2017 I 339

e) “taya”

mica vegetal. Departamento de Biología. Universi¬
dad Nacional de Colombia. Disponible en: http://
www.bdigital.unal. edu.co/8545/4/03_Cap01.pdf
a, M.; E. Catalán; M. Inzunza; A. Román; H. Ma¬
clas. 2012. Respuesta de semillas de “fréjol” ( Pha-
seolus vulgaris L.) al acondicionamiento osmótico.
Rev. Producción Agrícola, 12(3): 25:29.
acres, D. & L. Flores. 2013. Efecto del acondicio¬
namiento de suelo terracottem sobre el rendimiento
y desarrollo de Caesalpinia spinosa Kuntze en la
reserva Pisaca, Cantón Paltas, provincia de Loja.

340 I ARNALDOA 2%fjt ; liero - Junio, 2017

López & Gil: Efecto c

i Caesalpinia spinosa (Fabaceae) “taya”

del acondicionamiento osmótico en la germinación de semillas de

ANEXO

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 341

e) “taya”

342 I ARNALDOA

Arnaldoa 24 (1): 343 - 350, 2017
http://doi.org/10.22497/arnaldoa.241.24116

ISSN: 1815-8242 (edición impresa)
ISSN: 2413-3299 (edición Online)

Aclimatación de plántulas in vitro de Saintpaulia
ionantha H. Wendl. (Gesneriaceae) “violeta
africana” a condiciones de invernadero

Acclimation of in vitro seedlings of Saintpaulia
ionantha H.Wendl. (Gesneriaceae) “African violet” to
greenhouse conditions

Armando Efraín Gil Rivero, Segundo Eloy López Medina & Angélica López

Zavaleta

Laboratorio de Biotecnología del Instituto de la Papa y Cultivos Andinos, Facultad de Ciencias Biológicas,
Universidad Nacional de Trujillo. Avenida Juan Pablo II, Trujillo, PERÚ.
a.gr108@hotmail.com seellome88@gmail.com angylz@outlook.es

ARNALDOA 24 (1): Enero - Junio, 2017 I 343
cia CC BY-NC 4.0: https://crcativccommons.Org/liccnscs/by-nc/4.0/

i plántulas in vitro de Saintpaulia ionantha (Gesn

o: VI-2017; Edición online: 02-VI-2017

Las "violetas africanas" Saintpaulia ionantha H. Wendl. (Gesneriaceae) son plantas ornamentales
muy valoradas en el mundo por su belleza y capacidad de dar flores durante todo el año. Esto ha
conllevado a que su demanda sea mayor, pues es idónea para decorar espacios interiores del hogar.
Por ello, su cultivo con fines comerciales ha aumentado, siendo la propagación in vitro y su posterior
aclimatación una buena alternativa de emprendimiento en floricultura. Sin embargo, ante escasa
información referida a la aclimatación ex vitro de S. ionantha, se propuso como objetivo estandarizar
un protocolo de aclimatación. Para ello, se seleccionaron plántulas in vitro del Laboratorio de
Biotecnología del Instituto de la Papa y Cultivos Andinos, las cuales fueron transportadas al
invernadero para su siembra, empleándose diferentes sustratos, constituidos por: TI = arena +
musgo + humus; T2 = arena + musgo; T3= arena + humus y T4 = arena. Se encontraron diferencias
estadísticamente significativas, siendo el tratamiento TI el que evidenció un buen porcentaje de
plantas aclimatadas, el mayor porcentaje de plantas enraizadas, el mayor número promedio de
hojas, el mayor número promedio de raíces normales, y la mayor longitud y ancho promedio de
hoja. Se concluye que el sustrato constituido por arena + musgo + humus es el más óptimo para la
aclimatación ex vitro de S. ionantha.

ción, plántulas, in vitro, Saintpaulia, "violeta african,

H.Wendl. (G
litytogivefkn

■rs throughout the
)rating interior s]

trepre

m ieads us to propose a standard
dlings from the Biotechnology
; transported to greenhouse for

acclimation protocol. For this purpose, we selected in vitro
Laboratory of the Potato and Andean Crops Institute. They i
planting using different substrates consisting of: TI = sand + moss + humus; T2 = sand + moss; T3
= sand + humus and T4 = sand. Statistically significant differences were found, with treatment t'i s
showing a good percentage of acclimated plants, the biggest percentage of rooted plants, the biggest
average number of leaves, the biggest average number of normal roots and the biggest average leaf
length and width. It was concluded that the substrate constituted by sand + moss + humus is the
most optimal for ex vitro acclimation of S. ionantha.

Keywords: acclimation,;

Introducción

La "violeta africana" Saintpaulia
ionantha H. Wendl. pertenece a la familia
Gesneriaceae, es una planta ornamental
muy popular en todo el mundo. Pues posee
características particulares que le confieren
un atractivo especial, además de tener
capacidad para prosperar bajo condiciones
comúnmente encontradas en la mayoría
de los hogares (Terenti & Verdes, 2013;
Alabama A & M University & Auburn
University, 2004).

Esta especie es muy comercializada
como planta decorativa, pues existen
muchas variedades, con diferentes tipos y
colores de flores (McCaleb, 2011; Doubrava
& Polomski, 2015). Por ello, es que existen
diferentes formas de propagación de S.
ionantha. Una vía de propagación es a través
de la técnica de cultivo de tejidos vegetales,
la cual consiste en sembrar un explante
con potencialidad de diferenciación bajo
condiciones asépticas en presencia de
nutrientes y hormonas, tales como: BA,

344 I ARNALDOA 2%fjbliero - Junio, 2017

ArnaldoA 24(i)|:

i plántulas in vitro de Saintpaulia ¡onantha (Gesn

5 minutos. Posteriormente, las plántulas de
S. ionnnthn fueron sembradas en vasos de
tecnopor de 10 onzas, los cuales contenían
diferentes sustratos, según los tratamientos
indicados: TI = Arena + musgo + humus; T2
= arena + musgo; T3= arena + humus y T4
= arena. Con la finalidad de proporcionar
una cámara húmeda, se colocó una bolsa de
polipropileno en cada vaso, sujetándose con
una liga (Fig. 1). El riego se efectuó 2 veces

por semana. Según la metodología descrita
por Figueroa et ni (2003), a los 5 días de la
siembra se realizó el 1er corte del extremo
izquierdo de la bolsa, a los 12 días se realizó
el 2do corte, del extremo derecho y a los
20 días el corte total de la base de la bolsa
plástica. A los 30 días después de la siembra
se procedió a retirar totalmente la bolsa,
considerándose plántula aclimatada.

A los 60 días de haber sido sembradas,
las plantas fueron evaluadas, tomándose
como parámetros de evaluación, los
caracteres: % de plantas aclimatadas, %
de plantas enraizadas, n° promedio de
hojas, n° promedio de raíces normales, n°
promedio de raíces necrosadas, longitud
promedio de hoja mayor y ancho promedio
de hoja mayor. El diseño estadístico fue
completamente al azar, los datos obtenidos,
fueron sometidos a Análisis de Varianza
(ANOVA) y Tukey.

Las muestras de Saintpaulia ¡onantha
H. Wendl. se encuentra depositadas en
el Herbarium Truxillense (HUT), con el
número de registro 58871.

Resultados y discusión

En lo referente al porcentaje de plántulas

de S. ionnnthn aclimatadas (Tabla 1), se
obtuvieron resultados favorables en los
diferentes tratamientos. Se logró una
aclimatación por encima del 80%, lo cual es
indicador que las plántulas fueron capaces
de superar los cambios del lugar in vitro
(condición heterótrofa) a las condiciones
naturales (autótrofas) (Osuna & Saucedo,
2010). Esto se debe a que se emplearon
sustratos estériles por autoclavado o
solarización, evitándose la interferencia
de enfermedades fungosas. Por otro lado,
el proporcionar una cámara húmeda (Fig.
1) empleando bolsas de polipropileno,
se evita la pérdida brusca de agua por
evapotranspiración. Los cortes realizados
a la bolsa, es indicador de que poco apoco
se va reduciendo la humedad relativa,
pues existe una notable variación entre la
humedad relativa dentro de la bolsa y la

346 I ARNALDOA 24|í|„|iero-Junio,;

ArnaldoA 24(i)|:

348 I ARNALDOA 2|íj|,

3il etal.\ Aclimatación de plántulas in vitro de Saintpaulia ionantha (Gesnerlaceae) “violeta africana” a condiciones de Invernadero

de un buen desarrollo radical, favorece la
producción de hojas fotosintéticamente
competentes, aumentando el contenido de
carbohidratos y proteínas solubles totales.
Todo ello contribuirá a que se generen
mejores atributos morfológicos en la planta
(Latsague et ni. , 2014; Monsalve et ni, 2009).

Los resultados del análisis de varianza
para los diferentes parámetro evaluados:
% de plantas aclimatadas, % de plantas
enraizadas, n° promedio de hojas, n°
promedio de raíces normales, n° promedio
de raíces necrosadas, longitud promedio de
hoja mayor y ancho promedio de hoja mayor.
Nos indica la existencia de diferencias
estadísticamente significativas entre los
tratamientos, con un nivel de confianza
de 95,0%. Esto corrobora la existencia de
diferentes respuestas de aclimatación y
adaptación de S. ionnntlm en diferentes
sustratos. Por otro lado, los resultados de la
prueba Tukey, nos permiten afirmar que el
tratamiento 1 y 2 son los más óptimos para
la aclimatación, enraizamiento y desarrollo
foliar de S. ionnntlm, por lo tanto, son los
tratamientos que se recomiendan utilizar
para futuros experimentos.

Conclusión

El sustrato constituidito por arena,
musgo y humus, es el más óptimo para
la aclimatación de plántulas in vitro de S.
ionnnthn H. Wendl. (Gesneriaceae) "violeta
africana" a condiciones de invernadero.

Literatura citada

Ábdelnour, E. & E. Vincent.1994. Conceptos básicos
del cultivo de tejidos vegetales. Edit. Bib. Orton MCA
/ CATIE: Costa Rica.

Alabama A & M University & Auburn University. 2004.
Greenhouse Production of African Violets. Disponi¬
ble en: http://www.aces.edu/pubs/docs/A/ANR-
1257/ANR-1 257.pdf

Calderón, F. & F. Cevallos. 2001. Los sustratos. Dispo¬
nible en: http://www.drcalderonlabs.c om/Publica¬

ciones/Los_Sustratos.htm

Chen, J. & J. Henny. 2009. Cultural Guidelines for Com-
mercial Production of African Violets ( Saintpaulia
ionantha). Disponible en: http://edis.ifas.ufl.edu/
ep360

Díaz, L.; L. Medina; J. Latife; R Digonzelli & S. Sosa.

2004. Aclimatación de plantas micropropagadas de
“caña de azúcar” utilizando el humus de lombriz.
Rev. de Investigaciones Agropecuarias, 33 (2) :
115-128.

Domínguez, G. & M. Donayre. 2006. Aclimatación de
Uncaria tomentosa (Willd.) DC. Producida in vitro.
Rev. Ecología Aplicada, 5(1): 67-74.

Doubrava, N. & B. Polomski. 2015. African Violets.
Clemson University Cooperative Extensión Service.

sion/hgic/plants/pdf/hgicl 5 50.pdf

FAO. 2002. El Cultivo Protegido en Clima Mediterráneo.
Departamento de agricultura. Disponible en: http://
www.fao.org/docrep/005/S8630S/s8630s00.
htm#Contents

Figueroa, C.: Norma, A.; C. Valdebenito & M. Bea¬
triz. 2003. Preaclimatación in vitro de plantas de
“violeta africana” ( Saintpaulia ionantha H. Wendl.)
y su efecto sobre aclimatación. Pontificia Uni¬
versidad Católica de Valparaíso (Chile). Área de
Fruticultura. Disponible en: http://ucv.altavoz.net/
prontusunidacad/site/artic/20061214/asocfi-
le/20061214162241/figueroa_norma.pdf

García, M.; R. Quintero & A. López. 2004. Biotecnolo¬
gía alimentaria. Edit. LIMUSAS.A: México.

lowa State University. 2006. African Violets. Disponible
en: http://www.reimangardens.com /search/?cx-
= 003074495176662961374%3Addpq9jw0d-
vk&cof=F0RID%3A11 &¡e=UTF-8&q=african+v¡-
olets&sa=Search&sa=Search

Khan, S.; S. Naseeb & K. Ali. 2007. Callus induction,
plant regeneration and acclimatization of African
violet (Saintpaulia ¡onantha) using leaves as ex-
plants. Pakistán Journal of Botany, 39(4): 1263-
1268.

Latsague, M.; P. Sáez & M. Mora. 2014. Efecto de la
fertilización con nitrógeno, fósforo y potasio, so¬
bre el contenido foliar de carbohidratos, proteínas
y pigmentos fotosintéticos en plantas de Berberi-
dopsis corallina Hook. f. Rev. Gayana Bot., 71 (1):
37:42.

McCaleb, W. 2011. African Violets. Virginia Polytechnic
Institute and State University. Disponible en: https://

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 349

i plántulas in vitro de Saintpaulia ¡onantha (Gesn

pubs.ext.vt.edu/HORT/HORT-2/HORT-2.html

Monsalve, J.; R. Escobar; A. Acevedo; M. Sán¬
chez & R. Coopman. 2009. Efecto de la con¬
centración de nitrógeno sobre atributos mor¬
fológicos, potencial de crecimiento radical y
estatus nutricional en plantas de Eucalyptus
globulus producidas a raíz cubierta. Rev. BOS¬
QUE, 30(2): 88-94.

Osuna, P. & C. Saucedo. 2010. Propagación in vi-
tro de “vid” variedad Globo Rojo. Reportes téc¬
nicos de investigación. Universidad Autónoma
de Ciudad de Juárez.

Park, S. 1991. African Violets. Environmental Horticul-
ture Department of the University of Florida. Dis¬
ponible en: https://edis.ifas.ufl.edu/pdffiles/MG/
MG02800.pdf

Panicker, B.; P. Thomas & T. Janakiram. 2009. Accli-
matization and field evaluation of micropropagated
plants of chrysanthemum cv.Arka Swarna’. Rev. J.
Hortl.Sci., 4 (1): 32-35.

Petrus, A. & M. Sipos. 2010. Anatomical structure of
African violet (S. ¡onantha L.) vitro -and exvitro-
plantlets. Analele Universitatii din Oradea. Fascicula
Biologie, 17 (2): 219-224.

Ross, J. 2001. Basic Care for African violets. Dis¬
ponible en: http://avsa.org/sites/default/files /fi les/
Basic%20Care%20for%20African%20violets.pdf

Sánchez, A.; D. Saavedra & H. Mauricio 2012 Acli¬
matación y endurecimiento de materiales de palma
de aceite obtenidos mediante técnicas de cultivo de
tejidos vegetales. Rev. Palmas, 33(4): 41:52.

Sandoval, J.; G. Brenes & L. Pérez. 1991. Micro pro¬
pagación del “plátano” y “banano” {Musa AAB,
AAA) en el CATIE. Edit. Bib. Orton MCA / CATIE:
Costa Rica.

Sunpui, W. & K. Kanchanapoom. 2002. Plant re¬
gene latió n from petiole and leaf of African violet
(Saintpaulia ¡onantha H. Wendl.) cultured in vitro.
Songklanakarin J. Sci. Technol., 24(3): 357-364.

Terenti, C. & P. Verdes. 2013. Micropropagación de
Saintpaulia ¡onantha H. Wendel var. Bangle Blue.
Rev. Huayllu-Bios, 7: 25-38.

Thomas, P. 1998. Humid incubation period and plant-
let age influence acclimatization and establish-
ment of micropropagated grapes. Rev. In Vitro
Cell. Dev. Biol.-Plant, 34 (1) : 52-56. do¡:10.1007/
BF02823123

350 I ARNALDOA 2%^/Íero - Junio, 2017

Arnaldoa 24 (1): 351 - 358, 2017
http://doi.org/10.22497/arnaldoa.241.24117

ISSN: 1815-8242 (edición impresa)
ISSN: 2413-3299 (edición Online)

Efecto de los exudados radiculares de
la “higuerilla” Ricinus communis L.
(Euphorbiaceae) en la mortalidad de larvas
de Gymnetis bonplandii Schaum (Coleóptera,
Scarabaeidae)

Effect of root exudates of “castor oil plant” Ricinus
communis L. (Euphorbiaceae) on mortality of white
larvae of Gymnetis bonplandii .Schaum (Coleóptera,
Scarabaeidae)

Si

Gonzáles & Cabrera: Efe

ortalidad de larvas de Gymnetis bonplandii

-1-2017; Aceptado: 22-111-2917

Los exudados radiculares son metabolitos secundarios secretados por la raíz, que cumplen
diferentes funciones en la naturaleza. En la literatura, existe poca información sobre el efecto de estas
sustancias en la biota del suelo. En esta investigación se estudia el efecto de los exudados de cinco
ecotipos de "higuerilla" Ricimis commiinis L. (Euphorbiaceae) sobre las larvas de primer estadio
de Gymnetis bonplandii Schaum (Coleóptera, Scarabaeidae), una plaga subterránea muy común en
suelos con alto contenido de materia orgánica. Los cinco ecotipos de higuerilla fueron sembrados
en bolsas de polietileno en un diseño completo al azar con nueve repeticiones y un testigo. Dos
larvas de primer estadio provenientes de una crianza de laboratorio fueron acondicionadas enjaulas
diseñadas especialmente para confinar larvas en el suelo. A los siete días se evaluó la mortalidad
de las larvas y los datos fueron corregidos considerando la mortalidad natural con la fórmula
Schneider-Orelli, previo al ANVA y la prueba de comparación de Duncan usando el programa
SPSS. Los resultados indicaron que los cinco ecotipos tuvieron efecto letal sobre las larvas de primer
estadio de G. bonplandii Schaum y el rango de mortalidad osciló entre el 30 y 90 %, pudiendo ser
utilizados como componentes biológicos en el manejo de plagas.

Palabras clave: exudados radiculares, Ricinus commiinis, Euphorbiaceae, Gymnetis bonplandii,
Coleóptera, Scarabaeidae.

Root exudates are secondary metabolites secreted by the root, which have different functions
in nature. ln the literature. there ís little Information about the effect of these substances on

"castor oil plant" Ricinns commiinis L. (Euphorbiaceae) on the first instar larvae of Gymnetis
bonplandii Schaum (Coleóptera, Scarabaeidae), a common underground pest under high organic
matter soil. The five ecotypes of castor oil plant were planted in polyethylene bags in a random
complete design with nine replicates and a control. Two first instar larvae from laboratory rearing
were conditioned in specially designed cages to confine larvae in the soil. Data of seven-day larval
mortality was corrected considering natural mortality using Schneider-Orelli's formula prior to
ANOVA and Duncan comparison test using the SPSS statistical program. These results indícate that
the five ecotypes had lethal effect on first instar larvae of G. bonplandii Schaum and mortality ranged
between 30 and 90 %, therefore they may be used as biological components in pest management.
Keywords: root exudates, Ricinus communis, Euphorbiaceae, Gymnetis bonplandii, Coleóptera,
Scarabaeidae.

Introducción

La información de los escarabajos
Gymenetis bonplandii Schaum es muy poco
conocida (Puker et al, 2014). Esta especie
pertenece a la sub familia Cetoniinae,
son escarabajos de colores vistosos que
poseen diseños y patrones de coloración
distintivos; son de forma ovalada-alargada
y robustos (Suárez & Amat-García, 2007);
se encuentran distribuidos en las regiones
tropicales y subtropicales (Morelli, 2000).
Los adultos producen daños en frutos como
"vid" y "mango" (Gómez & Farroñan, 2015)

y las larvas, llamadas también "gallinas
ciegas", se alimentan de raíces, incluyendo
la "vid" y el "espárrago", pudiendo
adquirir importancia económica (Mondaca,
2012). El daño por estas larvas se observa
como raíces cortadas y, en casos extremos
éstas son destruidas totalmente, lo cual
afecta el crecimiento de la planta y como
consecuencia se secan y mueren (Rodríguez,
2007).

En general, las plantas producen una
gran cantidad y diversidad de compuestos
orgánicos que no parecen tener una función

352 I ARNALDOA 2%fjbliero - Junio, 2017

ArnaldoA 24(i)|:

354 I ARNALDOA 2

características del ecotipo mejorado versus
el silvestre lo que se reflejó en una mayor
mortalidad sobre las larvas.

Agradecimientos

A los estudiantes y tesistas que
trabajaron en el insectario de la Universidad
Privada Antenor Orrego (UPAO) durante el
período 2012-2013.

Literatura citada

Arboleda, F.; 0. Guzmán & J. Restrepo. 2010. Efecto
in mtro de extractos acuosos de “higuerilla” {Rici-
nus communis L.) sobre el nemátodo barrenador
[Radopholus similis (Coob) Thorrne)). Agronomía
(Manizales). 18(2): 25-36.

Bais, H.; T. Weir; L. Perry; S. Gilroy & J. Vivanco.

2006. The role of root exudates in Rhizosphere In-
teractions with plants and other organism. Annual
Review of Plant Biology. 57:233-66.

Blossey, B. & T. Hunt. 2003. Belowground herbivory by
insect: influence on plants and aboveground herbi-
vores. Annual Review Entomology.48:521-47.
Canuto, J. 1998. Agricultura Ecológica en Brasil. Tesis
de Doctorado. Universidad de Córdoba, España.
254pp.

Gnanamanickam, S. 2007. Plant-Associated Bacteria.

Springer Press, Dordrecht, Netherlands.712 pp.
Gómez, E. & F. Farroñan. 2015. Ciclo biológico de
Gymnetis sp. (Coleóptera: Scarabaeidae) y valora¬
ción de las estrategias para su manejo, en el cultivo
de “vid” en Lambayeque. Empresa Agrícola San
Juan S. A. Tesis de Grado. Facultada de Agronomía.
Universidad Nacional Pedro Ruíz Gallo. Lambaye¬
que. Perú. 139 pp.

Gonzáles, A. 2013. Efecto de los exudados radicualres
de la “higuerilla” Ricinus communis en la sobrevi¬
vencia de larvas de Gymnetis sp. (Coleóptera Sca¬
rabaeidae). Tesis. Facultad de Ciencias Agrarias.
Universidad Privada Antenor Orrego. Trujillo. Perú.
124 pp.

Morelli, E. 2000. Descripción de la larva y la pupa de
Paragymnetis chalcipes (Gory & Percheron, 1833)
(Coleóptera, Scarabaeidae, Cetoniinae). Acta Zool.
Mex.80:155-165.

Mondaca, J. 2012. Paranomala undulata peruviana
(Scarabaeidae: Rutelinae): Un nuevo escarabajo
exótico introducido en Chile. Revista Chilena de

Entomología. 37: 75-80.

Nóbrega, F.; I. Santos; M. Cunha; A. Carvalho & V.
Gomes. 2005. Antimicrobial proteins from cowpea
root exudates: inhibitory activity against Fusari-
um oxysporum and purification of a chitinase-like
protein. Plant and Solí. 272: 223-232.

Oliveros, A.; F. Maclas; C. Carrera; D. Martin & J. Mo¬
linillo. 2009. Exudados de la raíz y su relevancia
actual en la interacciones alelopáticas. Química
Novoa.32 (1): 198-213.

Puker, A.; H. Ad’vincula; V. Korasaki; F. Ferreira & J.
Orozco. 2014. Biodiversity of Cetoniinae Beetles
(Coleóptera: Scarabaeidae) inintroduced and native
habitats In the Brazilian Atlantic forest. Entomológi¬
ca! Science. 17(3): 309-315.

Rodríguez, C. 2007. Sistematización de las Experien¬
cias en el Manejo de la “gallina ciega” Phyllopha-
ga spp., (Coleóptera: Scarabaeidae), en el cultivo
de “Esparrago” ( Asparagus officinalis L.), en la
agroexportadora Agrícola Agroverde, S. A.Tesis de
Grado. Facultad de Agronomía, Universidad de San
Carlos de Guatemala, Guatemala.45 pp.

Sakure, A.; H. Dhaduk & D. Mehta. 2012. Castor bean
(Ricinus communis L.): Morphological Genetic D¡-
versity.Lambert Academic Publishing. 52pp.

Suárez, M. & G. Amat-García. 2007. Lista de espe¬
cies de los escarabajos fruteros (Melolonthidae:
Cetoniinae) de Colombia. Biota Colombiana. 8(1):
69-76.

Taiz, L. & E. Zeiger. 2006. Fisiología Vegetal. Publica-
cions de la Univerisat Jaume I, Castellón de la Pla¬
na, España.1338 pp.

Thelen, G.: J. Vivanco; B. Newingham; W. Good; H.
Bais; R Landres; A. Caesar & R. Callaway. 2005.
Insect herbivory stimulates allelopathic exudation
by an invasive plantand the suppression of natives.
Ecology Letters.8 (2): 209-217.

Valverde, I; J. Meave; J. Carabias & Z. Cano-San-
tana. 2005. Ecología y medio ambiente. Pearson
Educación, Naucalpan de Juárez, México. 240 pp.

Vinueza, S.; R. Crozzoli & G. Perichi. 2006. Evalua¬
ción in vitro de extractos acuosos de plantas para el
control del nemátodo agallador Me/o/c/o^y/ze incóg¬
nita. Fitopatología Venezolana 19 (2): 26-31.

Yuxiang, W.; F. Weiping; Z. Shuijin; J. Kuiying & J.
Daofan. 2008. The effects of cotton root exudates
on the growth and development of Verticillium dahl-
ia. Frontiers of Agriculture in China 2 (4): 435-440.

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 355

Gonzáles & Cabrera: Efe

ortalidad de larvas de Gymnetis bonplandii

ANEXOS

Fig. 1. Diseño c

Base inferior

T2R1

T3R7

T5R1

T2R3

T1R9

T5R5

T2R7

Testigo

T4R5

T3R5

T4R8

T3R6

T1R3

T2R4

T5R2

T1R1

T5R8

T1R7

T3R9

T3R3

Testigo

T2R9

T2R6

T1R4

T4R6

T2R8

T5R7

T4R7

Testigo

TIRÓ

T4R1

T5R4

T1R8

T4R3

T2R5

T4R2

Testigo

T3R4

T5R6

Testigo

356 I ARNALDOA 2%fjt ; liero - Junio, 2017

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 357

Gonzáles & Cabrera: Efe

5 exudados radiculares de Ricinus t

ortalldad de larvas de Gymnetis bonplandii

Schneider-Orelli. j ? ( P - ) g

Tratamiento % Mortalidad

Ecotipo 4

87,85 ± 0,32 %

Ecotipo 3

75,70 ± 0,43 %

Ecotipo 2

69,62 ± 0,46 %

Ecotipo 1

27,08 ± 0,49 %

Ecotipo 5

21,01 ±0,46%

Testigo

8,86 ±0,38%

Ecotipo

Peso (gramos) ± D.E

Ecotipo 4

0,19 ±0,09

a

Ecotipo 3

0,19 ±0,16

a

Ecotipo 2

0jf‘*0,10

ba

Ecotipo 1

0,03 ± 0,04

b

Ecotipo 5

0,04 ± 0,07

b

358 I ARNALDOA 2%fjt ; liero - Junio, 2017

Arnaldoa 24 (1): 359 - 368, 2017
http://doi.org/10.22497/arnaldoa.241.241]

ISSN: 1815-8242 (edición impresa)
ISSN: 2413-3299 (edición Online)

Principales plagas y controladores biológicos
de Gossypium hirsutum L. “algodón nativo” de
fibra verde en relación a su ciclo fenológico

Principal plagues and beneficial insects of Gossypium
hirsutum L. “native cotton” of green fiber in relation
to its phenological cycle

Gil & López: Principales plagas 5

El cultivo de algodón se ve afectado por un gran número de plagas, muchas de las cuales
presentan eficientes controladores que regulan el equilibrio biológico. A pesar de que en Perú
existen variedades nativas de algodón que producen fibras de color, se desconocen las principales
plagas y controladores de este cultivo. Por ello, se decidió tomarlo como objetivo de investigación.
Las muestras biológicas procedieron de una parcela demostrativa, localizada en la campiña La
Merced-Laredo, mientras que la identificación se realizó en el Laboratorio de Entomología de
la Universidad Nacional de Trujillo. Los principales insectos plaga identificados fueron: Bemisia
tabaci, Aphis gossypii, Liriomyza huidobrensis, Bucculatrix thurberiella, Heliothis virescens, Pectinophora
gossypiella, Dysdercus peruvianus, Tetranychus sp., Phenacoccus gossypii y Ceroplastes floridensis.
Mientras que los principales controladores biológicos identificados fueron: Aphidius sp., Zelus nugax,
Harmonía axyridis, Chrysoperla externa, Condylostylns sp., Lissonota sp., Ceraeochrysa cincta, Clieilomes
sexmaculata, Metacanthus tenellus y Neda ostrina. Se concluye que el "algodón nativo" de fibra verde
posee una rica entomofauna de plagas y de controladores biológicos.

Palabras clave: plagas, controladores biológicos, algodón nativo, fibra verde, ciclo fenológico.

Cotton crops are affected by numerous plagues, which mostly have biological controllers that
regúlate the balance. Although in Perú there are native cotton varieties that produce colored fibers,
we don't know their main plagues and biological controllers. Therefore, this was taken as research
objective. Biological samples were obtained from the demonstration plot located in La Merced-

at the National University of Trujillo. The plagues were: Bemisia tabaci, Aphis gossypii, Liriomyza
huidobrensis, Bnccidatrix thurberiella, Heliothis virescens, Pectinophora gossypiella, Dysdercus peruvianus,
Tetranychus sp., Plienacoccus gossypii and Ceroplastes floridensis. While the main beneficial insects
were: Aphidius sp., Zelus nugax, Harmonía axyridis, Chrysoperla externa, Condylostylus sp., Lissonota
sp., Ceraeochrysa cincta, Cheilomes sexmaculata, Metacanthus tenellus and Neda ostrina. It is concluded
that the native cotton of green fiber has a rich insect fauna of plagues and biological pest controllers.
Keywords: plagues, beneficial insects, native cotton, green fiber, phenological cycle.

Introducción

El cultivo de algodón en el Perú necesita
de un clima árido y cálido ya que las
temperaturas entre 20°C a 30°C favorecen su
crecimiento. El manejo agronómico busca
incrementar la productividad. Siendo de
mucha importancia los estudios sobre las
principales plagas y controladores en
relación a su ciclo fenológico (Veramendi &
Lam, 2011; Drganc et ni., 2000; Ministerio de
Agricultura del Perú, 2012).

La fenología tiene como finalidad
estudiar y describir de manera integral
los diferentes eventos fenológicos que se
dan en las especies vegetales dentro de

ecosistemas naturales o agrícolas en su
interacción con el medio ambiente. Por lo
general el, ciclo fenológico del "algodón"
se divide en 3 etapas: 1) Fase vegetativa, 2)
Fase reproductiva y 3) Fase de maduración.
Por otro lado, reportes afirman la existencia
de algodones nativos de fibra de color, entre
ellos: 1) G. barbadense con el tono blanco,
crema, lila, pardo y marrón rojizo. 2) G.
hirsutum, de fibra de color verde (Bonacic et
ni, 2010; Vásquez & Vásquez, 2012; MINAG
y SENAMHI, 2012).

El cultivo del algodón se ve afectado
por un gran número de plagas, entre ellas
tenemos: Bemisia tabaci, Aphis gossypii,

360 I ARNALDOA 24fjbliero - Junio, 2017

362 I ARNALDOA 2%fjt ; liero - Junio, 2017

Gil & López: Principales plagas y contro

> biológicos de Gossypium hirsutumáe fibra >

verde en relación a su ciclo fenológico

Fig. 2. Principales controladores biológicos de Gossypium hirsutum L. "algodón nativo" de
fibra de color verde. A. Harmonía axyridis; B. Zeliis nugax; C. Chrysoperla externa-, D. Larva de
Ceraeodmjsa chu ta-, E. Condylostylus sp.; F. Momias parasitadas de Aphidius sp.; G. Lissonota sp.;
H. Cheilomes sexmacúlala; I. Neda ostrina.

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 363

Gil & López: Principales plagas 5

Resultados y discusión

La tabla 1 resume las principales plagas
y controladores biológicos encontrados en
la campiña La Merced-Laredo de Gossypium
hirsutum L. "algodón nativo" de fibra de
color verde. Mientras que las Fig. 1 y Fig. 2
las ilustran.

De los datos obtenidos, la tabla 1 muestra
que son dos los áfidios (Bemisia tnbaci y Aphis
gossypii) los que prevalecen durante todo el
ciclo fenológico del "algodón nativo" de
fibra verde. Investigaciones afirman que
infestaciones bajas de estos áfidos no causan
daños, al contrario, sirven de alimento a
numerosas especies de depredadores.

los cuales aumentan su población. Para
Aphis gossypii se pudo identificar a Aphidius
sp. (Fig. 2-F), como un eficiente parasitoide
controlador. Investigadores coinciden en
afirmar su eficiencia en el parasitismo de
pulgones (Veramendi & Lam, 2011; Navarro
etal, 2010).

Liriomyza huidobrensis (Fig. 1-B) se
comportó como una plaga de menor
incidencia, pues se presentó de forma
aislada. No llegándose a observar daños
severos como la reducción del área foliar
y la caída prematura de las hojas. Para esta
plaga no se identificó controlador alguno.
Otros investigadores reportan la eficiencia
de Chrysonotomyin farinosa como parasitoide

364 I ARNALDOA 2%^Íero-Junio,;

Gil & López: Principales plagas y contro

> biológicos de Gossypium hirsutumáe fibra >

verde en relación a su ciclo fenológico

de esta plaga (Cabello et al, 1994).

Reportes afirman que Bucculatrix
thurberiella es una plaga que ocupa un
lugar preponderante en la costa norte. La
Fig. 1-C es evidencia del severo daño que
ocasiona al consumir el tejido epidérmico
y mesófilo. Estudios demuestran que de
todo su ciclo biológico, el quinto estadio
larval es el más perjudicial por su gran
voracidad. A pesar de esta realidad, la Fig.
2-B y C muestra a Zelus nugax y Chrysoperla
sp. como controladores que regulan la
incidencia de esta plaga (Veramendi & Lam,
2011; Herrera & García, 1978).

Por otro lado, H. virescens es
considerada como plaga potencial en las
zonas algodoneras del Perú. La Fig. 1-G,
corrobora el que se le denomine como el
perforador mayor de la bellota, pues causa
una notable reducción del rendimiento ante
el incremento de su población. Estudios
sostienen que mayores temperaturas
favorecen el recorte de su ciclo biológico.
Se identificó a Metacanthus tendías, Zdns
nugax, Chrysoperla externa como principales
controladores biológicos. Otros estudios
reconocen la eficiencia de predadores
como: Orius insidiosus, Podisus sp. y Geocoris
punctipes (Pérez & Suris, 2012; Narrea, 2012;
Sarmiento, 1982).

La tabla 1 muestra que D. peruvianus
y P. gossypiella persistieron durante la
fase reproductiva y de maduración del
algodonero. Su elevada incidencia de ambos
insectos plagas, se debió en parte a la
carencia de efectivos controladores. Por
ello, un reciente estudio sobre las plagas del
algodonero del valle del Santa (Ancash),
considera que ambas plagas son las más
importantes de este cultivo. La Fig. 1-E,
ilustra el daño que ocasiona D. peruvianus al
picar y chupar las semillas para obtener
aceite. Por otra parte, se evidenció que

ocasionó la apertura prematura de bellotas
chicas, favoreciendo el aborto masivo de
estas. Estudios confirman que esta plaga
ocasiona la detención del crecimiento de
la bellota, manchan las fibras y ocasionan
su aborto solo cuando son pequeñas
(Vásquez, 2004; Combe & Moreno, 1961).

Por otra lado, se identificaron otras plagas
de menor incidencia. Ej.: Tetranychus sp.,
Phenacoccus gossypii, Ceroplastes floridensis.
Las cuales se evidenciaron durante la
fase de maduración, donde se hace recorte
de agua para favorecer la dehiscencia de
las bellotas. Reportes afirman que los
períodos calurosos, desbalance nutricional
de la planta, estrés hídrico y la aplicación
de insecticidas favorecen la incidencia de
estas plagas (Sarmiento, 1982; Bonacic et al,
2010).

Conclusión

Entre las principales plagas de
Gossypium hirsuta ni L. "algodón nativo" de
fibra de color verde en relación a su ciclo
fenológico tenemos a: Bemisia tabaci, Aphis
gossypii, Liriomyza huidobrensis, Bucculatrix
thurberiella, Heliothis virescens, Pectinophora
gossypiella, Dysdercus peruvianus, Tetranychus
sp., Phenacoccus gossypii y Ceroplastes
floridensis.

Mientras que los principales
controladores biológicos son: Aphidius sp.,
Zelus nugax. Harmonía axyridis, Chrysoperla
externa, Condylostylus sp., Lissonota sp.,
Ceraeochrysa cincta, Cheilomes sexmaculata,
Metacanflms tenellus y Neda ostrina.

Literatura citada

Bonacic, I.; M. Fogar; G. Guevara & M. Simonella.

2010. Algodón. Manual de campo. Disponible en:
http://rian.inta.gov.ar/agronomia/Manual_Algodon.
pdf

Cabello, I; R. Jaimez & F. Pascual. 1994. Distribución
espacial y temporal de Liriomyza spp. y sus

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 365

Gil & López: Principales plagas 5

parasitoides en cultivos hortícolas en invernaderos
del sur de España (Dip.,Agromyzidae). Rev Bol.
San. Veg. Plagas, 20(1): 445-455.

Combe, I. & G. Moreno.1961.Estudios sobre el control
del Arrebiatado {Dysdercusperuvianus Guerín) me¬
diante cebos envenenados en el valle de Chira. Te¬
sis de grado. Universidad Agraria La Molina, Perú.

Drganc, D.: F. Costa; A. Corrales; C. Venialgo & N.
Gutiérrez .2000. Fases fenológicas de cultivares
de “Algodón” en siembra convencional y surco
ultra angosto. Universidad Nacional del Nordeste-
Argentina.

Herrera, J. 1987. Importancia del control Biológico en
el cultivo del algodonero. Revista Peruana de Ento¬
mología, 30(1):25-28.

Herrera, J. & R. García. 1978. Biología y comporta¬
miento de Bucculatrix thurberiella Busck (Lepi-
doptera: Lyonetiidae). Revista Peruana de Entomo¬
logía, 21 (1): 97-102.

Instituto Interamericano de Cooperación para la
Agricultura -IICA.1995. Manejo Integrado de
Plagas. Editorial: Bib. Orton MCA / CATIE. Bogotá.
Colombia.161 pp. Disponible en: https://books.
google.com.pe/books?id=K9cOAQAAIAAJ&hl=es
&source=gbs _ navlinkss

Ministerio de Agricultura del Perú. 2012. Principales
aspectos de la cadena agroproductiva del “algo¬
dón”. Disponible en: http://agroaldia.minag.gob.pe/
biblioteca/download/pdf/agroecono mia/ agroeco-
nomiaalgodon3.pdf

Ministerio de Agricultura (MINAG) & Servicio Nacio¬
nal de Meteorología del Perú (SENAMHI). 2012.
Manual de observaciones fenológicas. Disponible
en: http: //www.senam hi.gob.pe/pdf/estudios/ma-
nual_fenologico.pdf

Navarro, R.; M. Gutiérrez; N. Alfonzo & L. Piñan-

go.2010. Cultivo del “algodón” en las zonas de
vega del río Orinoco y sus afluentes. Editorial
Taller de Artes Gráficas del INIA S.A. Aragua. Ve¬
nezuela.

Narrea, M. 2012.Manejo Integrado de Plagas en el
cultivo de “Alcachofa”. 20 pp. Disponible en:
http://www.agrobanco.com.pe/data/uploads/
ctecnica/003-a-alcachofa.pdf.

Pérez, J. & M. Suris. 2012. Ciclo de vida y reproduc¬
ción de H. virescens (F.) (Lepidoptera: Noctuidae)
sobre “garbanzo”. Revista Protección Vegetal 27
(2): 85-89.

la Universidad Agraria La Molina: Perú.

Veramendi, T. & S. Lam. 2011. Guía Técnica: Manejo
Integrado de plagas del algodonero. Universidad
Nacional Agraria La Molina.

Vásquez, L. & L. Vásquez. 2012. Caracterización mor-
fotaxonómica y fenología del algodón de color
{G.barbadense L.). Revista Ciencia, Tecnología y
Humanidades, 3(2): 64-83.

Vásquez, J. 2004.Propuesta de manejo integrado de
plagas del algodonero en el valle del Santa, Ancash,
Perú. Revista Peruana de Entomología, 44(1 ):119-
124.

366 I ARNALDOA 2 %^/Íero - Junio, 2017

Gil & López: Principales plagas y contro

> biológicos de Gossypium hirsutumáe fibra >

verde en relación a su ciclo fenológico

ANEXOS

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 367

Gil & López: Principales plagas y controladores biológicos de Gossypium hirsutum de fibra verde en relación a su ciclo fenológico

368 I ARNALDOA

Arnaldoa 24 (1): 369 - 382, 2017
http://doi.org/10.22497/arnaldoa.241.241]

ISSN: 1815-8242 (edición impresa)
ISSN: 2413-3299 (edición Online)

Diversidad fenotípica de la cianobacteria
Pseudophormidium tenue (Oscillatoriales,
Microcoleaceae), nuevo reporte para el Perú

Phenotypic diversity of the cyanobacterium Pseudo¬
phormidium tenue (Oscillatoriales, Microcoleaceae),
new record for Perú

Haydee Montoya T., José Gómez C., Mauro Mariano A., EnocJaraP.,
Egma Mayta H., Mario Benavente P.

Museo de Historia Natural, Departamento de Simbiosis Vegetal, UNMSM. Av. Arenales 1256.
Apartado 14-0434. Lima 14, PERÚ.

Instituto de Investigación de Ciencias Biológicas, Facultad de CC. Biológicas, UNMSM
haydmon@yahoo.com, jgomezc@unmsm.edu. pe, mmarianoa@unmsm.edu. pe
ejarap@gmail.com

Este es un artículo de £

ARNALDOA 24 (1): Enero - Junio, 2017 I 369
i licencia CC BY-NC 4.0: https://creativecommons.Org/Hcenses/by-nc/4.0/

Montoya etal:. Diversidad fenotípica de la cianobacteria Pseudophormidium tenue (Oscillatoriales, Microcoleaceae), nuevo reporte para
Recibido: 20-1-2017; Aceptado: 15-111-2017; Publicado: VI-2017; Edición online: 05-VI-2017

Resumen

Los ecosistemas desérticos costeros tropicales están distribuidos ampliamente en el oeste
de Sudamérica. No obstante las tierras áridas de esta región, la disponibilidad hídrica de la
humedad proveniente de las neblinas a nivel del océano Pacífico acarreadas hacia las colinas
(lomas) y las garúas anuales invernales fluctuantes favorecen el desarrollo de comunidades
cianobacteriales extremas. El área de evaluación fue las Lomas de Pachacámac, al sur de
Lima, y las colecciones cianobacteriales estándar (costras, biofilms o matas terrestres) fueron
realizadas irregularmente en 1995 y 2012. Cultivos cianobacteriales en medios BBM y N8
produjeron el crecimiento poblacional de Pseudophormidium tenue Anagnostidis & Komárek
con diversos morfotipos que colonizan los desiertos costeros. Esta especie, nuevo registro
para nuestro país, fue parte de la estructura de los biofilms principalmente y fue reasignada
a los taxones presentes según el enfoque polifásico establecido. La plasticidad fenotípica de
P. tenue con la formación de morfotipos está relacionada con las estrategias de vida como las
ramificaciones de sus talos con formación de estuche notorio bajo condiciones de estrés para
una colonización exitosa.

Palabras clave: biofilms, cianobacteria, cultivos, morfotipos.

Tropical Coastal desert ecosystems are widely distributed in the west of South America.
In spite of the arid lands, the water availability from the wet sea fog drifted from the
Pacific Ocean to Coastal hills (lomas) and the annual winter fluctuating drizzles favor the
development of extreme cyanobacterial communities. The evaluated area was located
in Pachacamac lomas, south of Lima, and the standard cyanobacterial collections (crusts,
biofilms or terrestrial mats) were carried out irregularly in 1995 and 2012. Cyanobacterial
cultures in BBM and N8 media generated the population growth of Pseudophormidium tenue
Anagnostidis & Komárek with diverse morphotypes. This species, new record for our
country, was part of the biofilm structure mainly and it was reassigned to the present taxa
according to the polyphasic approach already established. Phenotypic plasticity of P. tenue
with morphotypes formation is related to its life strategies such as its thalli ramifications with
a notorious sheath formation under stress conditions for successful colonization.

Keywords: biofilms, cyanobacteria, culture, morphotypes.

Introducción

Las cianobacterias comprende a los
procariontes fotosintéticos oxigénicos de
distribución extensa y gran diversidad de
formas morfoecológicas. Existen evidencias
de que las cianobacterias constituyen los
ancestros de eucariontes fotosintéticos
basados en la evolución de los cloroplastos
(eventos de endosimbiosis). Diferentes

especies y cepas cianobacteriales con
fenotipos diferentes han sido exploradas
demostrando la base molecular relacionada
con su ecofisiología y la convergencia de las
morfologías complejas como transiciones
evolutivas (Stanier & Cohen-Bazire 1977;
Komárek 2006; Tomitani et al. 2006).

El florecimiento de comunidades
cianobacteriales en los desiertos costeros

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Montoya etaL Diversidad fenotípica de la cianobacteria Pseudophormidium tenue (Oscillatoriales, Micrc

para el Perú

de establecer cultivos unicianobacteriales
(clónales) mediante la técnica de aislamien¬
to por plaqueo que requiere que los medios
de cultivo seleccionados sean agarizado
(1.5%) y autoclavados a 121°C y 15 libras
por 15 minutos. El periodo de transferencia
de los subcultivos en medio líquido fue rea¬
lizado en base a su crecimiento y formas de
vida obtenidos (Guillard 1975).

Los datos morfométricos de la especie
cianobacterial aislada fueron obtenidos bajo
magnificaciones de 400x y lOOOx usando
un microscopio compuesto Nikon con una
cámara incorporada para microfotografías.
La identificación de las especies fue
realizada mediante consulta bibliográfica
especializada (Geitler 1932; Anagnostidis &
Komárek 1988; Komárek & Anagnostidis
2005; Komárek & Hauer 2015).

Resultados

Comunidades cianobacteriales

Las comunidades cianobacteriales
que forman biofilms, biodermas o costras
heterogéneas y complejas sobre sustrato
rocoso y suelo se presentaron fuertemente
adheridas y resistentes a las disturbancias
causadas por la sequía y fuerza del viento
en las lomas. La colonización cianobacterial
florece formando biofilms de contorno
ondulado, textura gelatinosa o coriácea,
de diversas tonalidades parduzcas como
pardo amarillento, pardo verdoso ó pardo
negruzco. Los biofilms formados por capas
o estratos de filamentos cianobacteriales de
diferente espesor, generalmente alcanzaron
hasta 5 mm de espesor. Pseudophormidium
tenue forma estratos coriáceos o gelatinosos,
pardo dorados coexistiendo con Pleurocnpsn
entoplnjsnloides, Microcoleus vaginatus, Nostoc
comnntnc, Scytonemn spp. y Leptolyngbya sp.

Posición taxonómica de la cianobacteria
Pseiidophortnidiiim tenue

Pseudophormidium tenue Cyanoprokaryota
(Cyanophyta/ Cyanobacteria filamentosa)
tiene la siguiente posición taxonómica
(Komárek et al. 2014):

Clase: Cyanophyceae

Subclase: Oscillatoriophycidae
Orden: Oscillatoriales

Lamilia: Microcoleaceae

Género: Pseudophormidium (Lorti)

Anagnostidis et Komárek
Especie: Pseudophormidium tenue

Anagnostidis & Komárek

Caracterización de los morfotipos de
Pseudophormidium tenue

Pseudophormidium con la especie P. tenue
constituye el primer reporte para nuestra
flora cianobacterial peruana como integrante
de los biofilms desérticos costeros. La
evaluación fenotípica, con la caracterización
de los biofilms de P. tenue mediante sus
morfotipos con formas transicionales
fenotípicas, evidenció variaciones
intraespecíficas en ambos medios de
cultivos. Aplicando la revisión del sistema
taxonómico de las Oscillatoriales que
considera la morfología, distribución de
los tilacoides y el tipo de división celular se
asignaron las categorías taxonómicas a la
especie Pseudophormidium tenue (Komárek
& Anagnostidis 2005; Komárek et al. 2014).

Los talos formados por filamentos
aislados o entrelazados formando
agregados densos, erguidos o expandidos
y ondulados llegaron a constituir masas o
penachos azul verdes o verde oscuros (Ligs.
1 - 2). Los filamentos jóvenes uniseriados.

372 I ARNALDOA 2%^Íero-Junio,;

ArnaldoA 24(i)|:

ArnaldoA 24(1 i;

Montoya etal.\ Diversidad fenotípica de la cianobacteria Pseudophormidium tenue (Oscillatoriales, f

e), nuevo reporte p

intergenérico de ramificación falsa (Gomont
1892; Fremy 1934). Sin embargo, de acuerdo
a la clasificación de los cianoprocariotas
empleando el enfoque polifásico Plectonemn
pertenece a las Oscillatoriaceae (Komárek
et al. 2014).

De las numerosas especies de Plectonemn
consideradas por Geitler (1932) varias han
sido transferidas a otros géneros. De esta
forma, las especies delgadas de Plectonemn,
con células largas y ramas falsas raras fueron
transferidas a los géneros Leptolyngbyn,
Pseudophormidium y Pseudoscytonemn.
El género Pseudophormidium (Forti)
Anagnostidis et Komárek, con la
especie tipo P. phormidioides y con 12
especies reconocidas, fue originalmente
registrado perteneciente a una sección de
Plectonemn. Posteriormente, las especies de
Plectonemn sin células discoidales típicas
y ramificaciones falsas comunes fueron
transferidas al género Pseudophormidium
según Anagnostidis & Komárek (1988).

Las dimensiones de nuestra especie
están relacionadas con las citadas para
Pseudophormidium tenue (Thuret ex Gomont)
Anagnostidis et Komárek, con células
vegetativas entre (4)-5-10 (16.6) um de
diámetro quedando la especie Plectonemn
tenue Thuret ex Gomont como basiónimo.
Los reportes para la especie Plectonemn
tenue señalan dimensiones celulares entre
(5) 6 -10 um de diámetro y de 2 - 6 um de
longitud (Geitler 1932).

La familia Phormidiaceae del orden
Oscillatoriales incluye filamentos uni-
seriados entre 1.5 y 14 um de diámetro, con
estuche facultativo y ramificación falsa rara
o carente. La ultraestructura de los tricomas
también demostró la distribución radial de
los tilacoides en las Phormidiaceae. Entre

los géneros que pertenecen a esta familia
tenemos a Phorniidium, Pseudophormidium,
Plnnktothrix, Porphyrosiphon, Symplocn,
Microcoleus entre otros (Anagnostidis
& Komárek 1988). Sin embargo, la
evaluación fenotípica, ultraestructural
(distribución parietal de tilacoides) y
molecular permitió la creación de un nuevo
género cianobacterial como Phormidesmis
(Pseudanabaenaceae) a partir del complejo
de especies de Phorniidium (Komárek et al.
2009).

Komárek & Anagnostidis (2005)
establecieron diferencias entre Pseudo-
phormidium y Phorniidium con la presencia
de ramificaciones falsas comunes
obligatorias en Pseudophormidium. El género
Phorniidium, con tricomas cilindricos, sin
ramas falsas, ligeramentre constrictos o no,
de estuche facultativo, sin aerotopos, de
(1.8) 11 (15) um de diámetro y célula

apical variable, aguda o redondeada, con o
sin caliptra, es avalado por investigaciones
ultraestructurales, moleculares y feno-
típicas.

En la revisión del orden Oscillatoriales,
Anagnostidis & Komárek (1988) crearon el
género Leptolyngbyn (Pseudanabaenaceae)
que aun tiene un estado taxonómico
problemático por su heterogeneidad y
naturaleza polifilética. En cultivos de
Pseudophormidium tenue los filamentos
jóvenes (2 meses) simples fueron similares
a los géneros Leptolyngbyn ó Lyngbyn. En las
Pseudanabaenaceae, la distribución parietal
de los tilacoides es un carácter estable al igual
que en las Leptolyngbyaceae pertenecientes
a las Synechococcales (Komárek et al.
2014). Sin embargo, en algunas especies
de Plectonemn la presencia de los tilacoides
distribuidos en forma paralela en capas (2-
3) permitieron su transferencia al género

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 375

Montoya etaL Diversidad fenotípica de la cianobacteria Pseudophormidium tenue (Oscillatoriales, Microcoleaceae), nuevo reporte para

Leptolyngbyn.. Katz et al. (1979) hallaron en
Plectonemn borynnum de 2 a 3 tilacoides y
posteriormente la especie fue transferida
a Leptolyngbyn borynnn. La re-evaluación
morfológica, ultraestructural y los análisis
filogenéticos avalaron la heterogeneidad
del género Leptolyngbyn que permitió
la separación taxonómica del genero
Nodosilinen (Pseudanabaenaceae) según
Perkerson et al. (2011) y Stoyanov et al.
(2014).

Las investigaciones sobre la clasificación
taxonómica de las cianoprocariotes
con enfoque polifásico han sido re¬
estructurados y creado familias nuevas. Las
Microcolaceae, familia de las Oscillatoriales
con distribución radial de los tilacoides
incluye a Pseudophormidium. Muy pocas
especies de este género se han evaluado en
forma molecular por lo cual no existe datos
genéticos para la especie tipo. Posiblemente
varios representantes requieran asignarse
a las Pseudanabaenaceae (ausencia de
estuche y filamentos regulares) o a las
Leptolyngbyaceae (filamentos simples con
estuche). (Casamatta et al. 2005; Komárek et
al. 2014).

Leptolyngbyn es reconocida como un
grupo heterogéneo de especies de
filamentos finos o delgados (0.5 a 3.5 um
de diámetro) con diversas morfoespecies.
Los tricomas cilindricos isopolares
de Leptolyngbyn son generalmente no
atenuados en los extremos, de células más
bien isodiamétricas o cilindricas largas (2-3
veces más largas que anchas), más o menos
constrictas con tilacoides parietales (2-7),
estuche fino, hialino facultativo y célula
apical sin caliptra. Albertano & Kovacik
(1994) evaluaron la heterogeneidad
del genero Leptolyngbyn, y de las 65
descripciones (considerando la presencia

de estuche, ramificación falsa, forma celular
y constriciones celulares) demostraron que
16 cepas que exhibieron ramificaciones
falsas pertenecieron a diferentes especies
de Plectonemn. Otros géneros Oscillatoriales
como Lyngbyn, Plectonemn, Pliormidium
y Leptolyngbyn que tienen posición
filogenética problemática requieren una re¬
evaluación según Stoyanov et al. (2014).

En las Oscillatoriales, los procariontes
filamentosos problemáticos como el grupo
LPP-B fueron descritos por Rippka et
al. (1979). Este grupo incluyó a Lyngbyn,
Pliormidium y Plectonemn con filamentos
hasta 3 um de diámetro. Leptolyngbyn
siendo más bien de tricomas delgados (0.5-
3.5 um de diámetro) comprende varias
especies de los géneros tradicionales
Lyngbyn, Pliormidium y Plectonemn. Debido
a que Leptolyngbyn (LPP- grupo B) presenta
ramificación falsa facultativa, este carácter
fue asignado con valor específico o
subespecífico (Stam 1978). La clasificación
intragenérica es difícil por la posición
filogenética controversial entre otras
especies cianobacteriales del grupo LPP.
Las pruebas moleculares de este género
(Leptolyngbyn) demostraron su separación
de los géneros polifiléticos Phormidium y
Lyngbyn. (Taton et al.2003).

En el futuro los estudios taxonómicos
cianobacteriales posiblemente requieran
nuevos criterios de evaluación con la
combinación de caracteres moleculares y
morfológicos para la identificación correcta.
En la mayoría de casos, los agrupamientos
(clusters) basados en secuencias génicas (16S
rRNA) corresponden a géneros tradicionales
morfológicamente caracterizados (Palinska
et al. 1996; Komárek 2006).

376 I ARNALDOA 2%^Íero-Junio,;

Montoya etal.\ Diversidad fenotípica de la cianobacteria Pseudophormidium tenue (Oscillatoriales, f

e), nuevo reporte p

Los patrones de variación fenotípica en
las poblaciones cianobacteriales terrestres
son generados en parte mediante las
respuestas plásticas que pueden moldear
sus morfotipos. La plasticidad fenotípica de
P. tenue responde a las diferentes demandas
ecológicas, su aclimatación, adaptación y
estrategias evolutivas (selección) por ser
un taxa especializado (ecotipo) en hábitats
extremos. La variabilidad fenotípica de P.
tenue evidenció la plasticidad (grados) de su
desarrollo que favorece su reproducción y
sobrevivencia con colonizaciones extensivas
de sus comunidades cianobacteriales vitales
en el funcionamiento y sucesión de los
desiertos cálidos costeros.

Literatura Citada

Anagnostidis, K. & Komárek, J. 1988. Modern
approach to the classification system
of Cyanophytes. 3.0scillatoriales. Archiv
Hydrobiologie Supplement 80. Stuttgart, 1 -
4:327-472.

Albertano R & Kovacik, L. 1994. Is the genus Leptol-
yngbya (Cyanophyte) a homogeneous taxón? Algo-
logical Studies. 75:37-51.

Belnap, J. & Lange, 0. 2001. Biological soil crusts:
structure,function, management. Springer. Berlín.
503 p.

Boyer, S„ Johansen, J„ Flechtner.V. & Howard G. 2002.
Phylogeny and genetic variance in terrestrial

Microcoleus (Cyanophyceae) species based on se-
quence analysis of the 16S rRNA gene and associat-
ed 16S- 23S US región. J. Phycol. 38:1222-1235.

Casamatta, D., Johansen, J., Vis, M. & Broadwater,

S. 2005. Molecular and morphological
characterization of ten polar and near-polar strains
within the Oscillatoriales (Cyanobacteria). J. Phy-
Ljol. 41:421-438.

Fogg, G. E. 1988. The flexibility and variety of
algal metabolism. In Biochemistry of the

Algae and Cyanobacteria. L.J. Rogers & J.R. Gallón

(eds.). 3-12p. Clarendon Press-Oxford. England.

Fremy, P. 1934. Les Cyanophycées des Cotes
d’Europe. Mem. Soc. nat. Sci. Nat. Mat.

Cherbourg. 41:1- 236p.

Gao, K. &Ye, C. 2007. Photosynthetic insensitivity of
the terrestrial cyanobacterium Nostoc flagelliforme

solar UV radiation while rehydrated or desiccated. J.
Phycol. 43:628-635.

Garcia-Pichel, F„ Lopez-Cortés A. & Nubel, U.

2001. Phylogenetic and morphological diversity
of cyanobacteria in soil desert crusts from the
Colorado Plateau. Appl. Environ. Microbiol.
67(4):1902-1910.

Geitler, L. 1932. Cyanophyceae. In L. Rabenhorst
Kryptogamen Flora von Deutschland, Osterreich
und der Schweis, Akad. Verlagsgesellshaft. m.b.H.
Leipzig. Vol.14.1196p

Gomont, M. 1892. Monographie des Oscillariees
(Nostocacées homocystées). Ann. Sci. nat. Bot.,
Ser.7,15:263-368.16:91-264.

Guillard, R. 1975. Culture of phytoplankton for
feeding marine invertebrates. In Culture Marine
Invertebrate Animáis. W.L. Smith & M.H.
Chanley (eds.). 29 - 60p. Plenum Press. New York.

Hu, C., Gao, K. & Whitton, B. 2012. Semi-arid regions
and deserts. In | Whitton, B. (ed.). Ecology of
Cyanobacteria II: Their Diversity in Space and
Time. Springer Science. 3451-369 p.

Katz, L., Mineeva L., Semenova, L. & Gusev, M.

1979. Electron microscopic study of thylakoid
structure in cyanobacteria. Microbiologija 48:457-
460.

Kirkwood, A., Buchheim, J., Buchheim, M., Henley,

W. 2008. Cyanobacterial diversity and halotol-
erance in a variable hypersaline environment.
Microb. Ecol. 55:453-465.

Komárek, J. 2006. Cyanobacterial Taxonomy: Currents
problems and prospects forthe integration of
traditional and molecular approaches. Algae. Vol.
21(4): 349-375.

Komárek, J. & Anagnostidis, K. 2005.

Cyanoprokaryota.2. Oscillatoriales. In Budel, B.,
Gartner, G., Krienitz, L. & Shagerl, M. eds.,

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 377

Montoya etaL Diversidad fenotípica de la cianobacteria Pseudophormidium tenue (Oscillatoriales, Micrc

para el Perú

SuBwasserfloora von Mitteleuropa. Band 19/2.
Spectrum, Academischer Verlag. Elsevier GmbH.
Munchen. 759p.

Komárek, J., Kastovsky, J., Ventura S., Turicchia S.

& Smarda, J. 2009. The cyanobacterial genus
Phormidesmis. Algological Studies 129:41-59.

Komárek, J. & Hauer,T. 2011. CyanoDB.cz - On-line
database of cyanobacterial genera. - Word-wide
electronic publication , University of South
Bohemia & Institute of Botany. ASCR. http://www.
cyanodb.cz.

Komárek, J., Kastovsky, J., Mares, J., &

Johansen, J. 2014. Taxonomic classification of
cyanoprokaryotes (cyanobacterial genera) 2014,
using a polyphasic approach. Preslia 86:295-335.

Montoya, H.T., Gómez, J., Medina D. & Vera G. 1998.
Cultivo de cianobacterias de costras algal-
liquénicas de las lomas de Pachacamac, Lima.
Biotempo. 3:7-16. Lima.

Otero, A. & Vincenzini, M. 2004. Nostoc
(Cyanophyceae) goes nude: extracellular
polysaccharides serve as asinkfor reducing power
under unbalanced C/N metabolism. J. Phycol.
40:74-81.

Palinska, K„ Liesack, W„ Rhiel, E. & Krumbein,
W.E. 1996. Phenotype variability of ¡dentical
genotypes: the need for a combined approach
in cyanobacterial taxonomy demonstrated on
Merismopedia -like ¡solates. Arch. Microbiol.
166:224-233.

Perkerson, R., Johansen, J, Kovacik, L., Brand, J.
Kastovsky, J. & Casamatta, D. 2011. A unique

Nodosilinea gen. nov. based on morphological and
molecular data. J.Phycol. 47(6):1397-1412.

histories and properties of puré culture of cyano-
bacteria. J. Gen. Microbiol. 111:1-61

Shirkey, B„ McMaster, N., Smith S., Wright D„
Rodríguez, H., Jaruga, P, Birincioglu, M., Helm
R, & Potts, M. 2003. Genomic DNA of Nostoc
commune (Cyanobacteria) becomes covalently
modified during long-term (decades) desiccation
but is protected from oxidative damage and
degradation. Nucleic Acids Res. 31(12):2995-
3005.

Stam, W. 1978. A taxonomic study of a number of
blue green algal strains (Cyanophyceae) based
on morphology, growth and deoxyribonucleic acid
homologies. Rijksunversiteit, Groningen. 116 p.

Stanier, R. & Cohen-Bazire, G. 1977. Phototrophic
prokaryotes: The Cyanobacteria. Annual Review of
Microbiology 31:225-274.

Stoyanov, R, Moten, D., Mladenov, R, Dzhambazov,

B. & Teneva, I. 2014. Phylogenetic relationships
of some filamentous cyanoprokaryotic species.
Evolutionary Bioinformatics 10:39-49.

Taton, A., Grubisic, S„ Brambilla, E„ De Wit, R.

& Wilmotte, A. 2003. Cyanobacterial diversity
in natural and artificial microbial mats of Lake
Fryxell (Me Murdo dry valleys, Antárctica): a
morphological and molecular approach. Appl. Env.
Microbiol. 69:5157-5169.

i, A., Knoll, A., Cavanaugh, C. & Ohno.T.

2006. The evolutionary diversification of
cyanobacteria: molecular-phylogenetic and
paleontological perspectives. PNAS.103
(14):5442-5447.

Wynn-Williams, D.D. 2000. Cyanobacteria in Dese
- Life at the limit? In | Whitton, B. & Potts, M.
(eds.). The Ecology of Cyanobacteria. Their
Diversity in Time and Space. Kluwer Academic
Publishers, Dordrecht. 341 -366p.

378 I ARNALDOA 2%^/Íero - Junio, 2017

ANEXO

ArnaldoA 24(i)|:

Montoya etaL Diversidad fenotípica de la cianobacteria Pseudophormidium tenue (Oscillatoriales, Micrc

para el Perú

5

Fig. 4. Filamentos de Pseudophormidium tenue, elongados uniseriados con células discoidales
y cilindricas, ramificaciones falsas en pares y unilaterales en medio BBM líquido de 3 meses.
Fig. 5. Filamentos jóvenes con ramas falsas alternas unilaterales y consecutivas de medio N8
de 1.5 años. En la parte inferior, filamento adulto engrosado por las divisiones celulares que

380 I ARNALDOA 2%^Íero-Junio,;

Montoya etal.\ Diversidad fenotípica de la cianobacteria Pseudophormidium tenue (Oscillatoriales, f

e), nuevo reporte p

Fig. 6. Talos filamentosos adultos de Pseudophormidium tenue en medio N8 líquido de un 1 año
con diversas formas transicionales de desarrollo de ramas falsas y hormogonios (parte inferió

Fig.7. Ramas falsas consecutivas que a su vez se vuelven a ramificar.

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017

Montoya etaL Diversidad fenotípica de la cianobacteria Pseudophormidium tenue (Oscillatoriales, Microcoleaceae), nuevo

Fig. 8. Diversidad de morfotipos de Pseudophormidium tenue con formas transicionales de los
talos filamentosos jóvenes y adultos, organización en diferentes planos y proliferación de
ramificaciones falsas y hormogonios.

382 I ARNALDOA 2%^Íero-Junio,;

Arnaldoa 24 (1): 383 - 394, 2017
http://doi.org/10.22497/arnaldoa.241.2412C

ISSN: 1815-8242 (edición impresa)
ISSN: 2413-3299 (edición Online)

Disponibilidad hídrica y predicción del
rendimiento de Zea mays L. (Poaceae) “maíz”
y Asparagus officinalis L. (Asparagaceae)
“espárrago” en el valle Jequetepeque, Perú

Water availability and yield prediction of Zea mays
L. (Poaceae) “cora” and Asparagus officinalis L.
(Asparagaceae) “asparagus” in Jequetepeque Valley,
Perú

Ana Marlene Guerrero Padilla
Facultad de Ciencias Biológicas, Universidad Nacional de Trujillo

Av. Juan Pablo II s/n, Trujillo, PERÚ

mguerrero@unitru.edu. pe

ARNALDOA 24 (1): Enero - Junio, 2017 I 383

cia CC BY-NC 4.0: https://crcativccommons.Org/liccnscs/by-nc/4.0/

Guerrero: Disponibilidad hídrica y predicción del rendimiento Zea mays (Poaceae) y Asparagus offitinaHs (Asparagaceae) en el valle Jequetepeque
Recibido: 20-1-2017; Aceptado: 15-111-2017; Publicado: VI-2017; Edición online: 05-VI-2017

Resumen

El presente estudio tuvo por objetivo principal evaluar la disponibilidad hídrica y determinar
predicción del rendimiento de Zea mays L. (Poaceae) "maíz" y Asparagus officinalis L. (Asparagaceae)
"espárrago" mediante modelo de simulación CROPWAT en el valle Jequetepeque, Perú. Se aplicó
la metodología recomendada por la FAO de Penman-Monteith mediante la aplicación del software
CROPWAT para la determinación de los requerimientos hídricos de Z. mays y A. ojfficinalis. El cultivo
de Z. mays "maíz" demandó una mayor cantidad de agua porque dispone de una fase crítica durante
la pre- y postfloración, por evaporación del cultivo (ETa) y evapotranspiración del cultivo (ETc) con
un requerimiento de riego desde enero a marzo. A. officinalis "espárrago" presentó requerimiento
de riego por baja retención de agua en el suelo (ETa) y por pérdida de agua por evapotranspiración
(ETc) desde la segunda semana de octubre hasta enero. La disponibilidad hídrica y el área agrícola
desarrollada tuvo un coeficiente R de Pearson de 0,7957 y un valor de P = 0.002, indicando una
relación estadística altamente significativa.

Palabras clave: Zea mays, Asparagus officinalis, valle Jequetepeque.

prediction of Zea mays L. (Poaceae) "corn" and Asparagus officinalis L. (Asparagaceae) "asparagus"
through CROPWAT simulation model in Jequetepeque Valley, Perú. We applied the methodology
of Penman-Monteith recommended by the FAO through the application of CROPWAT software for

demanded a greater amount of water because it has a critical phase in pre- and post-flowering,

low retention of water in the soil (ETa) and water loss by evapotranspiration (ETc) from the second
week of October to January. Water availability and developed agricultural area had a Pearson's R
coefficient of 0.7957 and a P valué of 0.002, indicating a highly significant statistical relation.
Keywords: Zea mays, Asparagus officinalis, Jequetepeque Valley.

Introducción

Los métodos de riegos ineficientes o
dispendiosos entrañan sus propios riesgos
para la salud: el anegamiento de algunas
zonas del Asia meridional, resultado de la
utilización excesiva del agua para riego,
es el determinante fundamental de la
transmisión de la malaria, situación que se
reitera en muchas otras partes del mundo.
En otras zonas, la extracción de agua ha
tenido consecuencias devastadoras sobre
el medio ambiente. La capa freática de
muchas regiones del mundo se reduce
constantemente y algunos ríos, como el
Colorado en el oeste de los Estados Unidos
y el Amarillo en China, se secan con

frecuencia antes de llegar al mar (Cumbre
de Johannesburgo, 2002; Peña, 2016).

El aprovechamiento de los recursos
hídricos de las cuencas hidrográficas en el
Perú adolece de una planificación integral,
el cual provoca el deterioro de la calidad y
cantidad de este recurso (Guerrero & Florián,
2013). Entre los problemas ambientales
más acuciantes en los distritos de riego, se
puede destacar: el proceso de salinización,
ya que se estiman en alrededor a 300 000
ha las tierras afectadas en diferentes grados
por anegamiento y salinidad, localizadas
en los principales valles de la costa.
Además, existen numerosos ríos con aguas
contaminadas debido a relaves mineros.

384 I ARNALDOA 2%fjbliero - Junio, 2017

ArnaldoA 24(i)|:

ArnaldoA 24(1 i;

3 Zea mays (Poaceae) y Asparagus offitinaHs (Asparagaceae) i

requerimientos hídricos de los cultivo. Se
realizó el análisis de correlación de Pearson
existente entre las cédulas de cultivo y las
descargas de agua del valle Jequetepeque.

Resultados

En el valle Jequetepeque se evaluó
la disponibilidad hídrica durante el año
hídrico 2014-2015 (Fig. 1), el cual incrementó
desde el mes de diciembre a mayo, tienen
un punto máximo en el mes de marzo con
170,584 hm 3 , lo cual está relacionado con las
áreas ocupadas por las cédulas de cultivo,
teniendo una mayor área en el mes de
febrero con 364111 ha (Fig. 2). En la Tabla
N° 1, se muestra el análisis de correlación de
Pearson, con un valor R de Pearson = 0,7957
y P = 0,002. Se encontró correlación de la

disponibilidad hídrica y las áreas ocupadas
por las cédulas de cultivo (Fig. 3).

En la Fig. 4, se muestra la retención de
agua del suelo en mm y los días después de
la siembra de Z. mays "maíz", presentando
necesidad de riego en los días 43, 64, 83, y
108 con una evaporación del cultivo (ETa)
100%, con un agotamiento que fluctuó entre
56 a 67 %, un requerimiento de agua por
evapotranspiración del cultivo (ETc) desde
enero a marzo (Fig. 5).

El cultivo de Asparagus offiánaUs
"espárrago" presentó necesidad de riego
con ETa 100% en los días 7, 15, 24, 35, 47,
58, 69, 80 y 93 (Fig. 6), con un agotamiento
que varió entre 33-52%, un requerimiento
de riego ETc desde la segunda semana de
octubre hasta enero (Fig. 7).

Año Hídrico

Fig. 1. Disponibilidad hídrica (hm 3 ) en el valle Jequetepeque durante el año hídrico 2014-2015.

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 387

Guerrero: Disponibilidad hídrica y predicción del rendimiento Zea mays (Poaceae) y Asparagus offitinaHs (Asparagaceae) en el valle Jequetepeque

Ago Set Ort Nov Dic Ene Feb Mar Abr May Jun Jul

Año Hídrico

Fig. 2. Area ocupada por cédulas de cultivo (lia) en el valle Jequetepeque durante el año
hídrico 2014-2015.

Tabla N° 1. Análisis de correlación entre área ocupada (cédulas de cultivo)
hídrica (hm 3 ).

COMISION DE RIEGO

R de Pearson
P

GENERAL

0.7957

0.002

Disponibilidad hídrica (hm3)

Fig. 3. Correlación de la disponibilidad hídrica (hm 3 ) y el área ocupada por las cédulas de
cultivo (ha) y en el valle Jequetepeque durante el año hídrico 2014-2015.

388 I ARNALDOA 24$£ g&t - Junio, 2017

ARNALDOA 24(11

ARNALDOA 24(1$

Guerrero: Disponibilidad hídrica y predicción del rendimiento Zea mays (Poaceae) y Asparagus officinalis (Asparagaceae) en el valle Jequetepeque

de agua en las etapas iniciales posterior a la
siembra podría afectar significativamente
la población de plantas, lo que causaría la
muerte de plántulas y por consiguiente
pérdida de población que se reflejaría en la
disminución del rendimiento.

Diop (2006) utilizó el modelo de
simulación para analizar las afecciones en
Z. mays "maíz", Arachis hypogaea "maní" y
Pankiim miliaccimi L. "mijo" sufrirían ante
diversos escenarios de cambio climático;
en tal sentido, en el presente estudio se
encontró la programación de Z. mays
tiene un umbal mínimo de precipitación,
desde el cual puede esperarse cosecha de
granos de 150 mm, según Lafitte (1994),
se requiere por lo menos 500 a 700 mm de
precipitación bien distribuida durante el
ciclo de cultivo. Esta cantidad de lluvia no
es suficiente si la humedad no puede ser
almacenada en el suelo debido a la poca
profundidad de éste o del escurrimiento
o si la demanda de evaporación es muy
grande por las temperaturas elevadas y la
escasa humedad relativa (Fuentes, 2002),
de allí la gran importancia del uso de
programa de simulación CROPWAT, para
programar el sistema de riego (Giorgis et
al., 2006). La ocurrencia del déficit hídrico
durante el crecimiento es uno de los
factores ambientales que más afectan la
estabilidad de la producción de granos en
cereales (Ruíz-Álvarez et al, 2011). En Z.
mays "maíz", la reducción en producción
de granos por efecto del déficit hídrico
es función del estadio de desarrollo de la
planta, de la intensidad y la duración de la
seca y de la sensibilidad del cultivo (Lorens
et al., 1987).

A. officimilis L."espárrago" presentó
necesidad de riego por baja retención
de agua en el suelo y causado por la
evaporación del agua (ETa), durante el
ciclo del cultivo, alcanzando días críticos 7,

15, 24, 35, 47, 58, 69, 80 y 93 (Fig. 6), con un
agotamiento que fluctúo entre 33-52 %, y un
requerimiento de riego por la pérdida de
agua por evapotranspiración (ETc), desde
la segunda semana de octubre hasta enero
(Fig. 7). A. officinalis L. "espárrago" requiere
menores volúmenes de agua debido a que
la formación de las yemas está en relación al
aumento de la temperatura del suelo (Drost,
1997), mientras que el crecimiento de los
turiones depende fundamentalmente de
la temperatura del aire (Krarup & Krarup,
1987) y la mayor velocidad de crecimiento
se ubica por debajo del extremo apical del
turión (Keuls & Post, 1957), en tal sentido
su requerimiento de agua es bajo (Fig. 5),
siendo la necesidad hídrica por campaña
de 15,500 m 3 /ha. El periodo más sensible
para A. officinalis L."espárrago" es durante
la cosecha, en este periodo la falta de
agua o riegos no uniformes, provocarían
que los turiones se presenten partidos,
doblados o con paredes rasgadas, además
productividad disminuiría.

Conclusiones

En el valle Jequetepeque existe alta
disponibilidad hídrica durante los meses
de enero a abril y está en relación directa
a la mayor área ocupada por las cédulas
de cultivo y empleando el modelo de
simulación CROPWAT es eficiente para
programación de sistemas de riego y
alcanzar productividad alta para diferentes

El cultivo de Zea mays "maíz" demandó
una mayor cantidad de agua porque dispone
de una fase crítica durante la pre- y post¬
floración, ETa y ETc, con un requerimiento
de riego desde enero a marzo.

Asparagus officinalis L. "espárrago"
presentó requerimiento de riego por baja
retención de agua en el suelo (ETa) y por

392 I ARNALDOA 24'^liero-Junio,;

3 Zea mays (Poaceae) y Asparagus offitinaHs (Asparagaceae) i

pérdida de agua por evapotranspiración
(ETc) desde la segunda semana de octubre
hasta enero.

Existe correlación entre la disponibilidad
hídrica y el área agrícola desarrollada,
con un coeficiente R de Pearson de 0,7957
indicando una alta correlación y un valor
de P = 0,002 que resultó ser menor que 0,05;
existiendo una relación estadísticamente
altamente significativa.

Literatura citada

Andrade, F., S. Uhart & G. Arguissain. 1991. Rendi¬
miento potencial de “maíz” en Balcarce; análisis
de los factores que lo determinan. INTA. Estación
Experimental Agropecuaria Balcarce. Argentina.
Boletín Técnico N° 101:1-11.

Arteaga, R.; V. Montiel & M. Vásquez. 2011. Programa
CR0PWAT para planeación y manejo de recurso hí-
drico. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas 2(2):
179-195.

Cumbre de Johannesburgo. 2002. El agua. Cumbre
Mundial de Desarrollo Sostenible [en línea]. Suda-
frica: Johannesburgo. Disponible en: http//www.

medios/carpeta/agua.htm
Recuperado: 04 de marzo del 2017.

Diop, M. 2006. Analysis of crop water use in Senegal
with the CROP WAT model. CEEPA discussion paper
N° 34, CEE-PA, University of Pretoria, pp. 18.

Drost, D. T. 1997. Asparagus, In: Wien H.C. (Ed). The
physiology of vegetable crops. Cambridge: CAB In¬
ternational, pp. 621-649.

Fassio, A.; A. Carriquiry; C. Tojo & R. Romero. 1998.
“Maíz”: Aspectos sobre fenología. Unidad de difu¬
sión e Información Tecnológica del INIA, Montevi¬
deo, Uruguay. ISBN: 9974-38-095-2, pp. 59.
Fischer, K. & F. Palmer. 1984. Tropical maize, In the
physiology of tropical field crops. Ed. By P R. Gold-
sworthy and N. M. Fischer, Chichester, Wiley, pp.
213-248.

Food Agriculture Organizaron (FAO). 2001. Informes
sobre temas hídricos, Perú. Riego en América Lati¬
na y el Caribe en cifras, pp. 281-290.

Food Agriculture Organizaron (FAO). 2013. Land and
Water división. Software CROPWAT. DOLhttp://
www.fao.org/nr/water/infores_databases_cropwat.

html, (consultado el 20 de junio del 2015).

Fuentes, M. 2002. El cultivo del maíz en Guatemala.
Una guía para su manejo agronómico. Instituto de
Ciencia y Tecnologías Agrícolas. ICTA, Guatemala,
pp. 45.

Giorgis, K.; A. Tadege & D. Tibebe. 2006. Estimating
crop water use and simulating yield reduction for
maize sorghum in Adama Miesso districts using
the CROPWAT model, CEEPA discussion paper 31,
CEEPA, University of Pretoria, pp. 14.

Global Water Partnership. 2002. Introducing Effective
Water Governance, Mimeo, April. GWP Annual Re-
port, pp. 32.

Guerrero, A. & J. Florián. 2013. Demanda y uso de
agua en los sectores de riego de la cuenca del río
Jequetepeque. Revista científica de la Facultad de
Ciencias Biológicas de la Universidad Nacional de
Trujillo-Perú. REBIOL 33(1): 1-17.

Guerrero, A. 2014. Gestión Integrada de recursos hí¬
dricos de la cuenca del río Jequetepeque, Perú.
SCIENDO 17(2): 92-117.

Guerrero, A. 2015. Demanda hídrica y calidad de agua
de uso agrícola de la cuenca del río Jequetepeque,
Perú. Universidad Nacional de Tujillo-Perú. REBIOL
35(2): 5-18

Keuls, M. & J. Post. 1957. Invloed van de temperatuur
op de groi van asperges. Overdruk uit de Med-
edelingen Directeur Tuinbouw, 19: 827-845.

Krarup, A. & J. Krarup. 1987. Rendimiento de espá¬
rragos verdes y blancos bajo dos modalidades de
cosecha. AgroSur, 15:47-53.

Laffite, H. R. 1994. Identificación de problemas en la
producción de maíz tropical. Guía de campo, Méxi¬
co D. F. CIMMYT, pp. 122.

Ley de Recursos Hídricos N° 29338. DOI:http://www.
ana.gob.pe/media/316755/leyrh.pdf (recuperado el
04 de marzo del 2017).

Lorens, G.; J. Bennett & L. Loggale. 1987. Differences
in drought resistance between two corn hybrids: II
component analysis and growth rafes. Agronomy
Journal 79 (5): 808-813.

Liu, J.; J. Williams; A. Zchnder & H. Yang. 2007. GE-
PlC-modeling wheat yield and crop water produc-
tivity with high resolution on a global scale. Agrie.
Systems 94: 478-493.

Molua, E. & C. Lambi. 2006. Assessing the impact of
climate on crop wáter use and crop wáter produc-
tivity: The CROPWAT analysis of three districts in

ARNALDOA 24(1): En

o, 2017 1 393

niento Ze<

(Poaceae) y Asparagus offitinaHs (Asparaga

I valle Jequetepequ

Guerrero: Disponibilidad hídrlca;

Cameroon. CEEPA discusión paper N° 33, CEER
Universit y of Pretoria, pp. 44.

Moreno, G.; N. Mendoza; R. Silvera; J. Quispe; H.
Portugués; I. Díaz; F. Urcuhuaranga; D. Arana;
A. Gallarday; R. Soto; T. Lapeyre; R. Gutiérrez;
R. Sánchez; J. Rosales; W. Llactayo & W. Beja-
rano. 2004. Plan de Ordenamiento Ambiental de la
Cuenca del Río Jequetepeque para la Proyección
del Reservorio Gallito Ciego y su Valle Agrícola. Ed.
INRENA & PEJEZA. Urna, pp. 372.

Peña, H. 2016. Desafíos de la seguridad hídrica en
América Latina y El Caribe. Publicación de las Na¬
ciones Unidas ISSN 1680-9017. Serie Recursos
Naturales e Infraestructura 178. CEPAL. Santiago
de Chile, pp. 57.

Ruíz-Álvarez, O.; R. Arteaga-Ramírez, M. Vásquez-
Pefta; R. López-López & R. Ontiveros-Capurata.

2011. Requerimientos de riego y predicción del
rendimiento en gramíneas forrajeras mediante un
modelo de simulación en tabasco, México. Agro-
ciencia 45: 745-760.

Sifuentes, E.; J. Ruelas; J. Soto; J. Macías & C. Pa¬
lacios. 2014. Planeación del riego en el cultivo de
algodonero Gossypium hirsutum L. mediante un
modelo de programación integral en el distrito 075,
Sinaloa, México. Scientia Agropecuaria 5: 93-102.

Stancalie, G.; A. Marica & L. Toulios. 2010. Using
earth observation data and CROPWAT model to es¬
tímate the actual crop evapotranspiration. Physics
and Chemistry of the Earth 35: 25-30.

Yoo, S-H.; J-Y. Choi & M-W. Jang. 2008. Estimation of
desing water requirement using FAO Penam-Mon-

in South Korea. Agricultural Water Management
95:845-853.

I ARNALDOA 24 fp; ; ¿Ípro - Junio, 2017

394

Arnaldoa 24 (1): 395 - 404, 2017
http://doi.org/10.22497/arnaldoa.241.24121

ISSN: 1815-8242 (edición impresa)
ISSN: 2413-3299 (edición Online)

IN MEMORIAN

A la memoria del Dr. Isidoro Manuel Sánchez
Vega (1938 - 2015)

To the memory of Dr. Isidoro Manuel Sánchez Vega
(1938 - 2015 )

Eric E Rodríguez Rodríguez

Herbarium Truxillense (HUT), Universidad Nacional de Trujillo, Jr. San Martín 392, Trujillo, PERÚ.
erodriguez@unitru.edu.pe

ARNALDOA 24(1): Enero-Junio, 2017
cia CC BY-NC 4.0: https://crcativccomnions.org/licensi

ArnaldoA 24(1 i;

ARNALDOA 24(1):

ArnaldoA 24(1 i;

ARNALDOA 24(1):

400 I ARNALDOA 24^:

ARNALDOA 24(1):

ArnaldoA 24(1 i;

Universidad Nacional de Colombia. Facultad de Ciencias. Instituto de Ciencias Naturales, Bogotá.

Jstor Global Plants. 2015. Sánchez Vega, Isidoro Manuel (1938-). Disponible en: http://plants.jstor.org/sta-
ble/10.5555/al.ap.person.bm000007352. Accedido: 07 diciembre 2015.

Koch, S. D. & I. Sánchez. 1985. Eragrostismexicana, E. neomexicana, E. orcuttiana, and E. virescens : the resolution
of a taxonomic problem. Phytologia 58(6): 377-381.

Laegaard, S. & I. Sánchez Vega. 1990. Three new species of. Muhlenbergia and Unióla (Poaceae) from northern
Perú. Nordic. Journal of Botany 10:437-441.

León, B. etal. 2006. El libro rojo de las plantas endémicas del Perú. Rev. perú. biol. Número especial 13(2).

Marcelo, J. L.; I. Sánchez & J. F. Millán. 2006. Estado actual de la diversidad florística del páramo sectores: El
Espino y Palambe, Sallique, Jaén, Cajamarca. Perú. Ecología Aplicada 5(1,2): 1 -8.

Molau, U. & I. Sánchez. 1986. Calceolaria (Scrophulariaceae): Las especies del Dpto. de Cajamarca, Perú. Bol.
Urna 43:837-851.

Peterson, P. M. & I. Sánchez. 2007. Eragrostis (Poaceae: Chloridoideae: Eragrostideae: Eragrostidinae) of Perú.
Ann. Missouri Bot. Gard. 94: 745-790.

Sagástegui, A. & I. Sánchez. 1971. Una nueva especie de Coreopsis (Compositae) de Perú. Bol. Soc. Argent. Bot.
13(4): 337-340.

Sagástegui, A. & I. Sánchez. 1981. Un nuevo taxón del género Coreopsis (Compositae). Darwiniana 23(1): 223-
225.

Sagástegui, A. & I. Sánchez. 1989. Novedades en el género Coreopsis (Asteraceae). Boletín de la Sociedad
Botánica de La Libertad. 15(1): 23-28.

Sagástegui, A. & I. Sánchez. 1991. Una nueva especie de Chuquiraga (Asteraceae-Mutisieae) del norte del Perú.
Arnaldoa. 1(2): 1-4.

Sagástegui, A.; M. 0. Dillon; I. Sánchez; S. Leiva & P. Lezama. 1999. Diversidad Florística del Norte de Perú. Tomo
I. Fondo Editorial Universidad Privada Antenor Orrego, Trujillo, Perú.

Sagástegui, A.; I. Sánchez; M. Zapata & M. 0. Dillon. 2003. Diversidad Florística del Norte de Perú. Tomo II.
Bosques Montanos. Fondo Editorial Universidad Privada Antenor Orrego.

Sagástegui, A. & I. Sánchez. 2007. Nuevo nombre para una especie de Coreopsis (Asteraceae: Heliantheaceae) del
Norte del Perú. Sciendo 10(1): 87.

Sánchez, 1. 1971 . Catálogo de las especies de Polypodiaceae de la Provincia de Cajamarca. Boletín de la Sociedad
Botánica de La Libertad. 3(2): 137-144.

Sánchez, 1. 1981. Sobre la presencia del Glyceria R.Br. (Gramineae) en el Perú. Boletín de la Sociedad Botánica de
La Libertad. 12(1): 15-19.

Sánchez, I.; A. Sagástegui & M. Huft. 1988. A new species of Stillingia (Euphorbiaceae) from northern Perú. Ann.
Missouri Bot. Gard. 75(4): 1666-1668.

Sánchez, 1. 1991. Revisión de las especies peruanas del género Piptochaetium J. S. Presl (Gramineae). Arnaldoa
■'; 4; 1(1): 11-34.

Sánchez, I. & A. Briones. 1992. Nombres vulgares de las Especies Vegetales de la Ladera de Valle de Cajamarca.
Edit. Asociación Impresiones y Publicaciones ““Obispo Martínez Compañón”, Cajamarca, Perú.

ARNALDOA 24(1): Enero-Junio, 2017

Sánchez, I. & M. Tapia. 1992. Estudio Agrobotánico de los Huertos Familiares en Cajamarca. CUSO-Programa
Cajamarca-Convenio CUSO-Universidad Nacional de Cajamarca.

Sánchez, 1. 1992. A la memoria de David N. Smith. Memorias del Museo de Historia Natural. UNMSM. 21:1-4.

Sánchez, I. 1993. Las especies de Leguminosas del valle de Cajamarca: Una Aproximación. Impresiones y
Publicaciones “Obispo Martínez Compañón”, Cajamarca, Perú.

Sánchez, 1. 1994. Recursos vegetales y desarrollo en el norte del Perú. Arnaldoa 2 (1): 145-168.

Sánchez, I.; A. Sagástegui & D. J. Carwford. 1994. Compuestas andino-peruanas nuevas para la ciencia. Arnaldoa
2 (2): 37-45.

Sánchez, 1. 1996. La Jalea: Aspectos florísticos y alternativas de manejo sustentable. Arnaldoa 4 (2): 25-62.

Sánchez, 1. 1998. La Jalea de Oro: Biodiversidad, Medio Ambiente y Minería en la Sierra de Cajamarca, Perú. Minera
Yanacocha S. A.

Sánchez, I. & M. 0. Dillon. 2000. Una nueva especie de Mikania (Eupatorieae: Asteraceae) de Piura, Perú. Arnaldoa
7 (1-2): 7-12.

Sánchez, I.; G. Ibérico; M. Zapata; M. L. Kawasaki & M. 0. Dillon. 2001. Nuevos registros para la flora de San
Martin, Perú. Arnaldoa 8 (2): 45-52.

Sánchez, I. & M. 0. Dillon. 2006. Jaleas. En: Botánica Económica de los Andes Centrales. Editores: M. Moraes R.,
B. Ollgaard, L. P Kvist, F. Borchsenius & H. Balslev. Universidad Mayor de San Andrés, La Paz. Pág. 77-90.

Sánchez, I.; P. M. Peterson; R. J. Soreng & S. Legaard. 2007. Aphanelytrumperuvianum (Poaceae: Poinae): a new
species from Perú. J. Bot. Res. Inst. Texas 1 (2): 841 - 845.

Sánchez, I. & N. Grados. 2007. Estudio florístico y ambiental del bosque relicto Mijal en la provincia de Morropón,
Piura. Arnaldoa 14 (2): 259-268.

Sánchez, I. 2011. Especies medicinales de Cajamarca I. Contribución Etnobotánica, Morfológica y Taxonómica.
UPAGU, Lumina cooper Fondo Editorial, Martínez Compañón Editores S.R.L., Cajamarca, Perú.

Sánchez, I.; A. Sánchez; L. Azabache; T. Vásquez; C. Juárez; L. Callirgos; A. Cruzado, etal. 2012. La Diversidad
Biológica en Cajamarca: Visión étnico-cultural y potencialidades. Visual 47 SRL., Gobierno Regional de
Cajamarca, Cajamarca.

Sánchez, I. 2014. Plantas medicinales en los páramos de Cajamarca. En: Cuesta F, Sevink J, Llambí LD, De Biévre
B, Posner J, Editores. Avances en investigación para la conservación de los páramos andinos, CONDESAN.
Pág. 175-194.

Thiers, B. 2015. Index Herbariorum: A global directory of public herbaria and associated staff. New York Botanical
Garden’s Virtual Herbarium. Disponible en: http://sweetgum.nybg.org/science/ih/. [Acceso: 05 de diciembre
2015],

Trópicos [homepage en Internet], 2015. Tropicos.org. Missouri Botanical Garden. 2015. Disponible en: http://www.
tropicos.org. Acceso: 5 setiembre 2015.

Ulloa Ulloa, C.; J. L. Zarucchi & B. León. 2004. Diez años de adiciones a la Flora del Perú: 1993-2003. Arnaldoa
(Edic. Espec., Nov. 2004): 1-242.

404 I ARNALDOA 2%^/Íero - Junio, 2017

267 Flora y vegetación de la Reserva Nacional de Calipuy, La Libertad / Flora and vegetation of Calipuy National

Reserve, La Libertad

HAMILTON BELTRÁN, GIOVANA PATRICIA VADILLO GÁLVEZ & FANY PALOMINO ZEÑA

BOTÁNICA ECONÓMICA

289 Extracción de azúcares reductores totales ART por métodos físicos y químicos de planta de Zea mays (Poaceae)
“maíz amarillo duro”/ Extraction of total reducing sugars TRS by physical and Chemical methods from plant of

JULIO ARELLANO BARRAGÁN, CARLOS NORBERTO RODRÍGUEZ & ORLANDO PRETEL SEVILLANO

var. caribaea (Pinaceae) in Pinar del Rio (Cuba)
BERTHA RITA CASTILLO EDUA & ZHOFRE AGUIRRE MENDOZA

311 Vegetales tintóreos promisorios más utilizados en la región La Libertad, Perú / Most used promising dyeing

plants in La Libertad Región, Perú

ERIC F. RODRÍGUEZ RODRÍGUEZ, SOFÍA RODRÍGUEZ SEVILLA, YEMMY PAREDES PIZARRO, VICTORIA RIMARACHÍN
CAYATOPA, LUIS POLLACK VELÁSQUEZ, MARLENE R. RODRÍGUEZ ESPEJO & ROXANA AGUIRRE TOCAS

FISIOLOGÍA VEGETAL

SEGUNDO ELOY LÓPEZ MEDINA & ARMANDO EFRAÍN GIL RIVERO

condiciones de invernadero / Acclimation of in vitro seedlings of Saintpaulia ionantha H. Wendl. (Gesneriaceae)
“African violet” to greenhouse conditions

ARMANDO EFRAÍN GIL RIVERO, SEGUNDO ELOY LÓPEZ MEDINA & ANGÉLICA LÓPEZ ZAVALETA

ENTOMOLOGÍA

351 Efecto de los exudados radiculares de la “higuerilla” Ricinus communis L. (Euphorbiaceae) en la mortalidad de

larvas de Gymnetis bonplandii Schaum (Coleóptera, Scarabaeidae) / Effect of root exudates of “castor olí plant”
Ricinus communis L. (Euphorbiaceae) on mortality of white larvae of Gymnetis bonplandii Schaum (Coleóptera,

ANDIE ALEXANDER GONZÁLES DÍAZ & JUAN CARLOS CABRERA LA ROSA

359

Principales plagas y controladores biológicos de Gossypium hirsutum L. “algodón nativo” de fibra verde en
relación a su ciclo fenológico / Principal plagues and beneficial insects of Gossypium hirsutum L. “native
cotton” of green fiber in relation to its phenological cycle

ARMANDO EFRAÍN GIL RIVERO & SEGUNDO ELOY LÓPEZ MEDINA

Microcoleaceae), new record for Perú

HAYDEE MONTOYA T„ JOSÉ GÓMEZ C., MAURO MARIANO A., ENOC JARA R, EGMA MAYTA H. & MARIO
BENAVENTE R

(Asparagaceae) “espárrago” en el valle Jequetepeque, Perú / Water availability and yield prediction of Zea mays
L. (Poaceae) “corn” and Asparagus officinalis L. (Asparagaceae) “asparagus” in Jequetepeque Valley, Perú

ANA MARLENE GUERRERO PADILLA

Abundance dynamics of endangered plant species Galatella rossica (Asteraceae) in the Republic of Mordovia
(Asteraceae) en la República de Mordovia (Rusia Central): reporte breve

ERIC F. RODRÍGUEZ RODRÍGUEZ, KATIA MONZÓN LICERA & ELMER ALVÍTEZ IZQUIERDO

UPAO

FONDO EDITORIAL

Volumen 24(1) 9 - 402 pp ARNALDOA